張旦旦,王煜,李卓,田瑩,王犖,毛俊霞,王許波,常亞青,郝振林
(大連海洋大學(xué) 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部北方海水增養(yǎng)殖重點實驗室,遼寧 大連 116023)
香螺Neptuneacumingii隸屬于軟體動物門Mollusca腹足綱Gastropoda新腹足目Neogastropoda蛾螺科Buccinida,其殼近菱形,殼質(zhì)堅硬,顏色為淺褐色,螺層約為7層[1]。香螺為冷水性大型種類,其肉質(zhì)鮮美肥嫩,營養(yǎng)豐富,富含有人體必需的微量元素[2]。香螺肉可加工成干制品,也可鮮食,深受人們喜愛[3],市場價格近120元/kg,經(jīng)濟價值較高,是非常具有增養(yǎng)殖潛力的螺類。香螺分布范圍較小,在中國主要分布于黃、渤海海域[4-5],日本、朝鮮海域也有分布[6]。
目前,關(guān)于香螺的研究較少,主要集中于香螺殼質(zhì)[7]、營養(yǎng)元素[8]、繁殖生物學(xué)[9]等方面。近年來,有學(xué)者初步開展了香螺遺傳多樣性的研究,隋娜[10]基于微衛(wèi)星標記的方法研究了遼寧及山東5個地理群體香螺的遺傳多樣性,發(fā)現(xiàn)地理位置與遺傳多樣性存在一定的聯(lián)系。日本學(xué)者Azuma等[11]利用分離的多態(tài)微衛(wèi)星標記技術(shù)分析了日本北海道海域香螺種群的遺傳多樣性,發(fā)現(xiàn)基因可用于鑒定香螺種群和親緣關(guān)系。然而微衛(wèi)星技術(shù)在PCR擴增時可能會出現(xiàn)無效基因的情況,進而影響群體的鑒定結(jié)果[12]。本研究中,通過分析中國黃、渤海海域6個不同地理群體香螺COXⅠ和CYTB基因的遺傳多樣性水平,試圖明確中國香螺遺傳多樣性水平和種質(zhì)遺傳背景,旨在為香螺健康養(yǎng)殖及其資源保護和種質(zhì)管理提供科學(xué)參考。
試驗用香螺于2017年6—10月采自大連市大連灣(DL)、大連市獐子島縣(ZZ)、大連市旅順鹽場(LS)、煙臺市八角港(YT)、威海市(WH)、蓬萊市長島縣(PL)6個海域,樣本各10尾,用保溫箱運回至大連海洋大學(xué)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部北方海水增養(yǎng)殖重點實驗室。解剖,剪取每尾個體的腹足肌組織,用過濾海水洗凈,稱重,并于-80 ℃冰箱中保存待用。
1.2.1 DNA提取、COXⅠ和CYTB基因擴增及測序 剪取香螺腹足肌組織約20 mg,剪碎并裝入離心管。采用TIANGEN 海洋動物基因組提取試劑盒提取DNA,用10 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,并用紫外分光光度計測量DNA的質(zhì)量和濃度,于冰箱(-20 ℃)中保存?zhèn)溆谩?/p>
香螺線粒體COXⅠ基因擴增引物為
F:5′ATGCGTTGATTATTTTCKACAAATCA 3′;
R:5′TCTTGAAATCCTARTTGTCCTCATAG 3′。
線粒體CYTB基因擴增引物為
F:5′CTTCCCTTCGTCCTTTCAAT 3′;
R:5′GACAAATATTCCCCAGGAATAAC 3′。
PCR反應(yīng)體系(50 μL)包括:10×Buffer 5 μL,dNTP(10 mmol/L)5 μL,上、下游引物各2 μL(10 μmol/L),模板DNA(50 μg/μL)5 μL,ddH2O 31 μL。反應(yīng)條件為:94 ℃下預(yù)變性5 min;94 ℃下變性30 s,50 ℃(COXⅠ基因)或55 ℃(CYTB基因)下退火復(fù)性30 s,72 ℃下延伸120 s,共進行30個循環(huán);最后在72 ℃下再延伸10 min,在4 ℃下保存。用10 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴增產(chǎn)物并送往生工生物工程(上海)股份有限公司進行雙向測序。
1.2.2 序列分析 使用BioEit軟件對測序結(jié)果進行比對。采用BLAST檢索確定目的基因。采用DNASP 5.0(DNA Sequence Polymorphism)軟件確認單倍型數(shù),計算6個不同海域群體內(nèi)核苷酸多樣性指數(shù)(Pi)、核苷酸差異系數(shù)(K)。采用MEGA 5.0軟件計算COXⅠ和CYTB基因的堿基組成、變異位點數(shù)并構(gòu)建單倍型分子系統(tǒng)進化樹,Bootstrap 重復(fù)1 000 次檢驗置信度。采用TCS 1.21軟件制作單倍型網(wǎng)絡(luò)支系圖,以分析6個不同群體的親緣關(guān)系。采用分子方差分析法(AMOVA)分析香螺不同群體間的遺傳分化,并計算遺傳分化系數(shù)(Fst)。
香螺線粒體COXⅠ和CYTB基因長度分別為1 536 bp和1 140 bp。變異位點中,兩基因均未發(fā)現(xiàn)插入/缺失位點。COXⅠ基因檢測到141個多態(tài)位點,11種單倍型,CYTB基因檢測到34個多態(tài)位點,14種單倍型;線粒體COXⅠ基因的T、C、A、G平均堿基含量分別為38.7%、16.2%、27.2%、18.0%,線粒體CYTB基因的T、C、A、G平均堿基含量分別為40.4%、17.0%、28.0%、14.6%(表1)。通過對6個不同群體間COXⅠ和CYTB堿基組成對比發(fā)現(xiàn),兩基因的堿基組成較為接近,且A+T堿基含量均大于G+C。
表1 香螺COXⅠ和CYTB 基因序列的堿基組成
香螺線粒體COXⅠ基因的單倍型分布見表2,其中,WH群體獨有的單倍型是COXⅠ-03,YT群體獨有的單倍型是COXⅠ-5和COXⅠ-6,ZZ群體獨有的單倍型是COXⅠ-8和COXⅠ-9,DL群體獨有的單倍型是COXⅠ-10和COXⅠ-11。香螺線粒體CYTB基因單倍型分布見表3,其中,ZZ群體獨有的單倍型是CYTB-3、CYTB-5和CYTB-6,LS群體獨有的單倍型是CYTB-7、CYTB-8和CYTB-10,YT群體獨有的單倍型是CYTB-11和CYTB-14,WH群體獨有的單倍型是CYTB-12,PL群體獨有的單倍型是CYTB-13。
(2)首先檢查SDH電源是否故障,如果有即修復(fù)電源,修復(fù)后SDH若無告警則流程轉(zhuǎn)入第(4)步。若SDH告警為次要告警,則流程轉(zhuǎn)入第(3)步。若為主要告警,先對兩端SDH在ODF處自環(huán),若告警不消除,則需要對ODF和SDH排查和檢修,ODF檢修為更換尾纖或光接頭,SDH檢修則為找出故障板卡并更換。若無主要告警,環(huán)回方式改成如下,在其中一端ODF處環(huán)回給對端,觀察對端是否有主要告警,若有告警即可診斷為光鏈路或中繼 SDH故障,需要參考專用保護通道故障定位處理方法解決故障,并消除中繼SDH故障。
表2 香螺各群體COXⅠ基因單倍型分布情況
表3 香螺各群體CYTB基因單倍型分布情況
6個香螺群體內(nèi)COXⅠ和CYTB基因的遺傳參數(shù)如表4所示,COXⅠ及CYTB基因的平均核苷酸差異數(shù)K值變化范圍分別為0.000~31.133和1.222~13.444,COXⅠ基因K值變化范圍較大,且DL群體最高,為31.133,遠大于其他群體;核苷酸多樣性指數(shù)Pi分析顯示,COXⅠ基因中,DL群體的Pi值最高,為0.021 21,PL群體的Pi值最低,為0,而CYTB基因中,LS群體的Pi值最高,為0.012 36,PL群體的Pi值最低,為0.001 14。
表4 6個不同海域香螺COXⅠ和CYTB基因的群體遺傳多樣性參數(shù)
6個群體間的遺傳參數(shù)如表5所示,香螺各群體間COXⅠ及CYTB基因K值變化幅度分別為24.971~2.094和11.497~1.395,COXⅠ基因K值變化幅度較大;COXⅠ基因中,YT和PL群體間的K值最低,DL與LS群體間的K值最高;在CYTB基因中,LS和其他群體間的核苷酸差異數(shù)與其他群體兩兩相比差異較大,表明LS群體是6個群體中差異較為明顯的群體。另外,在COXⅠ基因中,DL群體與ZZ、YT、WH群體間未發(fā)現(xiàn)共享的遺傳位點,PL群體與其他5個群體間也未發(fā)現(xiàn)共享的遺傳位點;但在CYTB基因中,DL群體與ZZ、YT、WH群體間有22個共享的遺傳位點,且PL群體與DL、ZZ、LS、YT及WH群體的共享遺傳位點數(shù)分別是22、44、46、26和44(表5)。
表5 6個不同海域香螺群體間的COXⅠ和CYTB基因平均核苷酸差異數(shù)K(對角線下)及共享變異位點(對角線上)
使用MEGA5.0軟件制作單倍型系統(tǒng)進化樹,結(jié)果如圖1和圖2所示。在COXⅠ基因中,有3個分支的單倍型聚類,分別為具有最大優(yōu)勢分支的單倍型COXⅠ-06、COXⅠ-09、COXⅠ-02、COXⅠ-01、COXⅠ-11、COXⅠ-04、COXⅠ-05,單倍型COXⅠ-03、COXⅠ-07、COXⅠ-08為一個分支,僅單倍型COXⅠ-10單獨為一個分支(圖1);CYTB基因中,有2個分支的單倍型聚類,一類為最大的優(yōu)勢分支單倍型CYTB-02、CYTB-04、CYTB-08、CYTB-06、CYTB-10、CYTB-09、CYTB-13、CYTB-05、CYTB-11、CYTB-14,另一類為單倍型CYTB-03、CYTB-12、CYTB-01、CYTB-07分支(圖2)。
圖1 COXⅠ基因單倍型系統(tǒng)進化樹
圖2 CYTB基因單倍型系統(tǒng)進化樹
使用TCS 1.21軟件制作單倍型網(wǎng)絡(luò)圖如圖3和圖4所示,其中,COXⅠ和CYTB基因在不同群體間單倍型交錯分布, 且未出現(xiàn)明顯地理差異。在COXⅠ基因中,最大的優(yōu)勢分支COXⅠ-02位于網(wǎng)絡(luò)圖的最中心;在CYTB基因中,兩分支中均有一個單倍型位于網(wǎng)絡(luò)圖的中心,分別是大分支的單倍型CYTB-02,小分支的單倍型CYTB-01。COXⅠ和CYTB基因單倍型網(wǎng)絡(luò)圖得到的結(jié)果與單倍型系統(tǒng)進化樹相似。
圖中每一個圓圈代表需要進行一次變異,下同。
圖4 CYTB基因單倍型網(wǎng)絡(luò)圖
從表6可見:COXⅠ和CYTB基因各群體間遺傳距離分別為0.002~0.018和0.001~0.005;COXⅠ基因中,DL群體與ZZ、LS、YT、WH、PL群體的遺傳距離分別為0.014、0.018、0.014、0.015、0.012,其他5個群體間的遺傳距離均小于0.012,其中ZZ、YT、PL群體之間的遺傳距離最小,分別為0.003、0.002、0.002;CYTB基因中,LS群體與其他5個群體間的遺傳距離均為0.005,而其他5個群體間的遺傳距離均小于0.005,YT、PL、ZZ群體間的遺傳距離最小,均為0.001。
表6 6個不同海域香螺群體間COXⅠ和CYTB的遺傳距離
從AMOVA分析結(jié)果中(表7)可知:COXⅠ和CYTB基因Fst指數(shù)分別為0.099 31和0.180 89,P值均大于0.05,說明群體間的遺傳分化并不明顯;另外,香螺6個群體內(nèi)COXⅠ和CYTB基因變異比例分別為90.07%和81.91%,群體間變異比例分別為9.93%和18.09%,說明群體內(nèi)有較為明顯的遺傳分化。
表7 基于6個不同海域香螺群體COXⅠ和CYTB基因序列的AMOVA分析
遺傳多樣性是物種生存發(fā)展的前提,也是其物種進化的潛力和適應(yīng)環(huán)境能力的基礎(chǔ),更是物種多樣性的基礎(chǔ)[13]。單倍型多樣性和核苷酸多樣性是一個物種遺傳多樣性的衡量指標,因此,單倍型多樣性和核苷酸多樣性值越大,物種的遺傳多樣性越豐富,但當(dāng)研究數(shù)量較少時,核苷酸多樣性比單倍型多樣性更具有說服力[14-15]。根據(jù)Grant等[16]提出的標準,核苷酸多樣性指數(shù)以0.005為臨界線,高于0.005說明物種的遺傳多樣性較豐富。本研究中,COXⅠ和CYTB基因在WH群體中核苷酸多樣性指數(shù)為0.006 44和0.007 94,均大于0.005,推測可能是因為威海水資源的開發(fā)利用較小,遺傳多樣性較豐富。此外,還可能與其地理位置有關(guān),威海緯度較低,這對氣溫和水溫有一定的影響,使其形成了一定的差異。
本研究表明,在COXⅠ基因中,單倍型系統(tǒng)進化樹和單倍型網(wǎng)絡(luò)圖均有3個大分支,分析結(jié)果基本相同,不同群體在單倍型分布上并未出現(xiàn)明顯的地理差異,在群體中占比較大的單倍型是該群體中的優(yōu)勢單倍型,有1~2種。在CYTB基因中,單倍型系統(tǒng)進化樹和單倍型網(wǎng)絡(luò)圖均出現(xiàn)兩個分支,分析結(jié)果基本相同,且未發(fā)現(xiàn)明顯的地域差異,但ZZ、YT、WH、PL群體有獨有單倍型,說明交叉現(xiàn)象會在不同群體中出現(xiàn)。其中,最大優(yōu)勢分支單倍型COXⅠ-02和CYTB-02位于網(wǎng)絡(luò)圖最中心且占比最高,依據(jù)溯祖理論,祖先類型應(yīng)是占比最高的單倍型[17],因此,推測中國黃、渤海海域的祖先類型可能為單倍型COXⅠ-02和CYTB-02。
本研究表明,在COXⅠ基因中,從單倍型系統(tǒng)發(fā)育樹和單倍型網(wǎng)絡(luò)圖可以看出,各群體間產(chǎn)生了穿插滲透的現(xiàn)象,未出現(xiàn)明顯的群體差異,且單倍型和變異位點較豐富,說明群體間有較高的遺傳滲透率和遺傳相似度,這與趙丹等[18]對泥螺BullactaexarataCOXⅠ基因部分片段的研究結(jié)果相似。在CYTB基因中,LS群體的單倍型數(shù)、多態(tài)位點數(shù)、平均核苷酸差異數(shù)、核苷酸多樣性指數(shù)、群體間遺傳參數(shù)和遺傳距離等指標均高于其他5個群體,說明LS群體與其他5個群體有較為明顯的差異,且遺傳背景及遺傳多樣性方面要優(yōu)于其他群體,說明物種對環(huán)境的適應(yīng)力與遺傳多樣性豐富度成正比[19-20]。Shaklee等[21]提出,魚類在種群的遺傳距離標準為0.05~0.30。依據(jù)此標準,本研究中6個不同海域群體香螺在COXⅠ基因中,DL群體和LS群體的遺傳距離最大,為0.018,小于種群的標準0.05;在CYTB基因中,群體間最大的遺傳距離為0.005,小于種群的標準。表明6個不同海域的香螺未達到亞種分化。
本研究中AMOVA分析顯示,香螺COXⅠ和CYTB基因群體內(nèi)變異都遠大于群體間差異,COXⅠ基因差異的主要原因是群體內(nèi)變異為群體,說明COXⅠ基因與其地理位置并未有明顯的相關(guān)性。王旭[22]通過COXⅠ和16S rRNA分析了黃口荔枝螺Thaisluteostoma和疣荔枝螺Reishiaclavigera的遺傳多樣性,結(jié)果顯示,在整個遺傳變異中群體內(nèi)的遺傳變異最大,無明顯的地理結(jié)構(gòu)和譜系結(jié)構(gòu),表明群體間不存在顯著的遺傳分化,本研究結(jié)果與之相似。COXⅠ基因中,從單倍型、變異位點數(shù)、遺傳距離等幾個指標中可以發(fā)現(xiàn),DL群體均大于其他5個群體,說明在遺傳背景和遺傳多樣性方面DL群體與ZZ、LS、YT、WH、PL群體相比較為豐富。楊建敏等[23]通過對遼寧至山東的脈紅螺Rapanavenosa7個群體16S基因的遺傳多樣性進行研究,認為大連市大連灣群體是遺傳背景最為豐富的群體。本研究中CYTB基因差異的主要原因,推測認為是該基因片段未能出現(xiàn)明顯的地域差異。
香螺分布范圍和移動范圍較小,繁殖力較弱,由于捕撈強度變大,目前出現(xiàn)了顯著的資源衰竭[1]。因此,當(dāng)前要采取有效措施保護其資源。本研究中初步反映了香螺的遺傳背景,為制定相關(guān)的保護措施提供了依據(jù)。筆者認為,可通過多種方式對香螺的資源進行保護:1)保證香螺的餌料資源;2)嚴格限制捕撈的工具;3)從生產(chǎn)的實際情況考慮,嚴格控制捕撈期。然而,若從遺傳多樣性角度分析香螺的資源,還需通過其他技術(shù)獲取相關(guān)的分子數(shù)據(jù)庫。
1)中國不同海域間香螺遺傳多樣性較為豐富,威海群體COXⅠ和CYTB基因的核苷酸多樣性指數(shù)較高,均大于0.005。
2)不同海域間香螺具有群體獨有的單倍型,可作為鑒別不同地理種群的重要依據(jù)。
3)不同海域間香螺未出現(xiàn)明顯的群體間差異,但群體內(nèi)變異遠大于群體間差異,不同海域間香螺未達到亞種分化水平。