吳玉清王永會(huì)李祥宋新賀李媛羅輯趙遠(yuǎn)
(1.鴻灌環(huán)境技術(shù)有限公司,江蘇 蘇州 215200;2.蘇州市吳江生態(tài)環(huán)境局,江蘇 蘇州 215200;3.常州大學(xué)環(huán)境與安全工程學(xué)院,江蘇 常州 213164)
近年來(lái),隨著工業(yè)的快速發(fā)展,人口的急劇增加,土壤污染日益嚴(yán)重,包括固體、液體污染物向自然界堆放和排放現(xiàn)象嚴(yán)重,有害的廢水滲透,以及隨雨水落入土壤的有害物質(zhì)[1]。其中染料污染尤為突出,這些污染影響微生物的生命活動(dòng),導(dǎo)致土壤系統(tǒng)因能量流動(dòng)變慢而不斷惡化,同時(shí)部分有害物質(zhì)由富集作用進(jìn)入人體間接影響人的身體健康。目前,染料污染已成為世界公害之一,每年全世界有大量染料垃圾進(jìn)入環(huán)境,污染土壤、地下水、河流和海洋。染料對(duì)土壤的污染主要是有機(jī)物染料在土壤中能夠長(zhǎng)期殘留,破壞土壤結(jié)構(gòu),影響土壤通透性[2]。同時(shí),污染物會(huì)進(jìn)入食物鏈最終危及人類健康。染料污染物在自然界很難被有效降解,傳統(tǒng)的物理化學(xué)方法不僅操作麻煩,投資巨大,處理效率低下,且存在二次污染,而微生物處理污染物技術(shù)具有處理速度快、消耗低、效率高、成本低、反應(yīng)條件溫和且無(wú)二次污染等顯著優(yōu)點(diǎn)[3],加之其技術(shù)開(kāi)發(fā)具有廣闊的市場(chǎng)前景,各國(guó)政府、科研工作者和企業(yè)家對(duì)此高度重視,而且目前對(duì)降解染料污染物的菌類研究較少,因此篩選染料廠遺址土壤中的微生物具有重要意義。
本次研究取樣于江蘇省泰興市黃橋鎮(zhèn)南沙社區(qū)染料污染遺址土壤,該區(qū)域?yàn)椤锻寥牢廴痉乐涡袆?dòng)計(jì)劃》擬在全國(guó)啟動(dòng)200個(gè)土壤污染治理修復(fù)試點(diǎn)示范項(xiàng)目的先期啟動(dòng)試點(diǎn)項(xiàng)目區(qū)域。該區(qū)域由于長(zhǎng)期工業(yè)生產(chǎn)活動(dòng),土壤中多種重金屬明顯累積并超過(guò)背景水平和相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)。項(xiàng)目區(qū)染料等固廢處置和廢水排放,導(dǎo)致周邊耕地、農(nóng)田地灌溉水源地河道和水體受污染,土壤和灌溉水污染直接威脅著農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全,危害人體健康,該項(xiàng)目的開(kāi)展刻不容緩。
土壤中的微生物是各種不同種類微生物的混合體,為了研究某些微生物的特征則需要把目的菌從混雜的微生物中分離出來(lái),這種獲得單一純培養(yǎng)的方法稱為微生物的分離與純化[4]。微生物代謝速度快,容易變異,因此在分離純化后需要進(jìn)行菌株保存。
最常用的方法是稀釋涂布法和平板劃線法。如果需要分離的微生物在微生物群體中的數(shù)量較少或生長(zhǎng)過(guò)慢,則需要使用選擇培養(yǎng)基,通過(guò)改變微生物在群體中的比例達(dá)到篩選的目的[5]。
本實(shí)驗(yàn)將從染料廠遺址不同地方3份土樣(2份染料出口下方土樣和1份垃圾堆附近土樣)中篩選出幾株特征明顯的不同種類的純培養(yǎng)并進(jìn)行菌種的保存。
本實(shí)驗(yàn)是篩選純化染料廠遺址土壤微生物,得到微生物的純培養(yǎng),主要是在稀釋涂布法的基礎(chǔ)上進(jìn)一步使用平板劃線法得到單一菌落。
通過(guò)傳統(tǒng)的篩選方法共篩選得到11株純培養(yǎng)。3個(gè)土樣(E2、E3、E4)經(jīng)梯度稀釋涂布分離得到菌落形態(tài)可知,在同等培養(yǎng)條件下,E3土樣內(nèi)微生物含量低于E2和E4。進(jìn)一步平板劃線培養(yǎng),得到11株形態(tài)差異較大特征明顯的純培養(yǎng),對(duì)應(yīng)其采集土壤分別編號(hào)為E21、E22、E23、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E43和E44,其特征如表2。其中幾種菌(E21、E33、E42)平板劃線后培養(yǎng)得到的菌落形態(tài)如圖1~3所示。
由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,在每個(gè)培養(yǎng)基中,劃線的最后部分均有單個(gè)菌落出現(xiàn),即說(shuō)明分離純化得到了純培養(yǎng)。
革蘭氏染色法[6](Gram stain procedure)是1884年丹麥病理學(xué)家Christain Gram創(chuàng)立的,之后在一些學(xué)者不斷改進(jìn)下成為細(xì)菌學(xué)中最重要的鑒別染色法。革蘭氏染色的目的是判斷分離、純化的土壤菌為革蘭氏陽(yáng)性菌或革蘭氏陰性菌,同時(shí)可以通過(guò)染色觀察菌的微觀性質(zhì)。
土壤經(jīng)梯度稀釋涂布、劃線分離、純化實(shí)驗(yàn)得到菌落特征差異較大的11種土壤細(xì)菌,革蘭氏染色,數(shù)碼生物顯微鏡下觀察、拍照并記錄結(jié)果。
通過(guò)革蘭氏染色實(shí)驗(yàn)得出11株菌的性質(zhì)。經(jīng)梯度稀釋涂布、劃線分離、純化實(shí)驗(yàn)得到菌落特征差異較大的11株菌株細(xì)胞經(jīng)革蘭氏染色后,在數(shù)碼生物顯微鏡下觀察拍攝照片,細(xì)菌形態(tài)如圖4~14所示。
由拍攝照片可看出,11株菌均被染成紫色,說(shuō)明此次篩選得到的細(xì)菌均為革蘭氏陽(yáng)性菌(G+)。進(jìn)一步觀察發(fā)現(xiàn),E21為兩端半圓形的桿菌,有居中不膨大的芽孢,存在細(xì)胞莢膜,成對(duì)排列;E22為弧菌,無(wú)芽孢,也不存在細(xì)胞莢膜,單個(gè)排列;E23為單個(gè)或成對(duì)排列的橢球形菌,存在莢膜,無(wú)芽孢;E24為兩端半圓形的鏈桿狀菌,有莢膜,無(wú)芽孢存在;E31為單個(gè)或成對(duì)排列的橢球形菌,有莢膜存在,無(wú)芽孢;E32為有莢膜,無(wú)芽孢,多個(gè)排列在一起呈鏈狀的橢球形菌;E33為兩端略尖形,無(wú)莢膜,無(wú)芽孢的棒桿狀菌;E41為多個(gè)排列在一起呈鏈狀的有莢膜無(wú)芽孢的球菌;E42為有莢膜,無(wú)芽孢,單個(gè)或成對(duì)排列的球形菌;E43為橢球形菌,多個(gè)不規(guī)則排列在一起,但非鏈狀,有莢膜,無(wú)芽孢;E44為有莢膜,無(wú)芽孢,單個(gè)過(guò)成對(duì)排列的橢球形菌[6]。
傳統(tǒng)的微生物鑒定方法就是利用其生理生化特性,且微生物的生理生化特征能夠表明該微生物在某些方面的特性,而這些特性能夠?yàn)槠鋵?shí)際應(yīng)用提供參考價(jià)值。
微生物在生長(zhǎng)代謝過(guò)程中將葡萄糖分解為丙酮酸,有些微生物能夠進(jìn)一步將丙酮酸轉(zhuǎn)化為甲酸、乙酸等,使pH降低,當(dāng)pH低于4.2時(shí),加入甲基紅指示劑,若變?yōu)榧t色,則該菌為甲基紅陽(yáng)性菌;如微生物分解葡萄糖產(chǎn)酸量少或不產(chǎn)酸,培養(yǎng)基pH在5.4以上,加入甲基紅指示劑呈桔黃色或不變色,則該菌為甲基紅陰性菌[7]。
通過(guò)甲基紅試驗(yàn)得出11株菌的產(chǎn)酸性。培養(yǎng)的菌液及空白對(duì)照培養(yǎng)基加入白色比色瓷盤(pán)內(nèi),滴加適量甲基紅指示劑后,E21、E22、E23、E31和E33與對(duì)照組對(duì)比顏色無(wú)變化;E32和E43在滴加指示劑后變?yōu)槌赛S色;E24、E41、E42和E44表現(xiàn)為紅色。部分結(jié)果如圖15~17所示,其中1為實(shí)驗(yàn)組,2為對(duì)照組。
根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,E24、E41、E42和E44為甲基紅陽(yáng)性,其余為甲基紅陰性。
某些微生物中含有過(guò)氧化氫酶,能催化H2O2分解成H2O和O2而有氣泡產(chǎn)生,由此反應(yīng)可知受檢菌是否含有過(guò)氧化氫酶[8]。
通過(guò)過(guò)氧化氫酶試驗(yàn)得出菌的過(guò)氧化氫酶性質(zhì)。向11株菌苔上滴加30%H2O2后,E21、E32、E41和E42明顯產(chǎn)生氣泡,說(shuō)明這幾種菌皆含有過(guò)氧化氫酶,即為過(guò)氧化氫酶陽(yáng)性;其余E22、E23、E24、E31、E33、E43和E44不產(chǎn)生氣泡,說(shuō)明這幾種菌不含有過(guò)氧化氫酶,為過(guò)氧化氫酶陰性。
氧化酶在有分子氧及細(xì)胞色素C存在時(shí)可氧化鹽酸對(duì)氨基二甲基苯胺,使之呈玫瑰紅到暗紫紅色。由此反應(yīng)可知受檢菌是否具有細(xì)胞色素氧化酶[8]。
通過(guò)檢驗(yàn)試紙得出氧化酶性質(zhì)。挑取受檢菌于氧化酶試紙上,觀察發(fā)現(xiàn),E21、E22、E24、E31、E32、E33、E41、E42和E44在10s變紅,說(shuō)明這些菌均為氧化酶陽(yáng)性菌,其余的E23和E43為顯示紅色,表明這些菌為氧化酶陰性菌。
經(jīng)過(guò)甲基紅實(shí)驗(yàn)、氧化酶試驗(yàn)以及過(guò)氧化氫酶試驗(yàn)結(jié)果可得出11株純培養(yǎng)的生理生化性質(zhì),結(jié)果如表2所示。
表2 生理生化性質(zhì)
結(jié)合細(xì)菌篩選后得到的菌落特征,革蘭氏染色特征以及生理生化試驗(yàn)結(jié)果,查閱《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》對(duì)得到的菌株進(jìn)行傳統(tǒng)方法的鑒定,可以得出,E21可能為巨大芽孢桿菌屬;E22為弧菌;E23可能為乳球菌屬;E24可能為球桿菌屬;E31可能為孿生球菌屬;E32可能為鹽水球菌屬;E33可能為微小桿菌屬;E41可能為糖球菌屬;E42可能為嗜熱糖球菌;E43可能為片球菌屬;E44可能為明串球菌屬[9]。
為了將分離、純化出的E21、E22、E23、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E43和E44 11種菌進(jìn)行鑒定及進(jìn)一步研究。使用Ezup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒提取分離、純化得到的11株細(xì)菌的總DNA,利用瓊脂糖凝膠電泳確定提取效果。瓊脂糖凝膠電泳法分離DNA,主要是利用分子篩效應(yīng)使不同大小的DNA分子遷移速度不同而分層,把分子量標(biāo)準(zhǔn)參照物和樣品一起進(jìn)行電泳即可達(dá)到檢測(cè)的目的[10]。
通過(guò)DNA提取試劑盒提取得到11株菌的DNA,將提取DNA的進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳采用凝膠成像系統(tǒng)在紫外燈下觀察拍照,如圖18所示。
其中,0泳道為NormalRunTM 250bp-Ⅳ DNA ladder產(chǎn)生的跑膠條帶,1~11泳道分別為E21、E22、E23、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E43、E44的DNA跑膠條帶,其中8和9電泳條帶清晰,說(shuō)明土壤菌E41和E42提取得到的DNA純度較高,其余均有或明或暗的條帶,說(shuō)明其它菌提取得到的DNA可能含有雜質(zhì)或者提取得到的DNA的量較少,由DNA maker提供的堿基對(duì)數(shù)可知,此次提取的DNA亮度條帶位置在15000bp左右。
為了進(jìn)一步確定篩選得到的微生物的菌屬,從染料廠遺址土壤中分離得到特征明顯的11株細(xì)菌(編號(hào)分別為E21、E22、E23、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E43、E44),在經(jīng)過(guò)傳統(tǒng)方法鑒定后,進(jìn)一步采用分子生物學(xué)鑒定方法來(lái)明確其中幾株細(xì)菌的種屬。
通過(guò)PCR擴(kuò)增的多個(gè)循環(huán),將DNA由少量指數(shù)式增長(zhǎng)得到大量DNA,通過(guò)DNA監(jiān)測(cè)公司測(cè)序得到堿基序列,登陸http://www.ncbi.nlm.nih.gov,將基因序列與BLAST數(shù)據(jù)庫(kù)中序列進(jìn)行序列分析比較,同時(shí)用MEGA5軟件,構(gòu)建Neighbor-Joining樹(shù),確定菌屬[11]。
通過(guò)PCR擴(kuò)增DNA,對(duì)其進(jìn)行瓊脂凝膠糖電泳實(shí)驗(yàn),紫外燈下拍攝照片,結(jié)果如圖19所示。其中,0泳道對(duì)應(yīng)為DNA maker 跑膠后產(chǎn)生的條帶,1~11泳道分別對(duì)應(yīng)PCR擴(kuò)增E21、E22、E23、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E43、E44的DNA跑膠后產(chǎn)生的條帶。由圖片可知,11株DNA的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的凝膠電泳條帶清晰,對(duì)應(yīng)位置約在200bp左右,為DNA的基因片段[12]。
將其中的E21、E42進(jìn)行測(cè)序,得到其基因片段序列。登陸序列比對(duì)網(wǎng)站NCBI,將E21和E42的基因片段序列與BLAST中的16srDNA序列進(jìn)行序列分析比對(duì),并與GenBank中已發(fā)表的16srDNA序列進(jìn)行同源性比較,結(jié)果見(jiàn)表3、4。
表3 菌株E21的16s rDNA序列BLAST結(jié)果
表4 菌株E42的16s rDNA序列BLAST結(jié)果
取得E21和E42的DNA相關(guān)序列的登記號(hào)和對(duì)應(yīng)的堿基序列,利用MEGA5構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),結(jié)果如圖20、21所示。
由圖20中E21系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)可知,E21菌株和巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium)親緣關(guān)系較近,與芽孢桿菌sp.B-jedd、sp.MT2及sp.FF4(Bacillus sp.B-jedd and Bacillus sp.MT2 and Bacillus sp.FF4)、psy芽孢桿菌(Bacillus psychrosaccharolyticus)有一定的親緣關(guān)系,與新種芽孢桿菌FJAT-14515(Bacillus cihuensis strain FJAT-14515)、中度嗜鹽菌BH030062(Pontibacillus chungwhensis BH030062)等親緣關(guān)系較遠(yuǎn)[13]。
由圖21中E42系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)可知,E42菌株和泛菌屬(Pantoea spI12)親緣關(guān)系較近,與腸桿菌屬(Enterobacter sp.FF18)有一定的親緣關(guān)系,與芽孢桿菌sp.HB-2(Bacillus sp.HB-2)等親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。
根據(jù)分子生物學(xué)方法得到結(jié)果表明,E21與巨大芽孢桿菌親緣關(guān)系較近,與傳統(tǒng)鑒定方法得到結(jié)果一致;E42與泛菌屬親緣關(guān)系較近,與傳統(tǒng)方法鑒定結(jié)果為嗜熱糖球菌有一定出入,因?yàn)閭鹘y(tǒng)方法鑒定具有一定的局限性。
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)對(duì)泰興某染料廠遺址土樣篩選純化共得到11株純培養(yǎng)。分別對(duì)這些純培養(yǎng)進(jìn)行革蘭氏染色及幾種傳統(tǒng)的生理生化性質(zhì)分析,提取DNA并用分子生物學(xué)的方法對(duì)其中幾種進(jìn)行同源性分析,鑒定菌屬,為研究微生物治理修復(fù)染料污染提供實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn)。
通過(guò)傳統(tǒng)的微生物篩選方法從3份土壤中共篩選、分離純化共得到11株特征明顯的細(xì)菌純培養(yǎng)。通過(guò)革蘭氏染色實(shí)驗(yàn)得到菌的微觀特征及革蘭氏性質(zhì),結(jié)果表明,E21、E33為短桿狀革蘭氏陽(yáng)性菌,E22為長(zhǎng)桿狀革蘭氏陽(yáng)性菌,E23、E24、E31、E32、E43、E44為橢圓形革蘭氏陽(yáng)性菌,E41、E42為圓形革蘭氏陽(yáng)性菌。
通過(guò)幾種生理生化反應(yīng)對(duì)這些純培養(yǎng)進(jìn)行分析。氧化酶試驗(yàn)結(jié)果顯示,E41、E21、E24、E31、E32、E33、E41、E42、E44為氧化酶陽(yáng)性,E22、E23、E43為氧化酶陰性;甲基紅試驗(yàn)結(jié)果得出,E24、E41、E42、E44為甲基紅陽(yáng)性,E21、E22、E23、E31、E32、E33、E43為甲基紅陰性;過(guò)氧化氫酶試驗(yàn)結(jié)果表明,E21、E32、E41、E42為過(guò)氧化氫酶陽(yáng)性,E22、E23、E24、E31、E33、E43、E44為過(guò)氧化氫酶陰性。
通過(guò)傳統(tǒng)方法,查閱《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》,對(duì)得到的菌株進(jìn)行傳統(tǒng)方法的鑒定,可以得出,E21可能為巨大芽孢桿菌屬;E22為弧菌;E23可能為乳球菌屬;E24可能為球桿菌屬;E31可能為孿生球菌屬;E32可能為鹽水球菌屬;E33可能為微小桿菌屬;E41可能為糖球菌屬;E42可能為嗜熱糖球菌;E43可能為片球菌屬;E44可能為明串球菌屬。
通過(guò)分子生物學(xué)技術(shù)成功鑒定了2株菌株。對(duì)提取得到11株菌的DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,選擇其中2個(gè)擴(kuò)增后的產(chǎn)物送去基因公司測(cè)序,與NCBI中數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì),利用MEGA5構(gòu)建系統(tǒng)樹(shù),發(fā)現(xiàn)E21和巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium)親緣關(guān)系最近,E42與泛菌屬(Pantoea sp.I12)親緣關(guān)系最近。