李 進，陳仕勇

(1.西南民族大學(xué)青藏高原研究院，四川 成都 610041；2.西南民族大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院，四川 成都 610041；3.四川省抗逆牧草種質(zhì)創(chuàng)新及生態(tài)修復(fù)工程實驗室，四川 成都 610041)

【研究意義】燕麥(AvenasativaL.)是世界各地廣泛種植的一種重要的一年生糧飼兼用作物，具有抗旱、耐冷、耐瘠薄等優(yōu)良性狀和較高的營養(yǎng)及保健價值[1]。燕麥主要分布在北半球的溫帶地區(qū)，國內(nèi)主要種植省區(qū)為河北、內(nèi)蒙古、山西，其次是甘肅、寧夏、陜西、青海及四川等，特別在我國青藏高原地區(qū)是冬春重要的飼草來源[2]。目標(biāo)起始密碼子多態(tài)性(start codon targeted polymorphism, SCoT)分子標(biāo)記是一種針對ATG起始密碼子及側(cè)翼序列保守性開發(fā)的新型目的基因分子標(biāo)記，該技術(shù)較其他分子標(biāo)記具備操作簡便、多態(tài)性高、遺傳穩(wěn)定性好和成本低等優(yōu)勢。通過優(yōu)化建立燕麥SCoT-PCR反應(yīng)的最優(yōu)體系，為SCoT分子標(biāo)記技術(shù)在燕麥中的應(yīng)用以及燕麥品種的保護、新品種的選育等提供重要的工具?！厩叭搜芯窟M展】國內(nèi)對于燕麥的研究主要集中在高產(chǎn)栽培管理技術(shù)研究、抗性生理研究[3]、遺傳育種研究[4-5]等。目前，隨著分子遺傳標(biāo)記技術(shù)的廣泛應(yīng)用，已有多種分子標(biāo)記技術(shù)在燕麥種質(zhì)資源評價及育種中應(yīng)用。如基于內(nèi)部簡單重復(fù)序列(ISSR)[6]、隨機擴增多態(tài)性 DNA 標(biāo)記(RAPD)[7]、相關(guān)序列擴增多態(tài)性標(biāo)記(SRAP)[8]等分子標(biāo)記技術(shù)揭示了燕麥種質(zhì)資源間的遺傳變異，但不同的分子標(biāo)記手段都有各自的優(yōu)缺點并能達到互補的作用[9]。自Collard和Mackill[10]開發(fā)了SCoT分子標(biāo)記以來，已有多種植物的 SCoT-PCR反應(yīng)體系被建立或優(yōu)化[11]。目前已在牧草和飼用作物上得到了較好的應(yīng)用，如紫花苜蓿(MedicagosativaL.)、鴨茅(DactylisglomerateL.)等[12]?！颈狙芯壳腥朦c】目前燕麥種質(zhì)資源的評價和育種落后于其他栽培作物，特別是關(guān)于種質(zhì)的評價和精準(zhǔn)鑒定等方面，因此開展不同類型的分子標(biāo)記在燕麥種質(zhì)資源研究中非常有必要。本研究采用正交試驗設(shè)計方法對SCoT-PCR反應(yīng)體系進行優(yōu)化，并篩選了80條SCoT引物在供試燕麥中進行多態(tài)性篩選和退火溫度的確定?！緮M解決的關(guān)鍵問題】建立燕麥SCoT-PCR反應(yīng)的最優(yōu)體系，篩選出在不同燕麥品種中擴增多態(tài)性較好的引物，并確定其最佳的退火溫度，為燕麥SCoT分子標(biāo)記技術(shù)的應(yīng)用提供重要的參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

本研究選用青引1號、青引2號、蘇聯(lián)燕麥、青燕1號4個品種進行PCR體系優(yōu)化和引物篩選，本研究中的供試材料種子均來自四川省抗逆牧草種質(zhì)創(chuàng)新及生態(tài)修復(fù)實驗室。

1.2 試驗方法

1.2.1 基因組DNA的提取與檢測 將供試燕麥種子于花盆中播種，待燕麥幼苗長出后，隨機采集每個品種不少于20株的鮮嫩葉片混合，采用試劑盒DP305(北京天根)提取DNA，用Nanodrop測定其DNA濃度和純度，并用1.0 %瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA完整性，模板DNA保存在-30 ℃的冰箱冷凍備用。

1.2.2 SCoT-PCR退火溫度的確定與目標(biāo)引物的篩選 本研究引物選用Collard和Mackill[10](SCoT1～SCoT36) 及Luo等[13](SCoT37～SCoT80)開發(fā)的SCoT引物，引物均由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。

PCR擴增反應(yīng)在BIO-RAD T100 Termal Cycler PCR儀上進行，擴增程序：95 ℃預(yù)變性5 min；94 ℃變性1 min；退火1 min(設(shè)置8個退火溫度梯度分別為54、53.5、52.8、51.7、50.3、49.1、48.4、48 ℃)；72 ℃延伸1.5 min；共34個循環(huán)；72 ℃延伸10 min；最后置于4 ℃冰箱冷藏備用。擴增反應(yīng)結(jié)束后采用 1.3 %瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴增產(chǎn)物，拍照保存并分析各個引物擴增效果。

1.2.3 SCoT-PCR的正交試驗設(shè)計 在引物退火溫度篩選的基礎(chǔ)上，隨機選取引物用于確定適宜的2×EsTaqMaster Mix(北京康為世紀(jì)生物)、DNA模板與引物的用量，反應(yīng)中各個因素水平如表1所示，L9(33)正交設(shè)計具體信息如表2所示，試驗所用樣本DNA濃度為10 ng·μl-1，引物濃度為10 μmol·μl-1。

表1 燕麥SCoT-PCR反應(yīng)體系各因素水平

表2 PCR反應(yīng)因素水平的L9(33)正交設(shè)計方案

1.2.4 SCoT-PCR擴增 PCR反應(yīng)體系總體積為20 μl，不足部分用ddH2O補足，將反應(yīng)產(chǎn)物在1.3 %瓊脂糖凝膠上進行檢測，選用D2000作為電泳Marker。對各體系擴增效果進行對比，以選取最佳反應(yīng)體系。

1.2.5 反應(yīng)體系的驗證 以四川省抗逆牧草種質(zhì)創(chuàng)新及生態(tài)修復(fù)實驗室栽培的其他12個品種燕麥DNA為模板(隴燕3號、隴燕4號、隴燕5號、燕王、駿馬、牧王、鋒利、邊鋒、牧樂思、領(lǐng)袖、夢龍、莫妮卡)，隨機選取能擴增出清晰可辨且完整條帶的引物驗證反應(yīng)體系的可靠性及退火溫度的準(zhǔn)確性，并用1.3 %瓊脂糖凝膠電泳檢測試驗結(jié)果。

2 結(jié)果與分析

2.1 退火溫度篩選

引物退火溫度是影響PCR反應(yīng)的重要因素，在前期實驗的基礎(chǔ)上本試驗確定了在48～54 ℃退火溫度范圍進行最佳溫度的篩選。在不同退火溫度條件下，引物的擴增效果存在一定的差異(圖1)，主要表現(xiàn)在條帶數(shù)量、亮度及清晰程度等方面。這也說明有必要對篩選的引物進行退火溫度的優(yōu)化。SCoT57引物的退火溫度篩選中，當(dāng)退火溫度設(shè)置為51.7 ℃時，擴增條帶清晰且完整，而退火溫度小于或大于51.7 ℃時擴增出來的條帶不夠清晰和完整。

2.2 引物篩選

本試驗選用4個供試燕麥品種對80條SCoT引物的擴增效果及多態(tài)性進行了篩選和評價。其中65條引物能擴增出清晰可辨且完整的條帶，占供試引物的81.25 %，每條引物擴增條帶數(shù)為2～14條，其中36條引物能擴增出清晰且豐富的多態(tài)性條帶(表3)，占供試引物的45 %。

表3 SCoT引物序列

續(xù)表3 Continued table 3

2.3 燕麥SCoT反應(yīng)體系的正交試驗分析

不同正交組合處理的擴增效果存在差異(圖2)，如主帶的亮度、擴增條帶的清晰程度等。處理5的擴增條帶數(shù)量和清晰程度等最佳，同時結(jié)合試劑用量等因素，確定最優(yōu)的反應(yīng)體系：2 μl模板DNA(10 ng·μl-1)、2 μl引物(10 μmol·L-1)、9 μl Mix混合液和7 μl ddH2O。

2.4 反應(yīng)體系穩(wěn)定性的驗證

應(yīng)用優(yōu)化后的燕麥SCoT-PCR反應(yīng)體系，選取引物SCoT48對實驗室的其他12個燕麥品種DNA進行擴增，不同燕麥品種擴增產(chǎn)物均清晰穩(wěn)定(圖3)，體現(xiàn)出了品種之間的差異，表明該體系能夠進行穩(wěn)定的PCR擴增，適合用于不同燕麥品種的SCoT-PCR分析及燕麥屬飼用植物的研究。

3 討 論

SCoT標(biāo)記是一種基于翻譯起始位點的目標(biāo)分子標(biāo)記新技術(shù)，具有操作簡單、引物通用性高、多態(tài)性高、成本低且重復(fù)性好等優(yōu)點[14]。其與較多的基因形成了較多的引物結(jié)合位點，且其擴增的不確定性介于外顯子與內(nèi)含子之間，大幅度提升了該引物的多態(tài)性[15]。與其它分子標(biāo)記手段相比，SCoT標(biāo)記技術(shù)與供試材料的功能基因相關(guān)，更能反應(yīng)相關(guān)功能性狀的多態(tài)性[16]，是適用于農(nóng)作物、水果和牧草等植物種質(zhì)資源鑒定、保護和利用、遺傳圖譜構(gòu)建、分子標(biāo)記輔助育種、基因定位和克隆等研究的非常有效的一種分子標(biāo)記[17]。本研究首次將SCoT分子標(biāo)記技術(shù)應(yīng)用于燕麥，通過本研究最終得到燕麥SCoT-PCR反應(yīng)的最佳體系，且在其他燕麥品種中進行了驗證，最終均能獲得清晰穩(wěn)定的擴增產(chǎn)物，為今后SCoT分子標(biāo)記技術(shù)在燕麥上的應(yīng)用奠定了理論基礎(chǔ)。

準(zhǔn)確應(yīng)用SCoT分子標(biāo)記技術(shù)的前提是首先要建立一個高效、穩(wěn)定的SCoT-PCR反應(yīng)體系。SCoT-PCR反應(yīng)受多個因素的影響。退火溫度是PCR擴增程序中的重要影響因素，本試驗中各引物退火溫度有較大區(qū)別主要集中在51.7～53.5 ℃，這與之前研究所用的退火溫度不同。如韓國輝等[13]優(yōu)化了柑橘SCoT分子標(biāo)記適宜的退火溫度，所有引物退火溫度均為49 ℃；李強等[18]優(yōu)化了大豆SCoT分子標(biāo)記適宜的退火溫度，引物最佳退火溫度為50.4 ℃。導(dǎo)致該現(xiàn)象的原因可能是由于不同研究所用的試驗材料及反應(yīng)條件不一致，同時也驗證了袁王俊等[19]的觀點，表明不同的反應(yīng)條件與材料導(dǎo)致退火溫度不一致。因此，進行退火溫度的優(yōu)化可確保分子標(biāo)記的準(zhǔn)確性和擴增條帶的特異性，達到理想的擴增效果。目前PCR主要采用是Mix反應(yīng)混合液，其將PCR主要成分TaqDNA聚合酶、Mg2+、dNTPs預(yù)先進行混合，并加入穩(wěn)定劑等成分使得PCR操作簡便和穩(wěn)定。本研究中采用2×TaqMaster Mix，在篩選多態(tài)性引物的同時進行各個引物退火溫度的確定，共設(shè)置了8個梯度與4個重復(fù)，以此來確保各引物最佳退火溫度的準(zhǔn)確性，使復(fù)雜的試驗流程簡單化，易于操作。

4 結(jié) 論

在燕麥SCoT-PCR反應(yīng)體系(20 μl)中，最優(yōu)的組合為2 μl模板DNA(10 ng·μl-1)、2 μl引物(10 μmol·μl-1)、9 μl Mix混合液和7 μl ddH2O。