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        固相萃取-超高效液相色譜法同時(shí)測定豬肉中22 種磺胺類藥物殘留

        2021-07-28 12:49:28王宏宇武云龍趙棟皓孫曉亮李木子曹旭敏宋翠平趙思俊
        中國動(dòng)物檢疫 2021年7期
        關(guān)鍵詞:嘧啶磺胺純度

        王宏宇,武云龍,趙棟皓,孫曉亮,李木子,曹旭敏,宋翠平,趙思俊,李 存

        (1.天津農(nóng)學(xué)院動(dòng)物科學(xué)與動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,天津 300384;2.中國動(dòng)物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心,山東青島 266032;3.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,山西晉中 030801)

        磺胺類藥物(sulfonamides,SAs)是一類具有對(duì)氨基苯磺酰胺結(jié)構(gòu)的藥物總稱,具有抗菌譜廣、高效、低毒、價(jià)格低廉等特點(diǎn),在獸醫(yī)臨床應(yīng)用十分廣泛。藥物濫用、誤用及不遵守休藥期規(guī)定,會(huì)造成動(dòng)物源食品中藥物殘留超標(biāo),既危害人類健康,還會(huì)誘導(dǎo)細(xì)菌產(chǎn)生耐藥性。我國和歐盟均已制訂了動(dòng)物產(chǎn)品中的多種SAs 最高殘留限量(MRL),其中我國規(guī)定SAs 總量不得超過0.1 mg/kg,奶中磺胺二甲基嘧啶不得超過0.025 mg/kg[1]。因此,對(duì)SAs 殘留進(jìn)行準(zhǔn)確快速檢測有著重要的食品安全意義[2]。

        隨著藥物殘留檢測技術(shù)的不斷發(fā)展,SAs 的前處理和檢測方法越來越多。其中:前處理方法除了傳統(tǒng)的液液萃取外,近年來還出現(xiàn)了許多新方法,如固相萃取(SPE)法、超聲輔助分散液液微萃取法、磁性多壁碳納米管法、基質(zhì)固相分散法、QuEChERS 法等[3];檢測方法主要有高效液相色譜二極管陣列檢測法(HPLC-PDA)、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-MS/MS)、酶聯(lián)免疫法等[2,4]。目前,我國已建立了多個(gè)檢測標(biāo)準(zhǔn)用于豬肉中SAs 殘留檢測?!缎笄萑庵惺N磺胺類藥物殘留量的測定液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法》(GB/T 20759—2006)中標(biāo)定了牛肉、羊肉、豬肉、雞肉和兔肉中16 種SAs 殘留量的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測定方法,《水產(chǎn)品中17 種磺胺類及15 種喹諾酮類藥物殘留量的測定 液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法》(農(nóng)業(yè)部1077 號(hào)公告-1-2008)規(guī)定了17 種SAs 殘留量的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法。但這些方法一次檢測的藥物種類較少,成本相對(duì)較高,且基質(zhì)效應(yīng)的存在會(huì)影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度[5]。本研究擬采用固相萃取-超高效液相色譜法(SPE-UPLC-PDA),建立豬肉中22 種SAs 的一次性殘留檢測方法。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 主要儀器設(shè)備 AcquityTMUPLC-PDA 超高效液相色譜儀-二極管陣列檢測器,美國Waters公司;氮吹儀,美國Organomation 公司;漩渦混合儀,美國Talboys 公司;Milli-Q 純水儀,德國Millipore 公司;5804R 高速冷凍離心機(jī),德國Eppendorf 公司;固相萃取裝置、MCX 固相萃取柱(60 mg、3 mL),德國CNW 公司。

        1.1.2 主要藥品試劑 磺胺甲惡唑(sulfamethoxazole,純 度>94%)、磺胺胍(sulfaguanidine,純度>98%)、磺胺醋酰(sulfacetamide,純度>97%)、磺胺吡啶(sulfapyridine,純度>98%)、磺胺嘧啶(sulfadiazine,純度>99%)、磺胺二甲異嘧啶(sulfisomidine,純度>98%)、磺胺二甲惡唑(sulfamoxole,純度>98.5%)、磺胺二甲異惡唑(sulfisoxazole,純度>98%)、磺胺曲沙唑(sulfatroxazole,純度>99%)、磺胺對(duì)甲氧嘧啶(sulfameter,純度>95%)、磺胺間甲氧嘧啶(sulfamonomethoxine,純度>96%)、磺胺甲氧吡嗪(sulfalen,純度>97%)磺胺間二甲氧嘧啶(sulfamethazine,純度>99%)、磺胺苯(sulfabenz,純度>96%)、磺胺苯吡唑(sulfaphenazole,純度>98%)、磺胺苯酰(sulfabenzamide,純度>97%),均購自德國Dr.Ehrenstorfer GmbH 公司。磺胺(sulfonamide,純度>99%)、磺胺喹噁啉(sulfaquinoxaline,純度>99%)、磺胺鄰二甲氧嘧啶(sulfadoxine,純度>98%)、磺胺氯噠嗪(sulfachloropyridazine,純度>97%),均購自Toronto Research Chemicals INC(加拿大)?;前范奏奏ぃ╯ulfamethazine,純度>98%)、磺胺噻唑(sulfathiazole,純度>99%)、磺胺氯吡嗪(sulfachloropyrazine,純度>98%),均購自WITEGA Laboratorien BerlinAdlershof GmbH(加拿大)。甲醇、乙腈均為色譜純,德國Merck 公司;甲酸、甲酸銨均為色譜純,德國CNW 公司;乙酸、氨水均為分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;試驗(yàn)用水為超純水,由Milli-Q 純水儀制得。

        1.2 方法

        1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配置 分別準(zhǔn)確稱取22 種SAs標(biāo)準(zhǔn)品于10 mL 容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度,配制質(zhì)量濃度為100 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,于-20 ℃避光保存;分別移取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,配制1 mg/L 的22 種SAs 混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液;分別移取適量的混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,根據(jù)需要用甲醇逐級(jí)稀釋為適當(dāng)濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配。

        1.2.2 樣品前處理 準(zhǔn)確量取2 g 豬肉于50 mL具塞離心管中,加入8 mL 3%乙酸乙腈以及5 g 均質(zhì)子,渦旋混勻,8 000 r/min 離心7 min,將上清移至新離心管,重復(fù)提取1 次,合并2 次上清,待凈化。上清液通過經(jīng)3 mL 甲醇、3 mL 水以及3 mL 3%乙酸乙腈活化的MCX 柱,分別用3 mL 水和3 mL 甲醇淋洗,用真空泵抽干后,以3 mL 5%氨化甲醇洗脫,45 ℃水浴條件下N2吹至近干,用1 mL 0.1%甲酸-乙腈(9:1,V/V)溶液復(fù)溶,渦動(dòng)30 s 后,經(jīng)0.22 μm 針孔式濾膜過濾,UPLCPDA 檢測。

        1.2.3 色譜條件 色譜柱:UPLC CSH Fluorophenyl(1.7 μm,2.1 mm×100 mm);流動(dòng)相A(簡稱A):含有10 mmol/L 甲酸銨的0.1%甲酸水;流動(dòng)相B(簡稱B):乙腈。流速0.3 mL/min,柱溫35 ℃,二極管陣列檢測器波長270 nm,進(jìn)樣量10 μL。梯度洗脫程序:0~2.0 min,13%B;>2.0~3.5 min,13%~15%B;>3.5~4.5 min,15%B;>4.5~6.5 min,15%~35%B;>6.5~8.8 min,35%B;>8.8~9.0 min,35%~95%B;>9.0~10.0 min,95%B;>10.0~10.2 min,95%~13%B;>10.2~12.0 min,13%B。

        1.3 方法評(píng)價(jià)

        1.3.1 試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 配制質(zhì)量濃度分別為2.5、5.0、10.0、20.0、50.0、100.0、200.0、250.0 μg/L的試劑標(biāo)準(zhǔn)溶液。經(jīng)UPLC-PDA 進(jìn)樣分析,以質(zhì)量濃度(μg/L)為橫坐標(biāo)(X),峰面積(Y)為縱坐標(biāo),繪制試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.3.2 檢測限和定量限測定 準(zhǔn)確量取2 g 空白樣品,向其中添加不同質(zhì)量濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,按照1.2.2前處理方法對(duì)樣品進(jìn)行處理后上機(jī)檢測。以10 倍信噪比(S/N=10)對(duì)應(yīng)的樣品濃度作為方法的定量限(limit of quantification,LOQ),以3倍信噪比(S/N=3)對(duì)應(yīng)的樣品濃度作為方法的檢測限(limit of detection,LOD)。

        1.3.3 添加回收率和精密度測定 準(zhǔn)確量取2 g空白樣品,進(jìn)行3 個(gè)水平(1、5、10 倍LOQ)的加標(biāo)回收試驗(yàn);按照1.2.2 前處理方法對(duì)樣品進(jìn)行處理后上機(jī)檢測。每個(gè)水平做6 個(gè)平行,進(jìn)行3 次批間重復(fù);使用標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行校正,測定目標(biāo)藥物濃度,計(jì)算回收率、批內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差和批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。

        1.3.4 實(shí)際樣品檢測 采用本試驗(yàn)建立的方法,對(duì)從山東省采集的18 份豬肉樣品進(jìn)行檢測。18份樣本經(jīng)過3%乙酸乙腈提取、MCX 柱凈化、UPLC-PDA 檢測。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 色譜條件選擇

        由于同分異構(gòu)體藥物分離受限,故在流動(dòng)相中加入一定量甲酸銨,使其能全部分離所有藥物[6]。

        磺胺類藥物屬于兩性化合物,因此采用酸性流動(dòng)相可使分離效果最佳。試驗(yàn)采用甲酸銨-甲酸水溶液-乙腈體系作為流動(dòng)相,用0.1%甲酸-乙腈作為流動(dòng)相。雖色譜峰尖銳、對(duì)稱,但不能分離所有藥物,故在甲酸溶液中加入適量甲酸銨進(jìn)行考察。結(jié)果顯示,使用含有10 mmol/L 甲酸銨的0.1%甲酸水-乙腈作為流動(dòng)相,能分離出所有藥物且峰形較好。為了將本試驗(yàn)中的藥物在盡可能短的時(shí)間內(nèi)有效分離,本研究采用UPLC CSH Fluoro-phenyl 色譜柱分離所有藥物,采用PDA 波長270 nm,可使SAs 檢測獲得較高的靈敏度[7]。SAs 標(biāo)準(zhǔn)溶液色譜圖、空白樣品色譜圖和實(shí)際樣品加標(biāo)色譜圖分別見圖1-A、圖1-B、圖1-C。

        圖1 標(biāo)準(zhǔn)溶液、空白樣品和實(shí)際樣品加標(biāo)色譜圖

        2.2 提取液優(yōu)化

        提取動(dòng)物產(chǎn)品中的SAs 通常采用乙腈、乙酸乙酯等有機(jī)溶劑或磷酸鹽水溶液進(jìn)行[8-9]。為了獲得滿意的回收率和較好的選擇性,本試驗(yàn)選擇有機(jī)溶劑和水溶液作為提取液進(jìn)行優(yōu)化比較。

        2.2.1 有機(jī)溶劑 樣品基質(zhì)中的蛋白質(zhì)等大分子雜質(zhì)會(huì)因共萃取效應(yīng)而被提取出來。由于蛋白質(zhì)的最佳吸收波長為280 nm,與SAs 的檢測波長較為相近,因此在紫外檢測時(shí)容易影響SAs 檢測的靈敏度和選擇性。相關(guān)研究表明:乙腈可以沉淀牛奶等樣品中的蛋白質(zhì),使蛋白質(zhì)達(dá)到等電點(diǎn)沉淀[10];而采用乙酸乙酯和甲醇進(jìn)行提取,對(duì)組織樣本中目標(biāo)化合物回收具有良好效果[11]。為此,本研究分別采用乙酸乙酯、甲醇和乙腈提取樣品,經(jīng)MCX柱凈化后,使用UPLC 檢測,統(tǒng)計(jì)目標(biāo)藥物回收率。結(jié)果顯示:乙酸乙酯和甲醇不能完全從樣品中提取藥物,受基質(zhì)中的內(nèi)源物質(zhì)干擾較大,分離不佳,且由于溶劑性質(zhì)原因[12],大量脂溶性雜質(zhì)溶于提取液中;而使用乙腈作為提取液時(shí),除磺胺、磺胺醋酰外,回收率均高于80%。此外,還對(duì)乙腈的酸度進(jìn)行優(yōu)化分析,通過向提取液中加入乙酸或氨水等調(diào)節(jié)溶液pH。以乙腈、氨化(1%、3%、5%)乙腈、乙酸(1%、3%、5%)乙腈分別提取樣本,比較不同提取液的提取效果。結(jié)果顯示:使用3%乙酸乙腈,可有效提取豬肉組織中的SAs,可獲得較好的回收率;增加乙酸使用量(5%),雖不影響藥物回收率,但會(huì)增加萃取中雜質(zhì)的干擾;而減少乙酸使用量(0、1%)時(shí),可使SAs 回收率降低(<80%)。

        2.2.2 水溶液 本試驗(yàn)對(duì)PBS 溶液的提取效果進(jìn)行了優(yōu)化,分別對(duì)PBS 溶液的pH、濃度進(jìn)行優(yōu)化分析。首先優(yōu)化PBS 提取液pH,分別使用pH3~6的PBS 溶液進(jìn)行提取。結(jié)果顯示:使用PBS 溶液(pH5)時(shí),可提取豬肉組織中的SAs,并獲得了較好的回收率。增加溶液pH(pH6)時(shí),磺胺醋酰、磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺間二甲氧嘧啶、磺胺二甲惡唑回收率降低(<80%);而降低溶液pH(pH3、pH4),雖不影響藥物回收率,但會(huì)增加萃取中雜質(zhì)的干擾,故選擇pH5 的PBS 溶液。此外,還對(duì)PBS 溶液濃度進(jìn)行優(yōu)化分析,分別使用0.1、0.3、0.5、0.7、1.0 mol/L 的PBS 溶液(pH5)提取樣本。結(jié)果顯示:使用0.5 mol/L PBS(pH5)溶液,可提取豬肉組織中的SAs,并獲得了較好回收率;當(dāng)PBS 溶液濃度過低時(shí),磺胺、磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺苯、磺胺對(duì)甲氧嘧啶的回收率小于80%;而提高PBS 溶液濃度,對(duì)目標(biāo)藥物回收率沒有明顯影響。故選擇0.5 mol/L PBS(pH5)溶液作為最佳水溶液提取液。

        2.2.3 兩種提取液對(duì)比 對(duì)最優(yōu)的有機(jī)溶劑提取液(3%乙酸乙腈)以及水溶液提取液(0.5 mol/L PBS,pH5)進(jìn)行比較。分別使用兩種提取液提取樣本,經(jīng)MCX 柱凈化后,使用UPLC-PDA 檢測。結(jié)果顯示:以PBS 溶液、酸化乙腈作為提取液時(shí),目標(biāo)藥物回收率均較高。但在試驗(yàn)過程中發(fā)現(xiàn),以PBS 溶液作為提取液,在提取完成的待上樣液中,含有大量白色絮狀物,會(huì)堵塞SPE 柱,從而引起流速不穩(wěn)甚至出現(xiàn)流不動(dòng)的現(xiàn)象,導(dǎo)致試驗(yàn)結(jié)果平行性較差[13]。因此,本研究選擇3%乙酸乙腈作為豬肉樣品提取液。

        2.3 凈化條件優(yōu)化

        2.3.1 SPE 固相萃取柱選擇 本研究選取1#(CNW-HLB 柱)、2#(Oasis HLB 柱)、3#(CNW-MCX 柱)、4#(PCX 柱)進(jìn)行比較。標(biāo)準(zhǔn)添加量為50 μg/kg,經(jīng)甲醇、水和上樣液活化的SPE 柱富集,用甲醇或5%氨化甲醇洗脫,比較各SPE 柱對(duì)目標(biāo)藥物的富集效果。結(jié)果顯示,1~4#的富集比例分別為90%、85%、90%和83%。結(jié)果表明,4 種SPE 柱均可富集SAs,且CNW 公司生產(chǎn)的HLB 柱(1#)以及MCX 柱(3#),對(duì)目標(biāo)藥物的富集效果較好??紤]到在試驗(yàn)過程中,由于提取液為乙腈,只有在過HLB 柱前氮吹至近干,再使用復(fù)溶液復(fù)溶后,才可繼續(xù)進(jìn)行凈化步驟,因而容易導(dǎo)致目標(biāo)藥物損失[14],且會(huì)浪費(fèi)大量時(shí)間;而MCX 柱,由于其為陽離子交換柱,對(duì)pH 較為敏感,以3%乙酸乙腈作為提取液時(shí),可以直接上樣。故選擇3#作為SPE 固相萃取柱。

        2.3.2 洗脫液優(yōu)化 按參考文獻(xiàn)[15-16],選擇4種洗脫液,1%氨化甲醇、3%氨化甲醇、5%氨化甲醇、7%氨化甲醇,各取3 mL 洗脫液過已富集的MCX 固相萃取柱,比較洗脫效果。結(jié)果顯示:5%和7%的氨化甲醇洗脫能力無明顯差異(>95%),可完全將藥物從柱床中洗脫下來,1%氨化甲醇僅可洗脫下20%~40%,而3%氨化甲醇可洗脫下60%~80%,故選擇5%氨化甲醇作為洗脫溶液。

        2.4 方法學(xué)考察

        2.4.1 線性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限以不同濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測定,以質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),峰面積為縱坐標(biāo)(Y),繪制試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果(表1)顯示:各藥物線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)R2>0.999。LOQ 為2.5~10.0 μg/kg,LOD為1.0~4.0 μg/kg。

        表1 22 種獸藥的保留時(shí)間、線性方程、相關(guān)系數(shù)和LOQ、LOD

        2.4.2 準(zhǔn)確度和精密度 22 種目標(biāo)藥物回收率及批內(nèi)、批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差見表2。結(jié)果顯示,回收率為80.4%~96.6%,批內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.1%~4.6%,批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.5%~13.4%,可滿足國際上對(duì)獸藥殘留的檢測需求。

        表2 22 種獸藥的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差

        2.5 相對(duì)于UPLC-MS/MS 的優(yōu)勢

        在使用UPLC-MS/MS 法時(shí),基質(zhì)效應(yīng)(matrix effects,ME)的存在會(huì)影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度[17]。經(jīng)前處理樣品中加入目標(biāo)藥物,進(jìn)行UPLC-MS/MS 檢測,繪制基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線,通過計(jì)算各藥物樣本溶液與濃度相同的標(biāo)準(zhǔn)溶液之比的平均值,計(jì)算目標(biāo)藥物的基質(zhì)效應(yīng)[18]。結(jié)果顯示:目標(biāo)藥物中有部分基質(zhì)效應(yīng)較強(qiáng)(ME <60%),包括磺胺對(duì)甲氧嘧啶、磺胺二甲基異嘧啶、磺胺甲基嘧啶、磺胺二甲基嘧啶;部分基質(zhì)效應(yīng)很強(qiáng)(ME <40%),包括磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺間甲氧嘧啶、磺胺苯?;|(zhì)效應(yīng)嚴(yán)重影響結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度,且UPLC-MS/MS 成本較高,操作復(fù)雜。而本研究的UPLC-PDA 法不存在基質(zhì)效應(yīng)影響,在經(jīng)前處理后雜質(zhì)較少,且成本較低、操作簡便,結(jié)果準(zhǔn)確性較高,重復(fù)性良好。

        2.6 實(shí)際樣品檢測

        利用本研究建立的方法對(duì)從山東省采集的18份豬肉樣品進(jìn)行測定,結(jié)果未有SAs 檢出。

        3 小結(jié)

        本研究建立的豬肉中22 種SAs 的SPE-UPLCPDA 檢測方法靈敏度高、重復(fù)性好、成本低廉,且操作簡單、快速,可以用于檢測豬肉樣品中的SAs 殘留檢測。

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