郭世良，吳慧琳，朱瑤迪，趙莉君，馮青俊，李苗云，郝云鵬，趙改名

（1.漯河雙匯肉業(yè)有限公司，河南漯河 462000）（2.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院，河南鄭州 450000）（3.河南泌陽縣畜牧技術(shù)服務(wù)中心，河南駐馬店 463000）

發(fā)酵酸肉是我國西南少數(shù)民族地區(qū)傳統(tǒng)特色發(fā)酵肉制品，以豬肉為原料，添加米粉、食鹽及香辛料等在自然條件下經(jīng)厭氧發(fā)酵而成的特色肉制品。發(fā)酵過程中在微生物及酶的作用下蛋白質(zhì)、脂肪、碳水化合物及膽固醇等發(fā)生一系列生物降解反應(yīng)，產(chǎn)生大量多肽、氨基酸及脂肪酸等小分子化合物[1,2]，同時形成酸肉特有風(fēng)味，因此經(jīng)發(fā)酵后的酸肉較新鮮肉更易于人體消化[3,4]。

酸肉肽是發(fā)酵酸肉在適宜的蛋白酶條件下經(jīng)酶解、提取、濃縮、干燥等工藝制得。生物活性肽不僅具有較好的消化吸收及營養(yǎng)價值，同時還具有調(diào)節(jié)人體生理機能的作用[5]。生物活性肽是由氨基酸分子以不同組成、不同排列方式構(gòu)成的線性或環(huán)形結(jié)構(gòu)的肽類，具有多種人體代謝和生理調(diào)節(jié)功能，易消化吸收，抗菌、抗病毒、抗氧化等作用，生物活性肽還具有蛋白質(zhì)及其組成氨基酸所不具備的生理活性[6]。由于其眾多的生理功能，是當(dāng)前國際食品界最熱門的研究課題和極具發(fā)展前景的功能因子，生物活性肽在功能性食品的研究中具有重要的地位，是食品學(xué)界研究的熱點之一。

生物活性肽在生產(chǎn)加工過程中會發(fā)生氧化、水解及肽鏈結(jié)構(gòu)的改變，導(dǎo)致其生物活性降低甚至喪失[7]，食物中蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)在經(jīng)動物胃腸消化后被降解為氨基酸、小肽，在維持動物腸道健康、機體免疫功能方面具有重要意義[8]，因此，為使活性肽有效發(fā)揮最大生物活性，需要其在加工及儲藏過程中保持良好的穩(wěn)定性，同時在人體胃腸消化過程中保持良好生物活性?，F(xiàn)如今，對酸肉活性肽的研究越來越多，關(guān)于酸肉肽的研究主要集中在降血脂、ACE抑制作用及膽酸鹽結(jié)合能力等方面[9-11]，酸肉生物活性肽在環(huán)境中功能穩(wěn)定性的研究較少?；钚噪脑诩庸ぜ皯?yīng)用過程中受外界環(huán)境因素影響，發(fā)生水解、氧化、脫氨基或環(huán)化作用，使肽鏈結(jié)構(gòu)發(fā)生改變，生物活性隨之改變，進而導(dǎo)致生物活性降低甚至喪失[12]。因此，生物活性的更好的發(fā)揮需要具有較好的環(huán)境，使活性成分穩(wěn)定性能較好的保持，如加工過程中酸堿環(huán)境、輔料及溫度等對酸肉肽活性的協(xié)同拮抗作用。對酸肉肽氧化穩(wěn)定性的研究尤為重要，本實驗以O(shè)H自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力、還原力為評價指標(biāo)對酸肉肽在不同pH條件、食品原料、金屬離子、光照及體外模擬胃腸環(huán)境對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響，為酸肉肽在應(yīng)用過程中避免氧化活性損失、更好維持氧化活性提供基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

堿性蛋白酶（200 U/mg），Solarbio；甲醛，天津市富宇精細(xì)化工有限公司；硫酸，洛陽昊華化學(xué)試劑有限公司；溴麝香酚藍(lán)、酚酞，天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司；菲洛嗪（分析純），生工生物工程（上海）股份有限公司；1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）、5,5'-二硫代雙（2-硝基苯甲酸）（DTNB）、乙二胺四乙酸、硫酸亞鐵、酒石酸鉀鈉、1,10-菲啰啉、無水乙醇、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、N-（1-萘基）乙二胺鹽酸鹽、亞硝酸鈉、4-氨基苯磺酸、三氯乙酸、硼酸（分析純）均為國藥集體化學(xué)試劑有限公司。

N-1100旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器，上海愛郎儀器有限公司；SHB-III循環(huán)水式多用真空泵，鄭州長城科工貿(mào)有限公司；AE224電子天平，上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司；Neofuge1600離心機力新儀器上海有限公司；CU-240電熱恒溫水槽，上海一恒科學(xué)儀器有限公司；UV-2600紫外可見分光光度計，島津分析儀器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 樣品前處理

發(fā)酵酸肉加工工藝基本流程：

原料肉（五花肉）→清洗瀝水→預(yù)煮→冷卻→切塊（3×2×1 cm）→加米粉，食鹽混勻→裝壇→密封發(fā)酵90 d→真空包裝→滅菌→成品

酸肉經(jīng)去除表面輔料，剔除瘦肉中脂肪及肌筋、肌膜等，切碎均勻置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

參考WenSiying等[13]的方法，稍作修改。粗蛋白的提?。悍Q取10 g酸肉加60 mL水進行拍打均質(zhì)，以1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH=11.0，靜置1 h，6000 r/min離心10 min，上清液以0.1 mol/L HCl回調(diào)至pH=7.0，加90%的乙醇4 ℃沉淀12 h，6000 r/min離心取上清液，50 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)將上清液乙醇蒸出，獲得蛋白質(zhì)粗提液[14]。配置一定濃度蛋白液，以pH=8，溫度50 ℃條件下，堿性蛋白酶加熱水解1.5 h，沸水浴10 min滅酶活，6000 r/min離心10 min取上清液，上清液進行真空冷凍干燥，制得酸肉肽。

1.3 抗氧化活性的測定

1.3.1 OH自由基清除率

參考YanHongLi等[15]方法，樣品管：0.6 mL鄰二氮菲溶液（5 mmol/L）加0.4 mL磷酸鈉緩沖液（0.2 mol/L，pH=7.4）混勻，加0.6 mL粗肽液及0.6 mL EDTA（15 mmol/L），混勻，加0.6 mL FeSO4溶液（5 mmol/L）及0.8 mL H2O2（0.1%），搖勻37 ℃反應(yīng)1 h，536 nm測定樣品吸光度A樣品；損傷管：去離子水代替樣品，吸光度為A損傷；未損失管：去離子水代替樣品及H2O2，吸光度為A未損傷。

1.3.2 DPPH自由基清除率的測定

參考SheihChuan等[16]的方法。取2 mL 0.2 mM DPPH（95%乙醇溶解），加入2.0 mL粗肽液及對照溶液，混勻，避光反應(yīng)30 min，于517 nm處測定樣品吸光度，同時以2.0 mL 95%乙醇加2.0 mL樣品作空白對照A空白，2.0 mL DPPH自由基溶液加上2.0 mL 95%乙醇為對照A對照。

式中：A樣品、A對照和A空白分別為樣品組、對照組和空白對照組溶液的吸光度。

1.3.3 Fe2+螯合能力的測定

參考Lee[17]等方法，稍作修改。取1 mL樣品加0.05 mL FeCl2（2 mmol/L），混勻后加入0.2 mL菲洛嗪（5 mmol/L），搖勻靜置10 min，562 nm處測定吸光度值，去離子水代替樣品測得吸光度為A對照組.

1.3.4 還原力的測定

參考袁婭[18]等方法并稍做修改，取0.5 mL肽液、0.5 mL 0.2 M磷酸鹽緩沖液（pH=6）和0.5 mL 1%（W/V）鐵氰化鉀混合，于50 ℃恒溫水浴鍋保溫20 min后快速冷卻。加0.5 mL 10%（W/V）三氯乙酸溶液，混勻，靜置10 min，加0.5 mL蒸餾水和0.1 mL 0.1%（W/V）氯化鐵，搖勻靜置10 min，700 nm處測定吸光度值A(chǔ)i。A0為蒸餾水代替樣品，Aj為樣品與緩沖液。

1.4 外界環(huán)境對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

1.4.1 不同pH對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉粗肽粉配置成5 mg/mL粗肽溶液，分別將發(fā)酵酸肉粗肽液調(diào)至pH為3、5、7、9、11條件，室溫靜置1 h，測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.4.2 不同溫度對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉粗肽粉配置成5 mg/mL粗肽溶液，分別將發(fā)酵酸肉粗肽液置于20、40、60、80、100 ℃水浴鍋保溫2 h，冷卻后分別測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.4.3 不同金屬離子對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉粗肽粉配置成5 mg/mL粗肽溶液，分別5 mL 5 mg/mL粗肽溶液中加入500 μg/mL的K+、Ca2+、Zn2+、Mg2+、Cu2+等金屬離子溶液，室溫靜置1 h，測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.4.4 不同食品原料對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉粗肽粉配置成5 mg/mL粗肽溶液，分別向5 mL 5 mg/mL粗肽溶液中加質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的NaCl、葡萄糖、淀粉、蔗糖、乳糖等不同食品原料，室溫靜置1 h，測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.4.5 不同光照對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉粗肽粉配置成5 mg/mL粗肽溶液，分別將發(fā)酵酸肉粗肽液放置在暗處、室內(nèi)自然光（日光燈明暗間隔12 h），日光（光強1000~10000 lx，日光200 lx）條件下，分別放置0、1、2、3、4周時，測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.4.6 體外模擬胃腸對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

人工胃液配制：取濃度為1 mol/L稀鹽酸16.4 mL，加水約800 mL與胃蛋白酶10 g，搖勻后，加水稀釋至1000 mL。

人工腸液配制：500 mL蒸餾水溶解6.8 g磷酸二氫鉀，以0.1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH值至6.8；稱取10 g胰蛋白酶加水溶解，兩溶液混合，定容至1000 mL。

體外模擬胃腸消化參照江慎華等[19]以及YOU等[20]的方法：以人工胃液配制質(zhì)量濃度5 mg/mL酸肉粗肽液，37 ℃、130 r/min水浴振蕩2 h調(diào)節(jié)pH值為6.8，反應(yīng)結(jié)束，添加同體積人工腸液，37 ℃，45 r/min水浴振蕩2 h后沸水浴滅酶10 min，冷卻后3000 r/min離心20 min，取上清液分別測定OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力。

1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0進行處理分析，數(shù)據(jù)進行ANOVA方差分析，用Duncan’s法進行多重顯著性分析，結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差（Mean±SD）表示，p<0.05表明結(jié)果存在顯著性差異，利用Origin 8.0進行繪圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同pH對酸肉多肽穩(wěn)定性的影響

5 mg/mL酸肉肽在pH值為3~11范圍內(nèi)，其抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果如圖1所示：酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性在pH=5時，其OH自由基清除率最高為77.22%，與pH=3或pH=7時無顯著差異，而溶液pH=7時，其DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力最高，分別為85.56%、93.21%、85.61%。酸肉肽抗氧化活性在pH=3~11范圍，隨pH增高，抗氧化活性先增加后降低，且在pH=7的中性條件下，抗氧化活性越高，由此可見，過酸或過堿條件對酸肉肽抗氧化活性會有顯著影響，研究表明堿性條件下，肽分子結(jié)構(gòu)發(fā)生消旋作用使肽鏈結(jié)構(gòu)改變，影響生物活性的表達[21]，這與鄭志強[22]等研究對小麥肽抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果一致，因此酸肉肽儲存加工過程應(yīng)盡量避免強酸強堿環(huán)境。

圖1 不同pH條件對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.1 Effect of different pH on antioxidant stability of carnitine

2.2 不同溫度對酸肉多肽穩(wěn)定性的影響

5 mg/mL的酸肉肽溶液在溫度20~100 ℃范圍內(nèi)，抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果如圖2所示：酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性在溫度為40 ℃時，其OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力最高，分別為 90.88%、91.64%、74.54%、72.58%。酸肉肽抗氧化活性隨溫度的升高，抗氧化活性先增加后降低，且在溫度為40 ℃左右時，其抗氧化活性高，由此可見，溫度過低或過高條件下，不利于酸肉肽抗氧化活性的表達，可能是因為溫度過低，酸肉肽功能活性未被激發(fā)，其活性未能很好的表達，隨溫度升高至100 ℃時，抗氧化活性損失，這說明高溫處理可能會導(dǎo)致多肽分子發(fā)生降解作用，小分子肽結(jié)構(gòu)由一級肽鏈和二級結(jié)構(gòu)中化學(xué)鍵及作用力連接，導(dǎo)致其對熱敏感性不如蛋白質(zhì)等大分子高級結(jié)構(gòu)，因此，在受熱過程中，肽生物活性受熱影響降低[23]，因此酸肉肽儲存加工過程應(yīng)避免受高溫條件影響。

圖2 不同溫度對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of different temperature on antioxidant stability of carnitine

2.3 不同金屬離子對酸肉多肽穩(wěn)定性的影響

由于含蛋白水解物的營養(yǎng)食品在加工中經(jīng)常要與金屬接觸，故金屬離子對多肽穩(wěn)定性的影響非常重要。一些蛋白酶在金屬離子的作用下可以發(fā)生構(gòu)象的轉(zhuǎn)變，因此多肽分子對不同的金屬離子刺激響應(yīng)程度不同[24]。5 mg/mL的酸肉肽在不同離子環(huán)境下抗氧化穩(wěn)定性不同，相同濃度離子條件下K+還原力最高，Ca2+條件下OH自由基清除率最高，K+、Mg2+離子下DPPH·清除率最高，且無顯著性差異（p>0.05），在K+、Ca2+離子下Fe2+螯合能力最高，且無顯著性差異（p>0.05），總體來說，酸肉多肽對Cu2+、Zn2+敏感，而對K+、Ca2+活性保持率較好，這與趙謀明[25]等研究藍(lán)園鲹抗氧化肽結(jié)果一致，與鄭志強[22]等研究結(jié)果相反，導(dǎo)致不同原料生物肽抗氧化穩(wěn)定性不一致的原因可能是蛋白結(jié)構(gòu)不同，導(dǎo)致降解產(chǎn)物肽組成及結(jié)構(gòu)不同，對金屬離子結(jié)合能力存在差異。因此在酸肉肽的提取加工及貯藏中應(yīng)避免與含銅、鋅類材料器皿接觸。

圖3 不同離子環(huán)境對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.3 Effects of different ionic environments on antioxidant stability of carnitine

2.4 不同食品原料對酸肉多肽穩(wěn)定性的影響

5 mg/mL的酸肉肽在添加量5%的不同食品原料中抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果如圖4，抗氧化穩(wěn)定性綜合表現(xiàn)為乳糖>蔗糖>淀粉>葡萄糖>NaCl，糖類物質(zhì)與多肽糖基化反應(yīng)產(chǎn)物的溶解性更好，促進了氫原子或自由基中間體的形成，進而形成穩(wěn)定分子結(jié)構(gòu)，使氧化活性較好，但高濃度的糖環(huán)境對酸肉肽氧化穩(wěn)定性的影響較大，對活性肽存在抑制或破壞作用。胡曉[26]、游麗君等[27]研究發(fā)現(xiàn)蔗糖對鳶烏賊抗氧化肽、泥鰍多肽抗氧化活性的影響均不顯著，與本文結(jié)果相似，可能是一定條件下葡萄糖較乳糖、蔗糖更易與多肽發(fā)生美拉德等反應(yīng)，使多肽結(jié)構(gòu)改變，導(dǎo)致生物活性發(fā)現(xiàn)改變。鄭志強[22]、林松毅[28]等認(rèn)為NaCl是抗氧化肽的良好增效劑，Pereira等[29]認(rèn)為肽與含有NaCl的食品基質(zhì)之間相互作用有利于肽生物活性的維持。NaCl溶液電離產(chǎn)生的Na+和Cl-可中和活性分子表面電荷，破壞水化膜，導(dǎo)致供氫體或供質(zhì)子體暴露，結(jié)合大量自由基，使抗氧化活性增強。環(huán)境因素對不同活性分子影響結(jié)果不同主要因為不同分子活性因子結(jié)構(gòu)及表達形式不同，導(dǎo)致相同環(huán)境對不同原料中活性成分功能活性表達呈相反的現(xiàn)象，相反地，實驗結(jié)果表明，NaCl的添加，使粗肽液抗氧化活性受抑制，這可能是因為 NaCl對肽分子結(jié)構(gòu)造成一定程度破壞，加速氨基酸側(cè)鏈的裂解，導(dǎo)致抗氧化降低[30]。綜合酸肉活性肽在不同食品原料中抗氧化活性表達情況，結(jié)果表明，為保持酸肉肽抗氧化活性，應(yīng)盡量避免高NaCl、高葡萄糖環(huán)境。

圖4 不同食品原料對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effects of different food materials on antioxidant stability of carnitine

2.5 不同光照環(huán)境對酸肉多肽穩(wěn)定性的影響

不同光照環(huán)境條件下酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果如圖5所示。以質(zhì)量濃度5 mg/mL的酸肉肽在模擬自然光（12 h光照與12 h黑暗交替）、24 h光照及24 h黑暗條件下分別儲存0、1、2、3、4周后抗氧化穩(wěn)定性結(jié)果可看出，放置相同時間內(nèi)，三種不同環(huán)境下抗氧化活性表現(xiàn)為24 h光照<模擬自然光<24 h黑暗；0~4周內(nèi)，隨放置時間的延長酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性越低。結(jié)果表明，光照會降低酸肉肽抗氧化活性，因此為保持酸肉肽抗氧化活性，應(yīng)盡量保持避光環(huán)境。

圖5 不同放置時間及不同放置環(huán)境對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effects of different storage time and environment on antioxidant stability of carnitine

2.6 體外模擬胃腸消化對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響

酸肉肽在模擬人體胃消化及模擬人體胃腸消化，對不同處理后酸肉肽進行OH自由基、DPPH自由基及 Fe2+螯合能力、還原力進行測定，結(jié)果如圖6。經(jīng)模擬胃液消化處理后酸肉肽抗氧化活性最高，其 OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力分別為86.60%、78.27%、82.07%、77.21%，經(jīng)胃腸分步消化處理后酸肉肽抗氧化活性抗氧化活性較單獨模擬胃液消化時抗氧化活性減小，其OH自由基清除率、DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力分別為 84.44%、76.75%、82.22%、70.07%。未經(jīng)任何消化處理時，酸肉中提取的多肽發(fā)揮主要的抗氧化作用，而經(jīng)模擬人體胃液消化后大分子蛋白質(zhì)降解成小分子多肽，疏水性基團暴露，使其清除自由基能力增加，抗氧化活性增加[31]，經(jīng)腸液中胰蛋白酶酶解后，胃液中蛋白質(zhì)或多肽進一步水解成易于人體消化吸收的短肽及氨基酸，部分活性多肽裂解，從而導(dǎo)致抗氧化活性降低[22]，此結(jié)論與胡曉[26]、李致瑜[32]、ZHU等[33]人對鳶烏賊抗氧化肽、大黃魚內(nèi)臟抗氧化肽及金華火腿抗氧化肽的穩(wěn)定性研究結(jié)果一致。生物活性強度的高低主要依靠肽鏈中各氨基酸分子之間協(xié)同作用產(chǎn)生影響，因此，單獨的氨基酸分子相比小肽其抗氧化能力小。胃蛋白酶、胰蛋白酶作用點位及作用機理的不同，對大分子蛋白質(zhì)或多肽水解程度不同，形成不同的肽段，從而導(dǎo)致不同消化階段消化產(chǎn)物抗氧化活性差異顯著[34]。肽分子的抗氧化活性依靠肽鏈中氨基酸的協(xié)同作用，單獨的氨基酸活性不如小分子肽，因此在胃消化階段由于小分子肽及部分氨基酸的作用抗氧化活性較胃腸消化產(chǎn)物抗氧化活性高，酸肉肽在經(jīng)胃腸消化后抗氧化活性均高達70%以上，酸肉肽的高抗氧化穩(wěn)定性有利于其作為功能基料在未來功能性食品中的應(yīng)用。

圖6 胃腸消化環(huán)境對酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響Fig.6 Effect of gastrointestinal digestive environment on antioxidant stability of carnitine

3 結(jié)論

通過對酸肉肽在不同加工條件及模擬胃腸消化環(huán)境中抗氧化穩(wěn)定性進行分析，研究環(huán)境條件下酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性的影響。酸肉肽在不同pH、溫度、金屬離子、光照、食品原料及模擬胃腸環(huán)境下抗氧化穩(wěn)定性的結(jié)果表明，pH在3~11時，隨pH值升高，酸肉肽的抗氧化穩(wěn)定性先增加后降低，pH=7時，其DPPH自由基清除率、Fe2+螯合能力及還原力達到最大值；溫度 20~100 ℃時，隨溫度的升高，酸肉肽抗氧化活性先增加后降低，溫度在40 ℃左右時，OH自由基及DPPH自由基清除率、Fe2+螯合力、還原力最高；在K+、Ca2+、Mg2+金屬離子環(huán)境下，酸肉肽抗氧化穩(wěn)定性保持較好；酸肉肽在添加 5%乳糖、蔗糖及淀粉中其抗氧化活性有較好的提高作用；為保存酸肉肽抗氧化活性酸肉肽的儲藏應(yīng)避光儲藏，為酸肉肽在加工過程中環(huán)境的選擇提供一定依據(jù)。綜合分析，酸肉肽在加工提取及貯藏過程中應(yīng)避免過酸過堿、避免高溫、應(yīng)避免與含 Cu2+、Zn2+類材料接觸、避免高 NaCl及葡萄糖環(huán)境，同時保持避光環(huán)境，本試驗結(jié)果為酸肉肽在后期的生產(chǎn)應(yīng)用提供一定的理論基礎(chǔ)。