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        陽(yáng)春砂根莖多糖分離純化、結(jié)構(gòu)表征及抗氧化活性

        2021-08-31 07:49:14周洋楊得坡錢純果何翠淇鐘鏡堂徐新軍趙志敏
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2021年16期
        關(guān)鍵詞:質(zhì)量

        周洋,楊得坡,2,錢純果,何翠淇,鐘鏡堂,徐新軍,2,趙志敏,2*

        1(中山大學(xué) 藥學(xué)院,廣東 廣州,510006)2(廣東省現(xiàn)代中藥工程技術(shù)研究開發(fā)中心,廣東 廣州,510006)3(廣東呀依山珍稀藥材種植有限公司,廣東 河源,517428)

        砂仁為姜科植物陽(yáng)春砂(AmomumvillosumLour.)、綠殼砂(AmomumvillosumLour.varxanthioidesT.L.Wu et Senjen)或海南砂(AmomumlongiligularT.L.Wu)的干燥成熟果實(shí)。藥理學(xué)研究證實(shí),砂仁具有多種生物學(xué)活性,如:抗炎、抑菌、調(diào)節(jié)菌群、降血糖和抗氧化等[1]。其中陽(yáng)春砂仁是砂仁的主要來源,為藥食同源藥材,需求量大。陽(yáng)春砂為多年生草本植物,需每周期更新種植,以提升砂仁產(chǎn)量和品質(zhì),因此產(chǎn)生大量的陽(yáng)春砂植株,這些植株大多被隨意丟棄或焚燒,對(duì)環(huán)境造成一定污染。造成這種現(xiàn)象的原因是目前國(guó)內(nèi)外關(guān)于陽(yáng)春砂的研究多集中于種子團(tuán)及其中的揮發(fā)油,對(duì)其他部位和其他成分的研究較少,陽(yáng)春砂未能得到充分開發(fā)利用。尤小梅等[2]比較了陽(yáng)春砂仁根和葉水提物的抗氧化活性,水提物對(duì)羥自由基清除率最高可達(dá)100%,活性大小依次為:根>葉>茶多酚。多糖是水提物中的一類重要物質(zhì),關(guān)于陽(yáng)春砂根莖多糖(Amomumvillosrmrhizome polysaccharide,AVRP)的研究未見報(bào)道。

        多糖是由10個(gè)以上單糖通過糖苷鍵連接而成的聚合物,具有廣泛的生物活性,如:抗氧化[3]、免疫調(diào)節(jié)[4]、抗腫瘤[5]和降血糖活性[6]等。天然多糖因具有良好的生物活性和無毒性、良好的生物降解性和生物相容性等特點(diǎn),成為目前國(guó)內(nèi)外研究的熱點(diǎn)。關(guān)于陽(yáng)春砂多糖的研究較少,且多聚焦于陽(yáng)春砂仁粗多糖的提取方法和生物活性[7-9],關(guān)于陽(yáng)春砂除果實(shí)外其他部位多糖的研究未見報(bào)道。

        本研究通過對(duì)AVRP進(jìn)行分離純化、結(jié)構(gòu)特征及抗氧化活性的研究,旨在為充分利用陽(yáng)春砂打下基礎(chǔ),為AVRP的開發(fā)和應(yīng)用提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        實(shí)驗(yàn)材料:新鮮陽(yáng)春砂根莖(經(jīng)鑒定為陽(yáng)春砂),廣州市從化區(qū)藥材基地;

        實(shí)驗(yàn)試劑:?jiǎn)翁菢?biāo)準(zhǔn)品和三氟乙酸,美國(guó)Sigma-Aldrich公司;DEAE-52和Sephadex G-100填料,索萊寶公司;濃硫酸,廣州市梓興化玻儀器有限公司;氫氧化鈉,廣州化學(xué)試劑廠;苯酚,天津市大茂化學(xué)試劑廠。

        1.2 儀器與設(shè)備

        EYELA N-1100旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,日本東京理化器械株式會(huì)社;T6紫外可見分光光度計(jì),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;Spectrum Two傅里葉變換紅外(Fourier transform infrared,FT-IR)光譜儀,美國(guó)Perkin-Elmer公司;SHIMADZU LC-20A高效液相色譜儀(配ELSD-LT 2蒸發(fā)光檢測(cè)器),日本島津公司;FLUOstar Omega全自動(dòng)多功能酶標(biāo)儀,德國(guó)BMG Labtech公司。

        1.3 AVRP的提取

        稱取200 g粉碎后的陽(yáng)春砂根莖粉末,加入4 L 95%(體積分?jǐn)?shù))乙醇,80 ℃回流提取3 h,重復(fù)操作3次,將粉末烘干,得陽(yáng)春砂根莖脫脂粉末。200 g陽(yáng)春砂根莖脫脂粉末加4 L水,95 ℃提取3 h,重復(fù)3次,將水提液于60 ℃下減壓濃縮,得濃縮液。向濃縮液中加入4倍體積的無水乙醇,于4 ℃靜置12 h,離心收集沉淀。將沉淀復(fù)溶于去離子水中,得多糖溶液,向溶液中加入4倍體積的Sevage試劑(氯仿-正丁醇體積比4∶1),劇烈振蕩后離心,取上清液,重復(fù)操作,直至溶液中無變性蛋白質(zhì),凍干后得AVRP。

        1.4 AVRP的分離純化

        稱取AVRP 100 mg,配制成質(zhì)量濃度為20 mg/mL的溶液,經(jīng)DEAE-52纖維素離子交換柱分離,依次用濃度為0、0.1、0.3、0.5、1.0 mol/L NaCl溶液進(jìn)行洗脫,洗脫流速為1 mL/min,10 min/管,使用全自動(dòng)餾分收集器收集,苯酚-硫酸法進(jìn)行監(jiān)測(cè),得到0和0.1 mol/L NaCl洗脫下的2個(gè)組分,收集含量更多的0.1 mol/L NaCl溶液洗脫下來的組分,60 ℃減壓濃縮,用截留分子質(zhì)量為3 500 Da的透析袋透析,冷凍干燥得AVRPD-1。

        取AVRPD-1粉末20 mg,配制成5 mg/mL的溶液,經(jīng)葡聚糖凝膠Sephadex G-100柱分離,去離子水洗脫,洗脫流速為3 mL/10 min,洗脫時(shí)間為10 min/管,使用全自動(dòng)餾分收集器收集,苯酚-硫酸法測(cè)多糖含量,合并同一組份,經(jīng)濃縮、冷凍干燥后得到AVRP-1。

        1.5 AVRP-1的組分測(cè)定

        1.5.1 總糖含量測(cè)定

        采用苯酚-硫酸法[10]測(cè)定AVRP-1的總糖含量,葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品。精確稱取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品25.0 mg,定容至500 mL,得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液。分別取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液0、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0 mL,加去離子水補(bǔ)足至1.0 mL,即得不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,加入0.5 mL 60 g/L的苯酚溶液,混勻后緩慢滴加2.5 mL濃硫酸,室溫下靜置30 min,于490 nm處檢測(cè)吸光度值。以吸光度值為縱坐標(biāo),葡萄糖濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。配制質(zhì)量濃度為0.04 mg/mL的AVRP-1溶液,測(cè)定方法同上,重復(fù)3次,根據(jù)回歸方程求得總糖含量。

        1.5.2 蛋白質(zhì)含量測(cè)定

        蛋白質(zhì)含量測(cè)定采用Bradford法[11],牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)為標(biāo)準(zhǔn)品。精確稱取50.3 mg考馬斯亮藍(lán)G250,溶于25 mL 90%(體積分?jǐn)?shù))乙醇溶液中,加入85%(體積分?jǐn)?shù))磷酸溶液55 mL,定容至500 mL,濾紙過濾后存于棕色試劑瓶中,得考馬斯亮藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)溶液。精確稱量10.0 mg BSA溶于100 mL容量瓶中,去離子水定容,得BSA標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取0.01、0.02、0.04、0.08、0.12、0.16、0.20 mL BSA標(biāo)準(zhǔn)溶液于試管中,以去離子水補(bǔ)足至1.0 mL,分別加入考馬斯亮藍(lán)溶液1.0 mL,充分混勻,于595 nm處測(cè)定其吸光度值。以吸光度值為縱坐標(biāo),BSA濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。配制質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL的AVRP-1溶液,測(cè)定方法同上,重復(fù)3次,根據(jù)回歸方程求得蛋白質(zhì)含量。

        1.5.3 糖醛酸含量測(cè)定

        糖醛酸含量測(cè)定采用m-間羥基聯(lián)苯法[12],半乳糖醛酸(galacturonic acid,GalA)為標(biāo)準(zhǔn)品。精確稱取1.191 8 g四硼酸鈉,濃硫酸定容至250 mL,得0.012 5 mol/L四硼酸鈉溶液;精確稱取10.0 mg GalA,去離子水定容至100 mL,得0.1 mg/mL標(biāo)準(zhǔn)GalA溶液;精確稱取75.0 mg間羥基聯(lián)苯,用質(zhì)量濃度5 g/L NaOH溶液定容至50 mL,得1.5 mg/mL間羥基聯(lián)苯溶液。分別取標(biāo)準(zhǔn)GalA溶液0、0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL于試管中,加去離子水補(bǔ)足至1.0 mL,冰浴中冷卻數(shù)分鐘后,每個(gè)試管中加入四硼酸鈉溶液6.0 mL,輕輕振搖,沸水浴中加熱5 min后立即放入冰水浴中冷卻到室溫,加入1.0 mL間羥基聯(lián)苯,振搖混勻后于520 nm處測(cè)吸光度。以吸光度值為縱坐標(biāo),GalA濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。配制質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL的AVRP-1溶液,測(cè)定方法同上,重復(fù)3次,根據(jù)回歸方程求得糖醛酸含量。

        1.6 AVRP-1純度鑒定及相對(duì)分子質(zhì)量(Mw)測(cè)定

        利用高效凝膠滲透色譜法(high-performance gel permeation chromatography,HPGPC)測(cè)定樣品純度及Mw。取已知Mw的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品(5、12、25、50、150、410 kDa)配制成2.0 mg/mL的溶液,經(jīng)0.22 μm濾膜過濾后進(jìn)樣,進(jìn)樣量20 μL,洗脫時(shí)間30 min。色譜條件:色譜柱型號(hào)為PolySep-GFC-P4000,流動(dòng)相為水,流速為1.0 mL/min,柱溫35 ℃,檢測(cè)器為ELSD-LT Ⅱ型號(hào)的蒸發(fā)光檢測(cè)器(SHIMADZU),檢測(cè)器溫度為60 ℃,Gain值為10。以標(biāo)準(zhǔn)葡聚糖Mw的對(duì)數(shù)lgMw為縱坐標(biāo),保留時(shí)間為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線并得到回歸方程。取AVRP-1配制成2.0 mg/mL的溶液,相同條件下進(jìn)樣,記錄保留時(shí)間。根據(jù)樣品峰形鑒定AVRP-1的純度,標(biāo)準(zhǔn)曲線求得Mw。

        1.7 AVRP-1單糖組成分析

        參照文獻(xiàn)方法[13],采用HPLC法測(cè)定AVRP-1的單糖組成。

        混合標(biāo)準(zhǔn)單糖的1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolinone,PMP)衍生化:分別取0.05 mL 2.0 mmol/L單糖標(biāo)準(zhǔn)品:甘露糖(mannose,Man)、鼠李糖(rhamnose,Rha)、葡萄糖醛酸(glucuronic acid,GlcA)、GalA、葡萄糖(glucose,Glc)、半乳糖(galactose,Gal)、木糖(xylose,Xyl)、阿拉伯糖(arabinose,Ara)和巖藻糖(fucose,F(xiàn)uc)溶液于反應(yīng)管中混合,加入0.5 mol/L PMP甲醇溶液和0.3 mol/L NaOH溶液各0.45 mL,混勻后70 ℃反應(yīng)30 min,冷卻后加入0.46 mL 0.3 mol/L的HCl溶液中和,然后加入1.0 mL氯仿溶液,振搖,離心,棄氯仿層,重復(fù)3次去除過量的PMP,水層過0.45 μm濾膜后于HPLC檢測(cè)。HPLC條件:SHIMADZU高效液相色譜儀,Agilent ZORBAX XDB-C18柱,波長(zhǎng)250 nm,進(jìn)樣量20 μL,流速1 mL/min,流動(dòng)相為0.05 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 6.7,A)-乙腈(B)。洗脫梯度為:0~40 min 16% B等度洗脫;40~41 min 16% B降至14% B;41~54 min 14% B等度洗脫;54~55 min 14% B升至16% B;55~70 min 16% B(均為體積分?jǐn)?shù))等度洗脫。

        AVRP-1的衍生化:稱取AVRP-1樣品5.0 mg于耐壓管中,加入3 mol/L TFA溶液2.0 mL,120 ℃水解6 h,冷卻后加入甲醇減壓濃縮至干,重復(fù)3次除去多余的TFA,加入0.8 mL去離子水溶解。取0.1 mL完全水解的AVRP-1于反應(yīng)管中,加入0.5 mol/L PMP甲醇溶液和0.3 mol/L NaOH溶液各0.1 mL,混勻后70 ℃水浴反應(yīng)30 min,冷卻后加入0.105 mL 0.3 mol/L HCl溶液中和,加入0.2 mL去離子水稀釋,然后加入0.6 mL氯仿溶液,振搖,離心,棄氯仿層,重復(fù)3次除去過量的PMP,水層過0.45 μm濾膜后于HPLC檢測(cè)。

        1.8 FT-IR分析

        取AVRP-1干燥粉末,使用傅里葉紅外光譜儀在4 000~450 cm-1處進(jìn)行測(cè)定。

        1.9 AVRP-1抗氧化活性測(cè)定

        1.9.1 DPPH自由基清除能力測(cè)定

        參照文獻(xiàn)方法[14],測(cè)定AVRP-1的DPPH自由基清除活性。吸取50 μL 0.1 mmol/L DPPH乙醇溶液于96孔板中,加入50 μL不同質(zhì)量濃度(1.0~5.0 mg/mL)的AVRP-1溶液,該組設(shè)置為樣品測(cè)定組;以無水乙醇代替DPPH乙醇溶液作樣品對(duì)照組;以去離子水代替AVRP-1溶液作空白對(duì)照組;以維生素C代替AVRP-1溶液作陽(yáng)性對(duì)照組。以上各組混合均勻后,避光反應(yīng)30 min,于517 nm處測(cè)定吸光值。清除率計(jì)算如公式(1)所示:

        (1)

        式中:A0為空白對(duì)照組吸光度值;A1為樣品測(cè)定組吸光度值;A2為樣品對(duì)照組吸光度值。

        1.9.2 羥自由基清除能力測(cè)定

        參照文獻(xiàn)方法[14],測(cè)定AVRP-1的羥自由基清除活性。于96孔板的檢測(cè)孔中依次加入8 μL 18 mmol/L FeSO4溶液,8 μL 18 mmol/L水楊酸溶液,52 μL不同質(zhì)量濃度(1.0~5.0 mg/mL)的AVRP-1溶液,該組設(shè)置為樣品測(cè)定組;檢測(cè)孔中加入8 μL 18 mmol/L水楊酸溶液,60 μL去離子水,該組設(shè)置為空白組;檢測(cè)孔中加入8 μL 18 mmol/L FeSO4溶液,8 μL 18 mmol/L水楊酸溶液,52 μL去離子水,該組設(shè)置為對(duì)照組;檢測(cè)孔中加入8 μL去離子水,8 μL 18 mmol/L水楊酸溶液,52 μL AVRP-1溶液,該組設(shè)置為樣品對(duì)照組;以維生素C代替AVRP-1溶液作為陽(yáng)性對(duì)照組。以上組別均加入32 μL 0.1%(體積分?jǐn)?shù))H2O2啟動(dòng)反應(yīng),靜置30 min,于510 nm處測(cè)定吸光值。清除率計(jì)算如公式(2)所示:

        (2)

        式中:A0為空白組吸光度值;A1為對(duì)照組吸光度值;A2為樣品對(duì)照組吸光度值;A3為樣品測(cè)定組吸光度值。

        1.10 數(shù)據(jù)分析

        采用GraphPad Prism?version 7.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)處理,所有結(jié)果均表示為3次重復(fù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(SD)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 AVRP的分離純化

        DEAE-52纖維素柱為陰離子交換柱,使用不同濃度的NaCl溶液作為洗脫液可根據(jù)所帶電荷量強(qiáng)弱程度將樣品分成不同的組分。DEAE-52柱層析洗脫圖如圖1所示。經(jīng)過0、0.1、0.3、0.5、1.0 mol/L NaCl溶液洗脫,得到2個(gè)多糖組分,0和0.1 mol/L NaCl洗脫組分分別命名為AVRPD-0和AVRPD-1,收率分別為5.3%和13.8%。

        圖1 AVRP的DEAE-52洗脫曲線Fig.1 Elution curve of AVRP on DEAE-52 cellulose column

        凝膠色譜柱是利用分子篩的原理,根據(jù)分子質(zhì)量大小對(duì)樣品進(jìn)行分離,分子質(zhì)量大的樣品先流出色譜柱,分子質(zhì)量小的后流出。選擇含量更高的AVRPD-1進(jìn)一步分離純化。如圖2所示,AVRPD-1經(jīng)Sephadex G-100純化后,得到單峰,命名為AVRP-1,凍干后得白色粉末,收率為54.7%。

        圖2 AVRP-1的Sephadex G-100洗脫曲線Fig.2 Elution curve of AVRP-1 on Sephadex G-100 column

        2.2 AVRP-1的組分測(cè)定

        如表1所示,AVRP-1的總糖含量為90.34%,蛋白質(zhì)含量為0.64%,糖醛酸含量為43.59%,說明經(jīng)過Sevage試劑除蛋白和DEAE-52、Sephadex G-100柱層析進(jìn)行分離純化后,多糖較純。AVRP-1中糖醛酸含量較高,說明AVRP-1是酸性多糖。

        表1 AVRP-1的化學(xué)組成Table 1 Chemical composition of AVRP-1 n=3)

        2.3 AVRP-1純度鑒定及相對(duì)分子質(zhì)量測(cè)定

        多糖的理化特性和生物活性常與分子質(zhì)量聯(lián)系起來,如有文獻(xiàn)報(bào)道表明,多糖分子質(zhì)量越大,其免疫調(diào)節(jié)活性或抗腫瘤活性越強(qiáng)[15],但也有些研究者得出相反的結(jié)論[16]。這一現(xiàn)象說明影響多糖藥效的因素是多方面的,如單糖組成、糖苷鍵類型、三螺旋結(jié)構(gòu)等,分子質(zhì)量是其中的主要因素之一。影響多糖分子質(zhì)量的因素包括產(chǎn)地、采收時(shí)間、提取方法和干燥方法等[17-19]。傳統(tǒng)的熱水提取法會(huì)導(dǎo)致多糖分子在高溫和長(zhǎng)時(shí)間提取環(huán)境下聚合,得到分子質(zhì)量較大的多糖,超聲輔助提取、酶輔助提取等提取方法會(huì)降解多糖,得到分子質(zhì)量較小的多糖[18]。

        如圖3所示,AVRP-1只有單一的洗脫峰,且峰型對(duì)稱,可以證明AVRP-1為純化多糖。以葡聚糖對(duì)照品求得Mw標(biāo)準(zhǔn)曲線,線性回歸方程為y=0.749 4x+10.332,R2=0.997 1,式中y為葡聚糖Mw的對(duì)數(shù),x為保留時(shí)間。經(jīng)計(jì)算,AVRP-1的Mw為3 372.01 kDa,分子質(zhì)量較大。

        圖3 AVRP-1的HPGPC色譜圖Fig.3 HPGPC chromatogram of AVRP-1

        2.4 AVRP-1的單糖組成分析

        單糖組成在多糖的生物活性和多糖鑒別等方面起著重要的作用?;旌蠁翁菢?biāo)準(zhǔn)品和AVRP-1的HPLC譜圖分別見圖4-A和圖4-B。通過比對(duì)標(biāo)準(zhǔn)單糖的出峰時(shí)間可以確定單糖種類,根據(jù)各峰面積比確定單糖的摩爾比。AVRP-1由甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖這7種單糖組成,摩爾比為4.14∶4.98∶ 5.10∶ 23.77∶ 17.30∶ 28.51∶16.19。

        1-Man;2-Rha;3-GlcA;4-GalA;5-Glc;6-Gal;7-Xyl;8-Ara;9-FucA-混合標(biāo)準(zhǔn)單糖;B-AVRP-1圖4 混合標(biāo)準(zhǔn)單糖和AVRP-1的HPLC圖Fig.4 The HPLC spectra of mixed standard monosaccharide and AVRP-1

        2.5 FT-IR分析

        圖5 AVRP-1的紅外光譜圖Fig.5 The FT-IR spectrum of AVRP-1

        2.6 抗氧化能力測(cè)定

        AVRP-1和維生素C對(duì)DPPH自由基的清除活性如圖6-A所示,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度從1.0增加到5.0 mg/mL時(shí),清除能力逐漸增強(qiáng),但隨著多糖質(zhì)量濃度增加,增長(zhǎng)趨勢(shì)逐漸減小。AVRP-1對(duì)DPPH自由基的半數(shù)有效濃度(half-maximal effective concentration,EC50)為4.50 mg/mL。

        AVRP-1和維生素C對(duì)羥自由基的清除活性如圖6-B所示,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度從1.0增加到5.0 mg/mL時(shí),清除能力逐漸增強(qiáng),但隨著多糖質(zhì)量濃度增加,增長(zhǎng)趨勢(shì)逐漸減小,之后趨于平穩(wěn)。AVRP-1對(duì)羥自由基的EC50為2.47 mg/mL。AVRP-1對(duì)羥自由基的清除能力強(qiáng)于對(duì)DPPH自由基的清除能力。

        從抗氧化能力測(cè)定結(jié)果來看,AVRP-1的抗氧化能力一般,遠(yuǎn)小于維生素C,對(duì)羥自由基的清除活性大于對(duì)DPPH自由基的清除活性??寡趸钚詮?qiáng)弱通常是多種因素綜合作用的結(jié)果,影響多糖抗氧化活性的因素包括:糖醛酸含量、硫酸根含量、分子質(zhì)量大小、單糖組成和構(gòu)象等。有大量文獻(xiàn)[25]報(bào)道表明,多糖的抗氧化作用與其供氫能力有關(guān),糖醛酸基團(tuán)的存在會(huì)激發(fā)多糖中端基碳的氫原子,糖醛酸含量越高,抗氧化能力越強(qiáng)。AVRP-1中糖醛酸含量較高,推測(cè)AVRP-1的抗氧化活性主要來源于糖醛酸。多糖的分子質(zhì)量越小,抗氧化活性越強(qiáng),可能是由于大分子質(zhì)量多糖穿過細(xì)胞膜的滲透能力弱,且有研究顯示在相同重量基礎(chǔ)上小分子質(zhì)量多糖有更多還原羥基末端與自由基反應(yīng),因此抗氧化活性提高[26]。比如當(dāng)多糖采用不同提取方法提取后,微波輔助提取法和超聲輔助提取法會(huì)導(dǎo)致多糖降解,分子質(zhì)量減小,抗氧化活性明顯升高[27]。AVRP-1的分子質(zhì)量較大,推測(cè)這是限制AVRP-1發(fā)揮抗氧化活性的主要因素之一。此外,多糖抗氧化活性還受到單糖組成影響。ZHANG等[26]基于Pearson相關(guān)分析發(fā)現(xiàn),DPPH自由基清除活性與Ara和Gal含量相關(guān)(P<0.05),亞鐵離子還原能力與Gal含量相關(guān)(P<0.05);基于多元線性回歸分析發(fā)現(xiàn),多糖的金屬螯合能力隨著Xyl和Gal的含量升高而升高。

        A-DPPH自由基;B-羥自由基圖6 AVRP-1抗氧化活性Fig.6 Antioxidant activity of AVRP-1

        3 結(jié)論

        本研究成功從陽(yáng)春砂根莖中分離純化了一種主要的多糖組分AVRP-1,并對(duì)其結(jié)構(gòu)和抗氧化活性進(jìn)行了初步研究。結(jié)果表明,AVRP-1的總糖含量為90.34%,蛋白質(zhì)含量為0.64%,糖醛酸含量為43.59%;HPGPC結(jié)果顯示AVRP-1是純化多糖,分子質(zhì)量為3 372.01 kDa;由Man、Rha、GlcA、GalA、Glc、Gal和Ara這7種單糖組成,摩爾比為4.14∶4.98∶5.10∶23.77∶17.30∶28.51∶16.19。AVRP-1具有抗氧化活性,對(duì)DPPH自由基和羥自由基的EC50分別為4.50和2.47 mg/mL。本研究可為AVRP的結(jié)構(gòu)及其活性研究提供技術(shù)支持,為進(jìn)一步開發(fā)利用陽(yáng)春砂提供理論依據(jù)。

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