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        攜帶角質(zhì)細胞生長因子和低氧誘導(dǎo)因子-1α雙基因減毒沙門菌的遺傳穩(wěn)定性

        2021-08-19 01:03:40李欣魏靜蔣如如哈小琴
        中國生物制品學(xué)雜志 2021年8期
        關(guān)鍵詞:傳代沙門胃腸

        李欣,魏靜,蔣如如,哈小琴

        1.甘肅中醫(yī)藥大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院臨床檢驗診斷學(xué),甘肅 蘭州 730030;2.中國人民解放軍聯(lián)勤保障部隊第九四○醫(yī)院檢驗科,甘肅 蘭州 730050;

        20世紀70年代提出了基因治療的方法,近年逐步顯示出良好的臨床效果。多數(shù)情況下,基因治療是將遺傳物質(zhì)導(dǎo)入靶細胞以達到治療目的[1]?;蛑委熡捎谏贁?shù)患者出現(xiàn)嚴重副作用,使其應(yīng)用受限,隨著對基因相關(guān)分子和細胞機制的深入了解,研發(fā)了復(fù)雜的基因轉(zhuǎn)移工具,極大提高了基因治療的安全性和治療效果[2]。

        減毒沙門菌作為基因治療的活載體,具有巨大的研發(fā)潛力,在人類和獸醫(yī)學(xué)中應(yīng)用廣泛,隨著對細菌的遺傳學(xué)、生物學(xué)和致病機理的深入了解,使針對特定應(yīng)用沙門菌構(gòu)造的設(shè)計更合理[3]。本實驗采用的減毒沙門菌為減毒傷寒沙門菌Ty21a,是目前唯一用于制備人類疾病預(yù)防產(chǎn)品的減毒疫苗株,可提高機體免疫力,安全性較高[4]。Ty21a的致病性雖較低,但仍具有較高的侵襲性,口服后可在胃腸道黏膜定植[5]。針對該特性,本課題組前期實驗將角質(zhì)細胞生長因子(keratinocyte growth factor,KGF)及低氧誘導(dǎo)因子-1α(hypoxia inducible factor-1α,HIF-1α)基因連接至質(zhì)粒p IRES-SEQ中,構(gòu)建重組質(zhì)粒p IRESHIF-IRES-KGF,電轉(zhuǎn)入減毒沙門菌Ty21a中,成功構(gòu)建了攜帶KGF及HIF-1α雙基因的減毒沙門菌(Ty21a-pIRES-HIF-KGF,TPKH)。KGF可促進上皮細胞增殖,具有維持和恢復(fù)受損傷胃腸黏膜的完整性的作用[6];HIF-1α可使缺氧組織細胞保持一定的氧濃度,使細胞能耐受低氧狀態(tài)而存活[7]。由于質(zhì)粒p IRES-SEQ含有氨芐青霉素(Amp)基因位點,TPKH既可在Amp(+)LB平板上生長,以此篩選陽性菌落,又可在Amp(-)LB平板上生長。本實驗通過目的基因片段的大小和目的蛋白的表達水平來評價TPKH的遺傳穩(wěn)定性,為后續(xù)大量生產(chǎn)提供實驗依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 菌株及細胞 攜帶KGF和HIF-1α雙基因的TPKH由甘肅省干細胞與基因藥物重點實驗室提供;大鼠小腸上皮隱窩細胞(intestinal crypt cells,IEC-6)購自中國科學(xué)院上海細胞庫;Ty21a菌株購自中國食品藥品檢定研究院。

        1.2 主要試劑 Premix TaqTM、DNA marker DL2000及500 bp DNA marker購自日本TaKaRa公司;瓊脂糖、TAE電泳緩沖液及質(zhì)粒小提試劑盒購自北京索萊寶科技有限公司;SuperRed/GelRed核酸染色液購自北京白鯊生物技術(shù)有限公司;氨芐西林鈉購自石家莊華北制藥集團;鼠KGF及鼠HIF-1αELISA試劑盒購自上海江萊生物有限公司;革蘭染色液購自珠海貝索生物技術(shù)有限公司;杜氏磷酸鹽緩沖液(D-PBS)購自美國Gibco公司。

        1.3 菌株傳代 取100μL初始代TPKH菌株,接種于10 mL的LB培養(yǎng)液中,于37℃恒溫振蕩器中培養(yǎng)至A600約0.6時,取100μL菌液,采用四區(qū)劃線法分別涂布于Amp(+)和Amp(-)的LB固體培養(yǎng)板上,置37℃孵箱中培養(yǎng)24 h;分別取生長良好的單克隆菌落,置10 mL Amp(+)和Amp(-)的LB液體培養(yǎng)基中,于37℃恒溫振蕩器中培養(yǎng)至A600約0.6,即為第1代菌株。按該方法連續(xù)傳40代。

        1.4 菌體及菌落形態(tài)觀察 肉眼觀察10、20、30、40代菌落形態(tài)。同時取1滴0.9%氯化鈉溶液置于蓋玻片上,用接種環(huán)挑取10、20、30、40代菌落,加入0.9%氯化鈉溶液中,制作涂片,置酒精燈上方快速過3次,固定,進行革蘭染色,立即鏡下觀察。

        1.5 菌落P C R檢測 挑取5、10、15、20、25、30、35、40代菌落至0.2 mL PCR管中,加入10μL滅菌蒸餾水,混勻,蓋緊。100℃煮沸5 min,-20℃冷凍5 min,重復(fù)2次。2 795×g離心5 min,取上清,作為DNA模板,進行目的基因和真核表達啟動子CMV的擴增。啟動子CMV上游引物:5′-CCCAGTACATGACCTTATGGG-3′,下游引物:5′-GGAGACTTGGAAATCCCC-GT-3′,擴增產(chǎn)物大小為140 bp;KGF基因上游引物:5′-TGATCTAGAATGAGCTATGATTACATGGAAG-3′,下游引 物:5′-GACGCGGCCGCTTAAGTGATTGCCATAGGCAG-3′擴增產(chǎn)物大小為443 bp;HIF-1α基因上游引物:5′-CATGCTAGCCACCGATTCACCATGGAGGGC-3′,下游引物:5′-GTCACGCGTTCAGTTAACTTGATCC-AAAGCTCTG-3′,擴增產(chǎn)物大小為2 492 bp。PCR反應(yīng)體系為:Premix Taq 25μL,cDNA模板1μg,上、下游引物各1μL,滅菌蒸餾水補充至50μL。PCR擴增條件為:95℃30 s,55℃30 s,72℃1 min,共30個循環(huán)。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

        1.6 質(zhì)粒濃度及純度的測定 取10、20、30、40代菌落各1 mL,用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,通過紫外分光光度計測定A260及A280值,計算濃度和純度。

        1.7 轉(zhuǎn)染時間對I E C-6細胞中K G F和H I F-1α蛋白表達水平影響的檢測 將初始代TPKH和Ty21a菌落分別接種于10 mL LB Amp(+)和Amp(-)液體培養(yǎng)基中,37℃恒溫搖床中培養(yǎng)至A600為0.6時,2 795×g離心10 min,D-PBS洗滌3次,調(diào)整菌液濃度為1×108cfu/mL。將1×106個IEC-6細胞接種于25 cm2細胞瓶中,待細胞貼壁后,分別接種TPKH和Ty21a菌株,同時設(shè)PBS組,于37℃孵育2 h;棄菌懸液,D-PBS洗滌3次,加入含10 ng/mL慶大霉素的DMED培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1 h;D-PBS洗滌3次,加入含青-鏈霉素雙抗的完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng),于培養(yǎng)12、24、48、72 h時,采用鼠KGF及HIF-1αELISA試劑盒分別檢測KGF和HIF-1α蛋白的表達水平。

        1.8 T P KH代次對I E C-6細胞中K G F和H I F-1α蛋白表達水平影響的檢測 取初始代、10、20、30、40代TPKH菌落,按1.7項方法接種至IEC-6細胞,同時設(shè)PBS組,培養(yǎng)48 h,采用鼠KGF及HIF-1αELISA試劑盒分別檢測KGF和HIF-1α蛋白的表達水平。

        1.9 統(tǒng)計學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,試驗結(jié)果均采用均值±標準差()表示,組間比較采用單因素方差(One-Way ANOVA)分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 菌體及菌落形態(tài) 10、20、30和40代TPKH在Amp(+)和Amp(-)LB平板上的菌落形態(tài)基本一致,均為邊緣整齊,淡黃色、半透明,光滑濕潤的圓形菌落,均為革蘭陰性,見圖1和圖2。

        圖1 Amp(+)培養(yǎng)基中各代TPKH菌落及菌體形態(tài)Fig.1 Morphology of TPKH of various passages in Amp(+)medium

        圖2 Amp(-)培養(yǎng)基中各代TPKH菌落和菌體形態(tài)Fig.2 Morphology of TPKH of various passages in Amp(-)medium

        2.2 菌落P C R在Amp(+)和Amp(-)的LB平板上培養(yǎng)的TPKH菌落,均可擴增出140、443及2 492 bp的CMV、KGF及HIF-1α基因片段,大小與預(yù)期一致,見圖3和圖4。表明TPKH在傳代過程中無質(zhì)粒丟失現(xiàn)象,可穩(wěn)定遺傳。

        圖3 Amp(+)培養(yǎng)基中各代TPKH菌落PCR產(chǎn)物電泳圖Fig.3 Electrophoretic profile of colony PCR products of TPHK of various passages in Amp(+)medium

        圖4 Amp(-)培養(yǎng)基中各代TPKH菌落PCR產(chǎn)物電泳圖Fig.4 Electrophoretic profile of colony PCR products of TPHK of various passages in Amp(-)medium

        2.3 質(zhì)粒濃度及純度TPKH菌株在Amp(+)和Amp(-)培養(yǎng)基的傳代過程中,質(zhì)粒p IRES-HIF-IRES-KGF的濃度及純度均較穩(wěn)定,無明顯降低,見表1。

        表1 各代TPKH菌落中質(zhì)粒的濃度及純度Tab.1 Concentration and purity of plasmid in TPKH colonies of various passages

        2.4 轉(zhuǎn)染時間對I E C-6細胞中K G F和H I F-1α蛋白表達水平的影響 與PBS組和Ty21a組比較,TPKH組IEC-6細胞中KGF蛋白表達水平在轉(zhuǎn)染后12 h顯著升高(F=9.702,P<0.01),隨后逐漸降低(F=0.020~9.690,P>0.05);HIF-1α蛋白表達水平于轉(zhuǎn)染后12、24、48 h均顯著升高(F=21.186~24.559,P<0.01),72 h降低(F=4.639,P>0.05)。見圖5。

        圖5 不同轉(zhuǎn)染時間時IEC-6細胞中KGF(A)和HIF-1α(B)蛋白的表達水平Fig.5 Expression levelsof KGF(A)and HIF-1α(B)in IEC-6 cells after infection for various hours

        2.5 T P KH代次對I E C-6細胞中K G F和H I F-1α蛋白表達水平的影響 與PBS組比較,各代TPKH接種IEC-6細胞中的KGF及HIF-1α的蛋白表達水平均明顯增加(F=285.616~92.114,P<0.01);各代間的KGF及HIF-1α的蛋白表達水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(F=0.851~1.846,P>0.05),見圖6。表明代次對TPKH轉(zhuǎn)染細胞后的蛋白表達水平無明顯影響。

        圖6 不同代次TPKH感染IEC-6細胞中KGF(A)和HIF-1α(B)蛋白的表達水平Fig.6 Expression levelsof KGF(A)and HIF-1α(B)in IEC-6 cells infected with TPKH of various passages

        3 討論

        機體遭受嚴重創(chuàng)傷、燒傷、感染時可引起機體缺血、缺氧,從而誘發(fā)急性胃腸黏膜糜爛、潰瘍,甚至出血和穿孔,該現(xiàn)象稱為胃腸應(yīng)激損傷,是一種較常見的臨床疾病[8]。雖然目前的防治方法較多,如抗生素及中藥治療等,但療效均不佳。研究證實,KGF及HIF-1α能夠在機體缺血、缺氧的狀態(tài)下促進胃腸上皮細胞增殖、局部血管形成及胃腸道黏膜損傷愈合等,具有良好的防治缺血、缺氧引起胃腸應(yīng)激損傷的功能[9-10]。

        KGF是成纖維細胞生長因子家族的一員,又稱為成纖維細胞生長因子7(fibroblast growth factor-7,KGF7),是一種間充質(zhì)細胞衍生的旁分泌生長因子,參與表皮的穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)[11]。研究證實,在低氧狀態(tài)下,KGF對胃腸上皮細胞生長和維持有許多有益的作用,既能夠增強胃腸上皮的屏障功能,又能促進胃腸上皮細胞的增殖,減輕胃腸黏膜損傷[12]。HIF-1α是HIF-1的亞基,可被低氧誘導(dǎo),常氧下含量較少,當機體處于低氧狀態(tài)時,HIF-1能夠高表達[13]。近年研究證實,在缺氧狀態(tài)下,HIF-1參與血管生成、葡萄糖代謝、細胞增殖、細胞存活等生理反應(yīng),增加機體對缺氧的耐受性,保護機體免受低氧的損傷[14-16]。

        本實驗將TPKH在Amp(+)和Amp(-)的LB平板上連續(xù)傳40代后,多項檢測結(jié)果表明,每10代間菌體和菌落的形態(tài)基本一致,均符合沙門菌的形態(tài)特征;質(zhì)粒濃度穩(wěn)定,變化較小,表明傳代次數(shù)對減毒沙門菌的生長不產(chǎn)生影響,質(zhì)粒不會隨著傳代而丟失;傳代后TPKH每5代均可擴增出KGF、HIF-1α、CMV基因片段(分別為443、2 492和140 bp),表明在傳代過程中,KGF和HIF-1α不會隨傳代次數(shù)的增加而丟失。另外,初始代TPKH轉(zhuǎn)染IEC-6細胞后,KGF和HIF-1α蛋白水平轉(zhuǎn)染12 h時顯著上升(P<0.01),每10代間的蛋白表達水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),表明傳代次數(shù)不影響TPKH轉(zhuǎn)染細胞后KGF和HIF-1α蛋白的表達。

        綜上所述,TPKH的遺傳穩(wěn)定性較好,在連續(xù)傳代40代后,仍能穩(wěn)定表達其所攜帶的目的基因,本實驗為TPKH制劑的大規(guī)模生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。

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