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        8個玉米DOF家族基因對非生物脅迫的響應模式分析

        2021-09-10 02:10:26賈利強趙秋芳陳曙
        河南農(nóng)業(yè)大學學報 2021年4期

        賈利強, 趙秋芳, 陳曙

        (1.貴州師范學院生物科學學院,貴州 貴陽 550018; 2.中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院南亞熱帶作物研究所,廣東 湛江 524091)

        DNA Binding with one finger (DOF)轉錄因子是鋅指蛋白 (zinc finger proteins)家族的一個亞家族,是植物特有的一類轉錄因子。DOF家族基因在動物基因組中沒有同源基因,在其蛋白序列中具有一個明顯的鋅指結構,所以這類植物特有的單個鋅指結構的轉錄因子命名為DOF(DNA-binding with one finger)蛋白[1]。所有的DOF蛋白的N端具有一個保守的大約有52個氨基酸組成的DNA結合結構域C2-C2鋅指結構,這個結構域可以結合到靶基因的啟動子順勢元件序列AAAG上,調控靶基因的表達[2]。另外,在DOF蛋白的N端含有一個雙向的核定位信號序列(NLS,bipartite nuclear localization signal)[3]。DOF蛋白的C端序列的不保守,有報道表明,DOF蛋白的C端調控許多下游基因的表達,在植物的生長發(fā)育進程中發(fā)揮著重要的調控作用[4-5]。迄今為止,已報道了許多作物的DOF基因家族,大麥中有75個DOF基因[6],玉米中有46個[7],馬鈴薯中有35個[8], 大豆中有28個[9],木豆中有38個[10],水稻中有30個[11],42個候選DOF基因發(fā)現(xiàn)于苜蓿基因組中[12],25個在甘蔗中[13]。

        玉米的DOF基因家族的初步研究已有報道,但是,這個家族基因在玉米生長發(fā)育中及應答逆境脅迫的定量表達數(shù)據(jù)還很缺乏。本研究選用其中的一個亞家族共計8個基因作為研究對象,研究了這8個基因在玉米自交系鄭58不同器官中的特異表達模式及應答NaCl,PEG6000,銨態(tài)氮和硝態(tài)氮脅迫時的響應表達模式,為深入研究這些DOF基因的功能提供了有用的信息。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試驗處理

        試驗材料為玉米自交系鄭58。在鄭58授粉期及授粉15 d后采集根、莖、葉、花、穗和苞葉,液氮速凍,保存于-80 ℃冰箱備用。對于NaCl和PEG 6000脅迫試驗。參照前人的研究結果,玉米鄭58種子用2%的次氯酸鈉表面消毒,28 ℃黑暗催芽,挑選發(fā)芽一致的種子放置于固定在泡沫漂浮板的紗網(wǎng)上,于Hoagland培養(yǎng)液中生長,為了使根系健壯生長和防止綠藻產(chǎn)生,水培容器和支持苗的平板采用不透光的塑料。在人工氣候室(28 ℃光照16 h,黑暗8 h)長至三葉一心時,挑選大小一致的玉米幼苗轉到200 mmol·L-1NaCl溶液或者20%的PEG 6000溶液脅迫處理,分別于處理的0,1,6和24 h時間點采取葉片,液氮速凍,保存于-80 ℃冰箱備用。對于不同氮形態(tài)的脅迫試驗,將發(fā)芽整齊一致的玉米鄭58種子生長于含2 mmol·L-1的硝酸鉀或氯化銨的Hoagland培養(yǎng)液中,每周更換新的培養(yǎng)液,生長3周后,轉到含有0.02 mmol·L-1的硝酸鉀或者氯化銨的Hoagland培養(yǎng)液脅迫處理,分別在脅迫處理的0,1,6和24 h時迅速采集葉片,液氮速凍后,-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。以試驗處? h的樣品作為空白對照,將3株幼苗混樣作為1次生物學重復,共設置2次生物學重復試驗。

        1.2 8個ZmDOF基因生物信息學分析

        本研究中,8個ZmDOF的蛋白和核苷酸序列及擬南芥的36個DOF蛋白序列。

        從Phytozome中下載(https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html)。根據(jù)在染色體中的物理位置,輸入到軟件MapInspect (http://www.plantbreeding.wur.nl/uk/software-mapinspect.html),繪制這8個基因在染色體中的位置圖。這8個玉米DOF蛋白和擬南芥36個DOF蛋白生成的數(shù)據(jù)陣,利用軟件MEGA10(http://meme-suite.org/tools/meme)中的MUSLE算法進行比對,取保守序列,用NJ法進行進化樹計算,參數(shù)設置為P-distance,pairwise deletion,bootstrap值取1 000。利用這8個基因的CDS和基因組序列,輸入在線軟件GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn),繪制基因結構圖。利用在線軟件MEME(http://meme-suite.org)對8個ZmDOF蛋白進行結構域搜索。

        1.3 RNA提取及定量PCR

        玉米葉片總RNA的提取利用Trizol試劑盒 (Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)提取。用DNase I(Takara, Dalian, China)去除總RNA中可能污染的基因組DNA??俁AN的質量和純度用NanoDrop ND-1000紫外分光光度計 (Thermo Scientific, USA)來測定。取3 μg總RNA用Super Script Ⅲ逆轉錄酶(TaKaRa,Dalian,Chian)進行反轉錄,生成cDNA稀釋5倍用于后續(xù)的定量PCR反應(羅氏480實時定量PCR儀)。擴增體系為1 μL cDNA、上下游引物各0.5 μL、SYBR反應MIX(2×)為5 μL和3 μL水。設定的PCR程序為:1個循環(huán)95 ℃ 30 s; 45個循環(huán)95 ℃ 5 s; 60 ℃ 20 s; 72℃ 10 s。利用2-△△Ct算法來計算ZmDOF基因的相對表達量。玉米actin基因用作內(nèi)參。用于定量的8個玉米DOF基因的引物見表1。所有的試驗重復至少3次,用Excel軟件進行數(shù)據(jù)分析。

        表1 8個ZmDOF基因的實時熒光定量引物Table 1 qRT-PCR primers for expression on analysis of 8 ZmDOF genes

        2 結果與分析

        2.1 8個ZmDOF基因的生物信息學分析

        根據(jù)玉米DOF基因家族的研究結果[35],選定位于同一亞家族的8個基因作為研究對象,這8個基因是ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF25,ZmDOF29,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45(表2),位于染色體1,2,4,5,7和10上 (圖1A)。除了ZmDOF45含有一個內(nèi)含子外,其他基因無內(nèi)含子 (圖1B)。這8個蛋白含有一個保守的C2-C2鋅指結構域 (圖1C)。對這8個蛋白序列和36個擬南芥DOF蛋白序列構成的數(shù)據(jù)列進行比對,利用MEGA 7軟件計算進化樹,結果表明,這8個蛋白確實分布于一個亞家族中 (圖1D)。這個亞家族又可以進一步細分為3個小家族,命名為Ⅰ,Ⅱ和Ⅲ,小家族Ⅰ包括4個基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF29和ZmDOF45;小家族Ⅱ包含有2個基因,ZmDOF14和ZmDOF37;小家族Ⅲ有2個基因,ZmDOF25和ZmDOF32。

        表2 8個ZmDOFs的生物信息學分析

        A.8個ZmDOF基因的染色體定位; B. 8個ZmDOF的基因結構分析;

        利用在線軟件MEME對這8個蛋白的保守基序進行了分析,選取了前6個motif進行了分析。結果表明,Motif1分布于所有的這8個蛋白序列中。表明這個保守的基因序列在這8個DOF蛋白中有重要的作用。這個基因序列的分布模式也支持進化樹的分類結果。一個家族內(nèi)蛋白具有相似的基因序列分布模式。亞家族Ⅲ的成員ZmDOF25和ZmDOF32都只有2個核心基序的分布。亞家族Ⅱ的成員ZmDOF14和ZmDOF37都有3個基序的分布且位置類似。

        A. 8個ZmDOF蛋白的基序分析;B. 8個ZmDOF蛋白的基序分布示意圖。

        選取玉米抽雄期根、莖、葉、雄花、穗和苞葉組織,利用熒光定量PCR技術,檢測了這8個基因的組織特異性表達模式。結果表明,這8個基因具有明顯的組織特異性表達特性 (圖3)。ZmDOF5,ZmDOF9和ZmDOF14主要在雌穗中表達,分別是根部表達的71,88和81倍以上。ZmDOF25和ZmDOF32主要在雄花中表達,分別是根部表達量的7 700倍和17倍。ZmDOF29主要在雄花和苞葉中表達,分別是根部表達量的33和14倍。ZmDOF45主要在雄花和根部表達,而ZmDOF37主要在苞葉中表達。這些表達數(shù)據(jù)表明,這些基因在玉米生長發(fā)育進程中可能發(fā)揮著重要作用。

        R,S,L,CB,T,E分別代表根、莖、葉、苞葉、雄花和幼穗。

        這8個基因應答逆境脅迫的響應模式未知。為了探測這8個基因對NaCl脅迫和PEG脅迫的響應模式,利用200 mmol·L-1的NaCl溶液和20% PEG 6000溶液處理三葉一心期的玉米幼苗,分別在處理后的0,1,6和24 h取葉片,利用熒光定量PCR技術探測了這8個基因的表達模式。所用到的引物見表1。在NaCl溶液脅迫處理1 h時,6個基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45,表達量出現(xiàn)明顯上調,分別比處理前上調了6.9,3.7,2.1,3.9,2.7和4.5倍,之后這些基因的表達量又出現(xiàn)部分恢復,在脅迫處理24 h時,其表達量恢復到處理前的水平。表明這些基因是應答NaCl脅迫的早期響應基因。ZmDOF25和ZmDOF29在脅迫1 h后,表達出現(xiàn)明顯上調。直到脅迫處理結束,其表達量還維持在較高的水平。表明這2個基因在整個NaCl脅迫處理期間都處于被誘導的狀態(tài)。在20%PEG 6000溶液脅迫處理1 h后,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14和ZmDOF25的表達量出現(xiàn)上調,分別比處理前上升了6.9,19.4,2.7和13.9倍。說明這些基因是應對脅迫處理的早期響應基因。而ZmDOF29,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45的表達量在脅迫處理24 h后出現(xiàn)了明顯上調,分別比處理前上調了2.8,4.7,2.1和3.7倍。這表明這些基因是應答PEG脅迫處理的晚期響應基因。這些表達數(shù)據(jù)表明,這8個基因可能在不同時間內(nèi)不同程度地參與調控玉米應答NaCl或PEG脅迫響應途徑。

        2.5 8個ZmDOFs對不同氮形態(tài)脅迫的響應模式分析

        本研究探測了這8個基因應答銨態(tài)氮脅迫和硝態(tài)氮脅迫的響應模式。結果表明,在這2種脅迫條件下,這8個基因的表達模式都發(fā)生了明顯變化(圖5)。在銨態(tài)氮脅迫處理1 h后,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF29,ZmDOF32和ZmDOF45都發(fā)生了明顯的上調,分別比處理前上調了3,4.5,3.5,6.6,5.1和4.9倍。銨態(tài)氮脅迫處理幾乎不影響對ZmDOF37基因的表達,表明ZmDOF37基因不參與玉米應答銨態(tài)氮脅迫途徑。ZmDOF25的表達量在銨態(tài)氮脅迫處理早期沒有變化,在脅迫處理的24 h時,表達量上調了2.6倍,表明ZmDOF25是玉米應答銨態(tài)氮脅迫的晚期響應基因。相比于銨態(tài)氮脅迫處理,在硝態(tài)氮脅迫處理下,這8個基因的表達量變化幅度更大。其中有7個基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF25,ZmDOF29,ZmDOF32和ZmDOF45,在硝態(tài)氮脅迫處理1 h后,出現(xiàn)了明顯的上調,之后這7個基因的表達出現(xiàn)回落。相對于處理前,這7個基因的表達量分別上調了13.3,58.2,43.4,5.2,45.7,23.7和59.8倍。表明這些基因是玉米應答硝態(tài)氮脅迫的早期響應基因。ZmDOF37的表達受脅迫處理的抑制,在脅迫處理的1 h,其表達量下調了58%,在脅迫處理6 h時,其表達量更是出現(xiàn)了劇烈下降,表明ZmDOF37是玉米應答硝態(tài)氮脅迫的負調控因子。這些表達數(shù)據(jù)表明,這8個基因在玉米應答氮脅迫的響應機制中可能發(fā)揮著生物學功能。

        圖4 8個ZmDOFs對鹽脅迫和PEG脅迫的響應模式

        圖5 8個ZmDOFs應答不同氮形態(tài)脅迫的響應表達模式

        3 結論與討論

        利用熒光定量PCR技術檢測了一個DOF亞家族基因在玉米抽雄期不同器官中的表達模式。 結果表明,這8個基因的表達具有明顯的器官特異性。在前人的研究中,以玉米自交系B73為試驗材料,利用RNA-Req技術,得出ZmDOF25主要在玉米的雄花、葉片和雌穗中表達,ZmDOF29在雌穗,ZmDOF32在幼嫩的莖、葉和雄花中表達,ZmDOF37在葉和穗部中表達[36]。而在本研究中,ZmDOF25在玉米的雄花中表達,ZmDOF29在苞葉和雄花中表達,ZmDOF32在雄花中表達,ZmDOF37主要在苞葉中表達。試驗材料的不同可能是造成這些數(shù)據(jù)差異的原因之一。本研究結果進一步補充了前人的研究,用熒光定量PCR進一步明確了這8個基因在玉米不同組織的表達模式,為研究這些基因在調控玉米組織器官生長發(fā)育進程提供有用的信息。

        葛敏等[37]利用土培的方法,在不同氮肥處理條件下,通過轉錄組測序比較了玉米V3期DOF基因家族的表達水平。其中,ZmDOF5,ZmDOF29和ZmDOF45沒有檢測到表達,ZmDOF9和ZmDOF25在高氮處理中表達,而低氮處理不表達,ZmDOF14則在高氮處理時不表達,而在低氮處理時表達,ZmDOF37則一直穩(wěn)定高表達。本研究利用更加靈敏的定量PCR技術,更能精細控制的水培系統(tǒng),研究這8個ZmDOFs應答不同氮形態(tài)的響應表達模式。與前人的研究結果類似,ZmDOF5,ZmDOF29和ZmDOF45的本底表達量比較低,但是這3個基因在應答不同氮形態(tài)脅迫時,其表達模式差異明顯,這3個基因對硝態(tài)氮脅迫表現(xiàn)敏感,都受到硝態(tài)氮脅迫的強烈誘導。ZmDOF9和ZmDOF25也受到硝態(tài)氮脅迫的強烈誘導,而不是抑制。不同品種的玉米幼苗在應答氮脅迫時的耐受能力有明顯的差異,鄭單958耐受低氮脅迫的能力要強于浚單20、先玉335和登海662[38]。后續(xù)試驗可以對這些品種的親本耐受低氮的能力進行比較研究。

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