劉燕妮 毛芙蓉 范慧冬 鄭士金 侯柏森

摘要：以番茄細菌性潰瘍病病菌的特異性基因cytC為檢測靶標，以番茄潰瘍病病菌等8種病原細菌為供試菌株。根據(jù)檢測靶標設計環(huán)介導等溫擴增（LAMP）引物并進行特異性和靈敏度檢測。結(jié)果顯示，引物cytC-170能特異性檢測出番茄潰瘍病病菌，檢測靈敏度高達5×105 copy/μL，環(huán)引物的加成將試驗進程縮短為33.06 min，使整個反應控制在50 min內(nèi)。研究建立的LAMP檢測方法操作簡單，結(jié)果可視，非常適用于番茄細菌性潰瘍病病菌的現(xiàn)場快速檢測。

關鍵詞：番茄潰瘍病病菌;LAMP;特異性;檢測;cytC基因;加環(huán)試驗

中圖分類號：S436.412.1+9?? 文獻標志碼： A

文章編號：1002-1302（2021）11-0072-04

收稿日期：2020-09-01

基金項目：吉林省重點科技攻關項目（20140204032NY）。

作者簡介：劉燕妮（1988—），女，山東青島人，碩士，助理研究員，研究方向為蔬菜病害綜合防治。E-mail：704870590@qq.com。

通信作者：毛芙蓉，碩士，副研究員，研究方向為蔬菜病蟲害綜合防治。E-mail：5155885@qq.com。

番茄細菌性潰瘍病病菌是我國禁止入境的檢疫性有害微生物，1954年我國首次報道該病害，之后便迅速蔓延，現(xiàn)在在黑龍江、吉林、山東、遼寧、河北、四川等地均有發(fā)生，每年給番茄帶來25%～75%的經(jīng)濟損失，嚴重制約著番茄產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。番茄細菌性潰瘍病由密執(zhí)安棒狀桿菌密執(zhí)安亞種（Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis，以下簡稱為Cmm）引起，除侵染番茄外，還可侵染辣椒、裂葉茄、龍葵、煙草、天仙子等47種茄科植物[1-2]。這些植物的病殘體都可作為病害再次流行的初侵染源。有關報道表明，當番茄體內(nèi)的病菌濃度達到1×108～1×109 CFU/mL時，番茄就會表現(xiàn)出被害癥狀[3]，當番茄種子的帶菌率達1%以上時，便可引起病害的快速流行[4-5]。因此進行番茄潰瘍病病菌的初期檢測并進行有效防治是預防該病發(fā)生的最有效手段。

目前，針對番茄細菌性潰瘍病病菌的檢測方法主要有半選擇性培養(yǎng)基的富集培養(yǎng)[6]、菌株的致病性測定[7]、血清學檢測、DNA 探針[8]以及PCR[9]等方法，但這些檢測方法都存在操作復雜、準確率低以及技術要求高等各方面的限制。本研究使用建立的環(huán)介導等溫擴增（LAMP）檢測方法對技術要求低、靈敏度高、特異性強、操作簡便，更適用于番茄細菌性潰瘍病病菌的早期檢測。

1 材料與方法

1.1 供試菌株

本研究使用的菌株番茄細菌性潰瘍病病菌[Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis （Smith） Davis et al.]，由筆者所在實驗室自主分離和中國農(nóng)業(yè)大學種子病理中心提供;番茄青枯假單胞菌和茄青枯假單胞菌（Pseudomonas solanacearum E. F.Smith），均由廣東省微生物保存中心提供;黃瓜角斑病病菌[Pseudomonas syringae pv. lachrymans （Smith & Bryan） Yong，Dye & Wilkie]和西瓜果斑病病菌（Pseudomonas pseudoalcaligenes subsp. citrulli Schaad et al.），均由吉林農(nóng)業(yè)大學植物病理實驗室提供;馬鈴薯環(huán)腐病病菌[Clavibacter michiganense subsp. sepedonicum （Spieckermann & Kotthoff） Davis，Gillaspie，Vidaver and Harris]和馬鈴薯瘡痂病病菌[Streptomyces scabies （Thaxte） Waks.et Henvici]，均由筆者所在實驗室自主保存。

1.2 培養(yǎng)基

NA培養(yǎng)基：牛肉膏3.0 g、蛋白胨5.0 g、酵母粉3.0 g、瓊脂粉16～18 g，定容至1 000 mL，調(diào)pH值至7.0，121 ℃滅菌30 min。LB液體培養(yǎng)基：蛋白胨 10.0 g、酵母粉5.0 g、NaCl 10.0 g，定容至1 000 mL，調(diào)pH值至7.0，121 ℃滅菌20 min。

1.3 LAMP反應體系的建立

試驗于2015年4—12月在吉林省蔬菜花卉科學研究院植物保護實驗室內(nèi)進行。

1.3.1 細菌基因組DNA的提取

將供試菌株在NA培養(yǎng)基上活化培養(yǎng)后，轉(zhuǎn)至LB液體培養(yǎng)基中進行恒溫振蕩培養(yǎng)至菌液濃度為108 CFU/mL。培養(yǎng)好的菌株使用細菌基因組提取試劑盒[天根生化科技（北京）有限公司]提取菌體DNA，并用ND 1000分光光度計檢測DNA質(zhì)量和濃度，于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2 LAMP引物設計

根據(jù)PCR的試驗結(jié)果[10]，針對特異性基因（cytC基因），使用Primer Premier 5.0設計LAMP反應內(nèi)外引物及環(huán)引物（表1）。引物由生工生物工程（上海）股份有限公司合成及純化。

1.3.3 LAMP反應體系

利用設計的內(nèi)外引物及環(huán)引物（引物均稀釋到100 μmol/L），使用廣州華峰生物科技有限公司生產(chǎn)的通用型恒溫實時熒光試劑盒進行LAMP反應。反應體系：2×LAMP reaction mixture 12.5 μL、熒光染料0.25 μL、Bst酶 0.5 μL、引物 1.0 μL （內(nèi)、外引物終濃度分別為1.6、0.2 μmol/L）、環(huán)引物 （100 μmol/L） 0.2 μL（終濃度為0.8 μmol/L）、DNA模板 2.0 μL，用水定容至25 μL。反應程序：63 ℃，70 min。

1.3.4 加環(huán)后反應體系

使用廣州華峰生物科技有限公司生產(chǎn)的凍干通用型恒溫實時熒光試劑盒進行LAMP反應。反應體系：復溶液15 μL、引物1.0 μL（內(nèi)、外引物終濃度分別為1.6、0.2 μmol/L）、環(huán)引物（100 μmol/L） 0.2 μL （終濃度為0.8 μmol/L）、 DNA模板2.5 μL，用水定容至25 μL。反應程序：63 ℃，70 min。

1.3.5 LAMP 方法引物篩選

將設計好的內(nèi)外引物加到反應體系中進行等溫擴增，采用熒光定量PCR儀器進行LAMP反應，在每個循環(huán)結(jié)束時讀取熒光信號值，判斷引物擴增效果。

1.3.6 LAMP 方法特異性檢測

使用表1中所列的LAMP反應所需引物進行特異性檢測，以無菌水為空白對照，驗證LAMP檢測的特異性。結(jié)果通過3種不同的方法進行判斷：將LAMP產(chǎn)物用2% 瓊脂糖凝膠電泳檢測;采用熒光定量PCR儀器進行LAMP反應，在每個循環(huán)結(jié)束時讀取熒光信號值;將LAMP產(chǎn)物離心，使管蓋上的顯色物質(zhì)進入產(chǎn)物，觀察顯色情況。

1.3.7 LAMP 方法靈敏度檢測

利用篩選出的引物組，對番茄潰瘍病病菌進行擴增，檢測LAMP反應的靈敏度。提取番茄潰瘍病病菌的DNA，并進行不同濃度的稀釋使其終濃度分別為5、50、5×102、5×103、5×104、5×105、5×106 copies/μL共7個濃度作為各個梯度的DNA 模板，以無菌水為空白對照進行LAMP反應的靈敏度檢測。結(jié)果判斷同“1.3.6”節(jié)。

2 結(jié)果與分析

2.1 LAMP引物篩選

使用設計引物cytC-170和cytC-49對Cmm進行特異性擴增，結(jié)果如圖1所示。引物cytC-170能擴增出目的片段，可以進行后續(xù)試驗，而引物cytC-49 擴增效果不理想，不能擴增目的片段。因此選擇引物cytC-170進行下一步試驗。

2.2 LAMP檢測加環(huán)試驗

對篩選出的cytC-170引物組進行環(huán)引物加成處理，將處理后的引物組重新進行LAMP反應，通過試驗結(jié)果（圖2）可以看出，加環(huán)后擴增時間從47.27 min縮減為33.06 min;反應時間約縮短1/3，擴增速度明顯加快，更有利于檢測的進行。

2.3 cytC基因LAMP特異性檢測

利用供試菌株對篩選優(yōu)化的cytC-170引物組進行特異性檢測，結(jié)果（圖3）顯示，3種檢測方法均證明cytC-170基因只能從Cmm樣品中獲得預期目標產(chǎn)物，而在番茄青枯假單胞菌、黃瓜角斑病病菌等病原細菌中均不能獲得目標片段，表明cytC-170基因能通過LAMP檢測的方法特異性檢測出番茄潰瘍病病菌。

2.4 cytC-170基因LAMP靈敏度性檢測

對篩選出的cytC-170引物組進行靈敏度檢測，結(jié)果（圖4）顯示：3種檢測方法均證明，當病菌的濃度達到5×105 copies/μL時，cytC-170基因能很好地擴增出目的片段，可用于檢測Cmm。

3 討論與結(jié)論

番茄潰瘍病是一種系統(tǒng)性維管束病害，植株發(fā)病后病情可以隨流水、農(nóng)事操作等迅速蔓延，可能給番茄生產(chǎn)帶來毀滅性打擊。進行番茄潰瘍病病菌的早期檢測預防能夠有效減少該病帶來的損失。有關報道表明，只有當番茄植物體內(nèi)的Cmm濃度達到1×108～1×109 CFU/mL時，番茄才會表現(xiàn)出被害狀[3]，本研究建立的以cytC基因為檢測靶標的LAMP檢測方法，檢測靈敏度為5×105 copies/μL，遠低于發(fā)病濃度，能夠達到早期檢測的要求。

針對番茄潰瘍病病菌的檢測廣大學者也進行了廣泛研究，但是選擇培養(yǎng)基的富集培養(yǎng)[6]及接種紫茉莉葉片引起過敏性壞死反應[7]存在耗時長的缺點;血清學檢測及DNA探針、PCR等方法有效縮短了檢測時間。但是血清學檢測存在檢測靈敏度低;DNA探針不能區(qū)分致病與非致病菌株;PCR檢測存在耗時長，對操作人員技術要求高等缺點，不適用于檢測的推廣。本研究選取了與致病性相關的cytC基因，而非高保守性的16S rRNA序列以及高變異性的ITS序列，有效避免了假陽性。建立的LAMP檢測方法操作簡單簡便，只需要1臺恒溫水浴鍋便可完成;耗時短，反應時間為33.06 min，整個檢測過程可控制在50 min內(nèi)，比常規(guī)PCR和實時熒光 PCR檢測能更早得到反應結(jié)果。雖然PCR檢測的靈敏度要高于LAMP檢測，但是PCR檢測相對要求比較高，而LAMP檢測更快速、便捷，只需一個恒等溫的環(huán)境即可，更適用于生產(chǎn)應用。

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