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        Kazachstania屬酵母在濃香型白酒糟醅中的分布特征及發(fā)酵功能

        2021-08-11 02:45:46游玲周榮清譚壹王濤喬宗偉趙東
        生物技術(shù)通報 2021年6期
        關(guān)鍵詞:濃香型乙酯酵母菌

        游玲 周榮清 譚壹 王濤 喬宗偉 趙東

        (1. 宜賓學院 固態(tài)發(fā)酵資源利用四川省重點實驗室,宜賓 644000;2. 五糧液股份有限公司,宜賓 644000;3. 四川大學輕工科學與工程學院,成都 610065)

        Kazachstania屬酵母最早由Zubkova[1]1971年提出,其細胞呈圓形或橢圓形,多邊出芽,可形成假菌絲,菌落光滑白色到棕褐色,包括20個種,模式種為K. viticola,Vaughan Martini等[2]于2011年將Kazachstania屬擴展到32種,包括5個分支[3],K. exiga、K. turicensis、K. bulderi、K. barnettii及K.humilis共同構(gòu)成該屬的一個重要分支[4]。已有研究表明,Kazachstania屬酵母廣泛分布于酸面團[5-6]、泡 菜[7-8]、青貯飼料[9]等植物乳酸發(fā)酵過程,同化乳酸,并水解葡萄糖醛糖苷作為異型發(fā)酵乳酸菌的代謝底物,促進其利用果糖產(chǎn)乙酸[10],K. turicensis還可通過調(diào)節(jié)腸道皮膚軸改善特應(yīng)性皮炎[11],呈現(xiàn)特殊益生作用,具有潛在商業(yè)應(yīng)用前景。

        濃香型白酒糟醅的乳酸含量通常在10-20 g/kg之 間,最 高 可 達100 g/kg以 上[12],可 能 選擇富集Kazachstania等耐乳酸酵母,但2017年之前未見Kazachstania屬酵母參與濃香型白酒發(fā)酵的相關(guān)報道[13],2018年,王鵬等[14]采用基于ITS序列的高通量測序技術(shù)發(fā)現(xiàn)江蘇某濃香型白酒糟醅中的優(yōu)勢酵母主要是Saccharomyces、Candida、Saccharomycopsis及Pichia,其 中 并 未 包 括Kazachstania屬酵母,但2019年,楊建剛等[15]應(yīng)用單鏈構(gòu)象多態(tài)性分析發(fā)現(xiàn)K. exigua是瀘州老窖旺盛發(fā)酵階段中的4種優(yōu)勢酵母種之一,張霞等[16]在五糧液發(fā)酵糟醅中也陸續(xù)分離到多株K. humilis酵母菌株。但迄今為止,關(guān)于Kazachstania屬酵母在濃香型白酒發(fā)酵糟醅中的分布及產(chǎn)乙醇、風味物質(zhì)情況仍不清楚。

        因此,本研究針對五糧液糟醅中的Kazachstania屬酵母研究其分布及主要發(fā)酵功能,不僅對解析濃香型白酒發(fā)酵機制具有重要意義,也有助于解析該酵母在泡菜、青貯飼料等乳酸發(fā)酵過程中的作用機理,進而開發(fā)新的調(diào)控策略,改善傳統(tǒng)發(fā)酵產(chǎn)品風味。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 試劑 理化分析所用試劑來自成都科龍試劑廠,色譜標樣來自sigma試劑公司,酵母DNA提取采用E.Z.N.A Yeast DNA試劑盒(OMEGA,US),糟醅DNA提取采用Fast DNATM Spin Kit for Soil試劑盒(MP Bio,USA)。

        1.1.2 培養(yǎng)基 采用WL培養(yǎng)基(青島海博)及乳酸YPD培養(yǎng)基(L-YPD,青島海博的YPD培養(yǎng)基每升添加5 mL乳酸)分離酵母,采用乳酸YPD培養(yǎng)基對糟醅中的酵母菌進行平板涂布計數(shù)。

        1.2 方法

        1.2.1 取樣 五糧液生產(chǎn)車間內(nèi),選取窖齡8年且正常生產(chǎn)的3口窖池,采用文獻[16]的取樣及DNA提取方法,分別取發(fā)酵0、4、12、18、24、30、40、60和68 d的上、下層糟醅樣品分別混勻,用于酵母平板計數(shù)、菌株分離及DNA提取。

        1.2.2 Kazachstania屬酵母豐度檢測 15 g樣品、2 g直徑為1 mm的無菌玻璃珠、15 mL緩沖液在50 mL離心管中劇烈混合15 min,2 000 r/min離心5 min,然后轉(zhuǎn)移上清液到另一個50 mL離心管中,無菌水洗滌并沉淀,重復(fù)兩次,合并3次上清液,14 000 r/min離心10 min。采用Fast DNATM Spin Kit for Soil試劑盒根據(jù)使用說明提取沉淀總DNA,采用引物NL1(5′-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3′)和NL4(5′-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3′)擴增D1/D2特征序列,將通過瓊脂糖凝膠電泳檢查合格的PCR產(chǎn)物送美吉測序公司(上海)測序。將獲得的所有OTU與酵母模式菌株的相應(yīng)序列進行比對,計算與Kazachstania屬酵母分類單位相同的OTU序列數(shù)量占總OTU數(shù)量的比例,得到Kazachstania屬酵母在酵母群體中的豐度。

        1.2.3 酵母計數(shù)及菌株分離鑒定 酵母計數(shù):樣品經(jīng)無菌水連續(xù)稀釋后,涂布于添加0.1 g/L氨芐青霉素的乳酸YPD培養(yǎng)基及WL培養(yǎng)基,28℃培養(yǎng)48 h,選擇具有30-100個菌落的L-YPD平板計數(shù),所得數(shù)量乘以Kazachstania屬酵母豐度即為Kazachstania屬酵母數(shù)量,以此繪制其在發(fā)酵過程中的生長曲線。

        菌株鑒定:分別挑取WL及L-YPD培養(yǎng)基上的酵母單菌落,經(jīng)3次純化后接種至L-YPD瓊脂培養(yǎng)基,28℃培養(yǎng)48 h,挑取新鮮菌落至1.5 mL EP管,按照E.Z.N.A Yeast DNA試劑盒說明書提取菌株DNA,使用引物NL1和NL4擴增其26S rDNA特征序列,將通過瓊脂糖凝膠電泳檢查合格的PCR產(chǎn)物送派森諾公司(上海)測序,所得序列提交至GenBank進行BLASTN(www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)比對,將與模式菌株26S rDNA序列相似性大于99%的菌株鑒定為該種。

        1.2.4 固態(tài)發(fā)酵實驗 發(fā)酵糟醅制備:以多次煮沸清洗并滅菌的糠殼基質(zhì)作為固態(tài)載體,吸附4倍重量的五糧粉(按生產(chǎn)工藝配比,即28%高粱+18% 糯米+22%大米+16%小麥+8%玉米),調(diào)節(jié)水分含量到55%,滅菌后接種0.5%根霉,再滿瓶分裝到已滅菌的250 mL組培瓶中,每瓶裝入糟醅重量為150±12 g。

        發(fā)酵:酵母菌株在乳酸YPD培養(yǎng)基中28℃活化培養(yǎng)16-24 h至OD560nm在0.5-0.6之間,再接種10 mL酵母培養(yǎng)液至發(fā)酵糟醅中,25℃發(fā)酵20 d,發(fā)酵結(jié)束時檢測糟醅中乙醇及風味物質(zhì)含量,每個處理設(shè)3個重復(fù),結(jié)果取其平均值。

        1.2.5 糟醅成分分析 取100 g糟醅,加入200 mL蒸餾水,常壓蒸餾,收集餾出液至100 mL,參考文獻[17],采用氣相色譜法(安捷倫公司,7890A,配FID檢測器)通過LZP930毛細管色譜柱(30 m×0.32 mm×0.50 μm)測定糟醅餾出液中的乙醇及主要風味物質(zhì)含量。

        部分菌株采用頂空固相萃取法檢測其固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)非極性風味物質(zhì)的相對含量:準確稱取1.5 g糟醅及1 g氯化鈉于20 mL頂空瓶中,再加入4 mL超純水和25 μL 4-辛醇(內(nèi)標)混勻,采用SUPELCO 57328萃取頭70-80℃萃取10-15 min,平衡1 min。GC-MS條件:進樣口和檢測器溫度均為250℃,載氣為He,流速1.5 mL/min,起始溫度40℃,保持3 min,然后以3℃/min的速率升溫至230℃,保持15 min。電子轟擊能量為70 eV,離子源溫度為230℃,四級桿溫度150℃。檢測結(jié)果以通過內(nèi)標校正后的峰面積體現(xiàn)。

        采用直接滴定法測定糟醅中還原糖含量[18],采用酸堿滴定法測定糟醅酸度[19],采用常溫烘干法測定糟醅水分[20]。

        1.2.6 數(shù)據(jù)處理 采用mega 6.0軟件繪制系統(tǒng)發(fā)育圖,采用SPSS19.0軟件進行顯著性分析,采用simca-p軟件進行主成分分析。

        2 結(jié)果

        2.1 Kazachstania屬酵母在糟醅中的分布特征

        在濃香型白酒糟醅中共檢測到屬于K. exigua的52個OTU及屬于K. humilis的7個OTU,這兩個種在發(fā)酵過程中的豐度變化如圖1所示,可以看出,在濃香型白酒4-18 d的主發(fā)酵期內(nèi),K. exigua在上下層糟醅酵母群體中的豐度一直維持在50%以上,是絕對優(yōu)勢種;K. humilis在上層糟醅中的豐度明顯高于下層糟醅,這可能是由于上層糟醅中的溶氧更為充足,推測K. humilis對缺氧環(huán)境的耐受性相對較差。

        圖1 Kazachstania屬酵母在濃香型白酒發(fā)酵糟醅中的豐度變化Fig. 1 Relative abundance of Kazachstania yeast during the fermentation of strong flavor Baijiu

        圖2 展示了糟醅發(fā)酵過程中Kazachstania屬酵母數(shù)量變化趨勢,可以看出,發(fā)酵4 d時,K. exigua酵母的數(shù)量就已超過啟動發(fā)酵所需的最低酵母數(shù)量(1×105CFU/g)[21],在4-18 d的主發(fā)酵期內(nèi),其數(shù)量維持在5×105CFU/g以上,高峰期時其數(shù)量在2×106CFU/g以上,是完成濃香型白酒主發(fā)酵的主要酵母,而K. humilis酵母僅在8-18 d期間的上層糟醅中數(shù)量超過1×105CFU/g,表明其在濃香型白酒主發(fā)酵過程中起輔助作用。并且,這兩種酵母的數(shù)量在24 d后均迅速降至1×105CFU/g以下,表明Kazachstania屬酵母主要在0-24 d內(nèi)影響乙醇及風味物質(zhì)的生成。

        圖2 Kazachstania屬酵母在濃香型白酒發(fā)酵糟醅中的數(shù)量變化Fig. 2 Number of Kazachstania yeast during the fermentation of strong flavor Baijiu

        2.2 Kazachstania屬酵母菌株的分離鑒定

        從WL及乳酸YPD培養(yǎng)基上共分離到306株菌落大小、顏色、質(zhì)地、氣味及細胞形態(tài)等方面不完全相同的酵母菌株,其中93株的26S rDNA序列與Kazachstania屬酵母模式菌株對應(yīng)序列相似性大于99%,包括63株未在高通量測序中檢測到的K. turicensis酵母菌株及30株K. humilis酵母(圖3)。未能分離到在高通量測序中檢測到的K. exigua酵母,但高通量測序結(jié)果顯示,豐度最高、與K. exigua標準菌株(GenBank 序列號MK394139.1)相似度達到100%、長度為272 bp的代表OTU有248 bp與鑒定為K. turicensis的純培養(yǎng)酵母菌株的26S rDNA序列部分序列完全一樣,二者很可能屬于同種酵母,因此,綜合高通量測序及純培養(yǎng)研究結(jié)果,推測濃香型白酒糟醅中的優(yōu)勢酵母可能是K. turicensis酵母。

        圖3 Kazachstania屬酵母純培養(yǎng)菌株基于26S rDNA序列的系統(tǒng)發(fā)育分析Fig. 3 Phylogenetic analysis of Kazachstania isolates based on 26S rDNA sequence

        并且,濃香型白酒糟醅中的Kazachstania屬酵母純培養(yǎng)菌株呈現(xiàn)出豐富的形態(tài)多樣性及26S rDNA序列多樣性,63株K. turicensis酵母菌株中的19株26S rDNA序列完全一樣,44株26S rDNA序列存在0.5%以內(nèi)的差異,30株K. humilis酵母菌株包括3種各不相同的26S rDNA序列,1株(LA4-7)與K. humilis CBS:5658(KY106507.1)的相似度最高,但也僅有98.69%,有待進一步確認其分類地位。

        2.3 Kazachstania屬酵母對糟醅理化性質(zhì)的影響

        分別接種63株K. turicensis酵母及30株K. humilis酵母純培養(yǎng)菌株到模擬糟醅中研究其固態(tài)發(fā)酵特征,從表1可以看出,K. turicensis、K. humilis、S. cerevisiae對糟醅主要理化指標的影響存在種一級的顯著差異。從對還原糖的利用來看,接種K. humilis的糟醅在發(fā)酵結(jié)束后水分顯著高于其他兩個種屬,殘?zhí)呛匡@著低于其他兩個種屬,表明糟醅內(nèi)的代謝特別是分解代謝更加旺盛,K. humilis酵母對糟醅中還原糖的利用更加充分,但其發(fā)酵過程CO2損失導(dǎo)致的失重并不比其他兩個種屬高,表明其旺盛的分解代謝不一定與產(chǎn)乙醇有關(guān),而接種該酵母的糟醅酸度也顯著低于其他兩個種屬,表明其代謝與中間代謝產(chǎn)物有機酸的生成關(guān)系也較小,推測該酵母可能產(chǎn)生較多的其他發(fā)酵副產(chǎn)物。

        表1 Kazachstania屬酵母菌株對糟醅主要理化指標的影響Table 1 Effects of Kazachstania yeast strains on physicochemical indexes of fermented grains

        酵母對糖的利用也存在菌株水平的差異。以K. turicensis酵母為例,63株K. turicensis酵母中的27株對糖的利用率大于80%,有4株酵母菌對糖的利用率高達90%,其余39株酵母菌對糖的利用率在65%-80%,總體上盡管60%的K. turicensis酵母菌株糖利用率不高,但仍有1株K. turicensis酵母菌株可使發(fā)酵后糟醅殘?zhí)呛拷抵?.7%,水分64.7%,發(fā)酵失重達27.6 g,遠高于其他K. turicensis酵母菌株,體現(xiàn)出旺盛代謝特征,此類K. turicensis酵母菌株可能是提高糟醅原料利用率的主力。

        從對糟醅酸度的影響來看,與K. humilis 相比,K. turicensis在發(fā)酵過程中產(chǎn)生更多有機酸,這些有機酸一方面可增加糟醅酸度抑制發(fā)酵;另一方面產(chǎn)生的有機酸也是重要風味物質(zhì)以及合成酯類物質(zhì)的前體。

        2.4 Kazachstania屬酵母菌株產(chǎn)乙醇特征

        從圖4可以看出,Kazachstania屬酵母固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)乙醇能力存在菌株水平上的明顯差異,K. turicensis酵母菌株固態(tài)發(fā)酵糧食的平均乙醇產(chǎn)量為4.94 mL/100 g,其中73%的菌株產(chǎn)乙醇量在3-7 mL/100 g,38%的菌株產(chǎn)乙醇量在5-7 mL/100 g,最高產(chǎn)量為8.95 mL/100 g;30株菌K. humilis酵母菌株的平均乙醇產(chǎn)量為5.67 mL/100 g,高于K. turicensis,其中33%的K. humilis菌株產(chǎn)乙醇量在5-7 mL/100 g之間,4株菌的乙醇產(chǎn)量超過9 mL/100 g,1株菌的乙醇產(chǎn)量高達11.11 mL/100 g。總體上,考慮到濃香型白酒糟醅中的乙醇生成量一般在5-6 mL/100 g[22],Kazachstania屬酵母足以滿足濃香型白酒發(fā)酵產(chǎn)乙醇的要求,分離到的多株固態(tài)發(fā)酵高產(chǎn)乙醇菌株具有廣泛的應(yīng)用價值。

        圖4 Kazachstania屬酵母菌株固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)乙醇情況Fig. 4 Ethanol production of Kazachstania strains in solid state fermentation

        2.5 Kazachstania屬酵母產(chǎn)風味物質(zhì)特征

        從表2可以看出,Kazachstania屬酵母產(chǎn)風味物質(zhì)總量遠高于對照S. cerevisiae,K. turicensis酵母主要產(chǎn)異戊醇、乙酸異戊酯、糠醇、β-苯乙醇等風味物質(zhì),63株K. turicensis酵母均可產(chǎn)乙酸異戊酯及β-苯乙醇,且賦予糟醅特殊的花果香氣的多株K. turicensis酵母菌株均高產(chǎn)乙酸異戊酯、β-苯乙醇等風味物質(zhì),1株K. turicensis酵母產(chǎn)β-苯乙醇量高達1 397 mg/kg,高于已有報道的所有酵母菌株,可能具有特殊應(yīng)用價值。僅有3株K. turicensis酵母產(chǎn)乙酸乙酯,1株菌的乙酸乙酯產(chǎn)量達10.3 g/kg,6株產(chǎn)乳酸乙酯,但產(chǎn)量不超過2.24 mg/kg。

        表2 Kazachstania屬酵母在固態(tài)糟醅中的部分風味物質(zhì)Table 2 Some flavor compounds of Kazachstania yeast in solid fermented grains

        K. humilis菌株在固態(tài)發(fā)酵糟醅中產(chǎn)風味物質(zhì)情況與K. turicensis酵母類似,但其異戊醇、糠醇、質(zhì)-苯乙醇產(chǎn)量顯著高于K. turicensis酵母,30株K. humilis酵母菌株的β-苯乙醇平均產(chǎn)量為558.3 mg/kg,比K. turicensis酵母高66.7%,而平均乙酸產(chǎn)量僅相當于K. turicensis酵母的1/3左右,表明該酵母可在不增加糟醅酸度的同時,提高糟醅中呈花果香風味特征的物質(zhì)的含量。

        進一步地,采用氣質(zhì)聯(lián)用色譜(GC-MS)通過頂空固相萃取法(SPME)分析26株K. turicensis酵母、30株K. humilis酵母菌株及3株S. cerevisiae酵母菌株發(fā)酵后的糟醅,發(fā)現(xiàn)Kazachstania屬酵母可產(chǎn)47種弱極性風味物質(zhì),但從圖5(1株K. humilis酵母菌株距離所有菌株均較遠,未包括在圖中)可以看出,基于47種風味物質(zhì)含量差異的主成分分析無法區(qū)分K. turicensis及K. humilis酵母,表明K. turicensis及K. humilis酵母產(chǎn)風味物質(zhì)存在菌株水平的差異,但K. turicensis及K. humilis酵母明顯區(qū)別于僅能產(chǎn)18種風味物質(zhì),且產(chǎn)量也較低的S. cerevisiae酵母。

        圖5 基于3種酵母產(chǎn)47種風味物質(zhì)含量差異的主成分分析圖Fig. 5 Principal component analysis based on the content difference of 47 flavor compounds produced by three yeast species

        從風味物質(zhì)種類來看,K. turicensis及K. humilis所產(chǎn)風味物質(zhì)主要有異戊酸乙酯、乙酸異戊酯、苯甲醛、苯酚、己酸乙酯、苯乙醛、2-甲氧基酚、β-苯乙醇、甘菊藍、丁二酸雙乙酯、辛酸乙酯、苯乙酸乙酯、乙酸苯乙酯、-亞乙基苯乙醛、癸酸乙酯、石竹烯、十二酸乙酯、石竹烯、十四酸乙酯、9-十六碳烯酸、十六酸乙酯、亞油酸乙酯、油酸乙酯、十八酸乙酯、9,12-十八二烯酸丙酯、8-十六炔等26種,所有菌株均可產(chǎn)較多的藍-苯乙醇及多株高級脂肪酸乙酯,賦予白酒花果香風味特征[23]。1株K. turicensis菌株及1株K. humilis菌株產(chǎn)2-甲氧基-4-乙烯基酚,2株K. turicensis菌株產(chǎn)角鯊烯,可賦予白酒特殊風味及保健價值[24-25],具有很好的應(yīng)用價值。

        從風味物質(zhì)產(chǎn)量來看,K. turicensis酵母的揮發(fā)性產(chǎn)物中,平均相對含量大于1%的風味物質(zhì)包括β-苯乙醇(30.54%)、丁二酸二乙酯(2.45%)、辛酸乙酯(1.25%)、乙酸苯乙酯(1.04%)、十四酸乙酯(3.05%)、十六酸乙酯(23.70%)、亞油酸乙酯(8.03%)、油酸乙酯(15.86%)。K. humilis酵母揮發(fā)性產(chǎn)物中平均相對含量大于1%的風味物質(zhì)包括β-苯乙醇(31.03%)、丁二酸二乙酯(1.83%)、乙酸苯乙酯(1.99%)、十四酸乙酯(2.09%)、9-十六碳烯酸乙酯(2.10%)、十六酸乙酯(22.92%)、亞油酸乙酯(8.49%)及油酸乙酯(14.52%)。

        從表3可以看出,K. humilis酵母產(chǎn)風味物質(zhì)的總量(平均總峰面積)高于K. turicensis、S. cerevisiae,但除K. humilis酵母β-苯乙醇產(chǎn)量顯著高于K. turicensis,C10以上高級脂肪酸乙酯產(chǎn)量顯著低于K. turicensis外,統(tǒng)計分析表明三者產(chǎn)醛類物質(zhì)、萜烯及酯類物質(zhì)或風味物質(zhì)總量均沒有顯著差異。

        表3 Kazachstania屬酵母菌株固態(tài)糟醅產(chǎn)主要風味物質(zhì)情況Table 3 Flavor substances produced by Kazachstania yeast strains in solid state fermented grains

        另外,在氣相色譜中檢測到的大量乙酸異戊酯在GC-MS中檢測到的相對含量卻很低,這主要是二者使用的色譜柱極性不同,對樣品中組分的選擇性存在較大差異,并且,頂空固相微萃?。⊿PME)所用萃取頭對不同成分的選擇吸附也會造成部分組分歧視。

        3 討論

        從酵母區(qū)系研究方法來看,本研究發(fā)現(xiàn)K. turicensis及K. humilis是濃香型白酒糟醅中的優(yōu)勢酵母,但已有研究中,基于ITS序列的高通量測序未檢測到Kazachstania屬,而是主要檢測到Saccharomyces、Candida、Saccharomycopsis、Pichia等酵母,可能是由于ITS序列局限性,使部分Kazachstania屬序列被誤識別為Saccharomyces或Candida。因此,我們認為,針對乳酸等特殊環(huán)境中的酵母區(qū)系研究,基于26S rDNA部分序列的高通量測序法可很好地排除絲狀真菌序列的干擾,結(jié)合基于ITS序列的高通量測序方法,并輔以純培養(yǎng)菌株的分離鑒定,可更準確地反應(yīng)發(fā)酵體系中的酵母區(qū)系構(gòu)成。

        K. turicensis、K. humilis在旺盛發(fā)酵期的濃香型白酒糟醅的酵母群體中具有如此高的豐度,這意味著在這一乙醇發(fā)酵、乳酸發(fā)酵共存的固態(tài)發(fā)酵體系中,其作為乳酸發(fā)酵微環(huán)境的標志性酵母種屬,可能通過產(chǎn)乙醇、風味物質(zhì)對濃香型白酒發(fā)酵起著決定性的影響,且Kazachstania屬內(nèi)酵母菌株的代謝差異主要是在菌株水平,而不是在種一級水平,但β-苯乙醇、C10以上脂肪酸乙酯、乙酸等代謝產(chǎn)物仍在種一級水平體現(xiàn)出顯著差異,表明與這些物質(zhì)相關(guān)的代謝途徑相對較為穩(wěn)定,不易因菌株變異而受到影響,因此本研究篩選到的一些高產(chǎn)β-苯乙醇或C10以上脂肪酸乙酯的菌株也可能具有較為穩(wěn)定的生產(chǎn)特性,可用于改善白酒風味。另外,在濃香型白酒這樣的自然混菌發(fā)酵體系中,Kazachstania屬還可通過與其他混菌發(fā)酵微生物的相互作用影響濃香型白酒發(fā)酵,如張霞等[16]的研究發(fā)現(xiàn)K. humilis可抑制L. acetotolerans產(chǎn)乳酸,L. acetotolerans可促進K. humilis 產(chǎn)乙醇,表明該屬酵母可通過與乳酸菌之間的相互作用來影響濃香型白酒發(fā)酵進程,但乳酸發(fā)酵環(huán)境中,Kazachstania屬酵母特別是K. turicensis與乳酸菌或其他微生物之間還存在哪些共代謝關(guān)系?這些共代謝對發(fā)酵產(chǎn)品風味品質(zhì)有什么影響?還有待進一步研究。

        4 結(jié)論

        本研究采用基于26S rDNA序列的高通量測序法及培養(yǎng)法確證了Kazachstania屬酵母是濃香型白酒糟醅微環(huán)境的標志性酵母屬之一,主要包括K. turicensis及K. humilis兩個優(yōu)勢種,其中K. turicensis是完成濃香型白酒主發(fā)酵的主要酵母,且K. turicensis及K. humilis對濃香型白酒產(chǎn)量及風味具有菌株水平的重要影響。

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