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        致病性大腸桿菌全基因組測(cè)序及毒力基因分析

        2021-06-30 00:59:18王嘉福冉雪琴黃世會(huì)
        工業(yè)微生物 2021年3期
        關(guān)鍵詞:分泌系統(tǒng)菌毛毒力

        周 倩,王嘉福*,冉雪琴,牛 熙,黃世會(huì)

        1.貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽(yáng) 550025;2.貴州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽(yáng) 550025

        大腸桿菌存在于人和動(dòng)物腸道中[1],某些大腸桿菌是導(dǎo)致仔豬腹瀉的主要病原菌之一[2],其導(dǎo)致的疾病發(fā)病率高、發(fā)病急、死亡率高、涉及范圍廣,給養(yǎng)豬業(yè)造成巨大經(jīng)濟(jì)損失,嚴(yán)重影響了養(yǎng)豬業(yè)的發(fā)展[3]。然而由該菌引發(fā)的疾病目前缺少有效的治療手段,臨床上主要以母體抗原、抗血清、抗生素等為主,容易產(chǎn)生耐藥性、藥物殘留等問(wèn)題[4-5]。

        大腸桿菌通過(guò)黏附素黏附于斷奶仔豬小腸上皮細(xì)胞,就定居在小腸上并開(kāi)始大量繁殖并產(chǎn)生毒素,產(chǎn)生的毒素被吸收后,引起胃腸道血管、皮下組織和腦血管的損傷,從而使宿主發(fā)生一系列疾病[6]。致病性大腸桿菌侵襲宿主組織引起其發(fā)病的過(guò)程是由多種毒力因子相互協(xié)調(diào)而發(fā)揮作用,大腸桿菌的主要毒力因子包括毒素、黏附素、外膜蛋白、鐵轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)和吸收系統(tǒng)等[7]。為研究致病性大腸桿菌致病力差異的原因,采用二代高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)7株不同致病力的大腸桿菌進(jìn)行全基因組測(cè)序,分析毒力基因的差異,以期解析大腸桿菌的致病因子和致病機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        菌株P(guān)211、P555、P32、P444和P111由本實(shí)驗(yàn)室從貴州某豬場(chǎng)腹瀉仔豬糞樣中分離,菌株S10670、E24190購(gòu)自中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心。40只SPF級(jí)小鼠購(gòu)自北京斯貝福生物技術(shù)有限公司。

        1.2 菌株純化鑒定

        使用EMB、MAC和LB固體培養(yǎng)基對(duì)7菌株進(jìn)行純化,隨后對(duì)菌株進(jìn)行革蘭氏染色鏡檢和生理生化鑒定,再用細(xì)菌16S rDNA基因通用引物27F和1 492R進(jìn)行擴(kuò)增(表1),擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行Sanger測(cè)序,用NCBI網(wǎng)站對(duì)測(cè)序產(chǎn)物進(jìn)行Blast同源比對(duì),對(duì)菌株進(jìn)行分子系統(tǒng)學(xué)鑒定。

        表1 細(xì)菌16S rDNA擴(kuò)增引物

        1.3 小鼠致病性試驗(yàn)

        挑取單個(gè)純化后的7株菌株于LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)至濃度為1×108CFU/mL的菌懸液,將40只小鼠隨機(jī)分為8組,7個(gè)實(shí)驗(yàn)組和一個(gè)對(duì)照組,每組5只小鼠,實(shí)驗(yàn)組小鼠的給藥途徑、給藥方法和給藥劑量參照《藥理實(shí)驗(yàn)方法學(xué)》的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)技術(shù)進(jìn)行[8],按照10 g/0.2 mL 的劑量腹腔注射菌懸液,對(duì)照組則按照10 g/0.2 mL 的劑量腹腔注射生理鹽水。正常飼喂,自由飲水,感染后觀察48 h,記錄小鼠臨床癥狀和死亡時(shí)間,死亡小鼠及時(shí)剖檢觀察內(nèi)臟組織病變并制作病理切片,觀察病理變化。

        1.4 測(cè)序樣品

        挑取單個(gè)純化鑒定后的菌株用LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)于37 ℃、160 r/min培養(yǎng)過(guò)夜后收集菌體,使用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取基因組,經(jīng)酶標(biāo)儀及1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)其濃度、純度均達(dá)到基因組DNA 的測(cè)序要求后進(jìn)行全基因組測(cè)序。測(cè)序工作由華大深圳股份有限公司完成,測(cè)序平臺(tái)為DNBSEQ。

        1.5 基因文庫(kù)構(gòu)建

        將基因組DNA的大片段隨機(jī)打斷獲得200 bp~400 bp的DNA片段,然后修復(fù)雙鏈DNA末端,并在3'末端加上A堿基,配制接頭連接反應(yīng)體系使接頭與DNA連接,擴(kuò)增連接產(chǎn)物并純化回收,將PCR產(chǎn)物變?yōu)閱捂満?,配制環(huán)化反應(yīng)體系,得到單鏈環(huán)形產(chǎn)物,消化掉未被環(huán)化的線性DNA分子后,即得到最終的文庫(kù)。

        1.6 全基因組測(cè)序與基因組組裝

        檢測(cè)合格文庫(kù)安排上機(jī)測(cè)序(DNBSEQ):?jiǎn)捂湱h(huán)狀DNA分子通過(guò)滾環(huán)復(fù)制,形成一個(gè)包含300多個(gè)拷貝的DNA納米球(DNB)。將得到的DNBs采用高密度DNA納米芯片技術(shù),加到芯片上的網(wǎng)狀小孔內(nèi)。通過(guò)聯(lián)合探針錨定聚合技術(shù)(cPAS)進(jìn)行測(cè)序。得到測(cè)序原始數(shù)據(jù)后,對(duì)raw reads過(guò)濾質(zhì)控,去除低質(zhì)量reads以及adapter和duplication污染后,從而得到高質(zhì)量Clean Reads后,采用SOAPdenovo[9]組裝軟件進(jìn)行序列組裝,通過(guò)不斷優(yōu)化參數(shù)Kmer值為15獲得最好的組裝結(jié)果。

        1.7 基因預(yù)測(cè)及注釋

        采用Glimmer 3.02[10]進(jìn)行組裝結(jié)果的基因預(yù)測(cè),分別采用RNAmmer-1.2[11]和tRNAscan-SE[12]軟件對(duì)基因組中包含的rRNA和tRNA進(jìn)行預(yù)測(cè)。將預(yù)測(cè)基因的氨基酸序列與eggNOG(http://eggnog-mapper.embl.de/)[13]數(shù)據(jù)庫(kù)和VFDB(https://card.mcmaster.ca)[14]數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行BLAST比對(duì),將得到的基因進(jìn)行功能注釋,獲得COG注釋信息和菌株毒力基因,并對(duì)COG注釋結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)和分類,通過(guò)VFBD數(shù)據(jù)庫(kù)注釋到的毒力因子,分析不同致病力菌株的毒力基因差異。

        2 結(jié)果

        2.1 菌株的鑒定

        2.1.1菌落形態(tài)特征

        7株菌株在MAC瓊脂平板上形成圓形、表面光滑、濕潤(rùn)的粉紅色菌落(圖1A);在EMB瓊脂培養(yǎng)基上形成表面光滑、凸起、帶黑色金屬光澤的菌落(圖1B);在LB固體培養(yǎng)基上形成圓形、表面光滑、半透明的乳白色菌落(圖1C);革蘭氏染色,鏡檢可見(jiàn)紅色短桿菌、中等大小、兩頭鈍圓、呈單個(gè)或多數(shù)散在排列(圖1D),鑒定結(jié)果均與大腸桿菌形態(tài)特征相符。

        A

        2.1.2生理生化鑒定

        7株菌株均能發(fā)酵葡萄糖、甘露醇、乳糖、麥芽糖,尿素、蛋白胨水、乙酰甲基甲醇(V-P)、Koser肉湯、氧化酶、硫化氫試驗(yàn)陰性,甲基紅試驗(yàn)(MR)陽(yáng)性,具有動(dòng)力,結(jié)果顯示該7株菌與大腸桿菌具有相似的生理生化特性(表2)。

        表2 7株菌株生理生化鑒定結(jié)果

        2.1.3分子生物學(xué)鑒定

        菌株16S rDNA基因經(jīng)PCR擴(kuò)增獲得1 500 bp的片段,與預(yù)期相符(圖2),將16S r DNA基因序列與NCBI核酸數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì),7株菌株與已知大腸桿菌的相似性最高,均在99.5%以上,將7株菌株鑒定為大腸桿菌。

        注:M:D 2 000 DNA marker ;1.S40670;2.E24190;3.P211;4.P555;5.P32;6.P444;7.P111圖2 16S rDNA基因擴(kuò)增結(jié)果

        2.2 小鼠致病性試驗(yàn)

        7株菌株用相同濃度(1×108CFU/mL)的菌懸液對(duì)小鼠進(jìn)行感染試驗(yàn),結(jié)果顯示(表3),48 h后S10670和E24190實(shí)驗(yàn)組小鼠死亡5只,病死率為100%,P211和P555實(shí)驗(yàn)組小鼠死亡2只,病死率為40%,P32、P444和P111試驗(yàn)組小鼠死亡1只,病死率為20%,對(duì)照組小鼠全部存活。因此,將菌株S10670和E24190歸為強(qiáng)毒株,P211和P555定為中等毒株,P32、P444和P32為弱毒株。感染后的小鼠出現(xiàn)背毛聳亂無(wú)光澤,進(jìn)食少,活動(dòng)緩慢,精神萎靡不活躍,倦怠、嗜睡,并且扎堆出現(xiàn),對(duì)外界刺激遲鈍,其中S10670和E24190組臨床現(xiàn)象最嚴(yán)重,重度腹瀉,接種菌株S10670的小鼠還有眼角包裹著眼屎,眼部出現(xiàn)水腫現(xiàn)象;P211和P555臨床現(xiàn)象次之,P32、P444和P111臨床現(xiàn)象最弱。

        表3 小鼠致病性試驗(yàn)結(jié)果

        2.3 剖檢和組織病理學(xué)觀察

        對(duì)死亡小鼠進(jìn)行剖解后(圖3)觀察小組內(nèi)臟組織,與對(duì)照組相比實(shí)驗(yàn)組小鼠內(nèi)臟組織出現(xiàn)不同程度的病變,表現(xiàn)為心臟、肝臟、脾臟、肺臟、腎臟腫大充血,顏色變深;腸道變薄,內(nèi)有大量?jī)?nèi)容物,且味道惡臭。病理切片顯示(圖4),實(shí)驗(yàn)組小鼠心臟組織心肌纖維紊亂、排列不整齊,部分出現(xiàn)斷裂崩解伴有出血;肝臟組織出現(xiàn)充血,細(xì)胞腫大,局部呈紅色塊狀,組織界限模糊;脾臟組織出現(xiàn)充血;肺臟組織部分輪廓不清晰,出血,肺泡腔內(nèi)有紅細(xì)胞,肺泡壁增厚;腎臟組織出現(xiàn)充血,腎小球結(jié)構(gòu)不明顯;腸上皮細(xì)胞受損、腫大,腸黏膜壞死,腸絨毛脫落。其中組織病變和病理現(xiàn)象強(qiáng)毒株病變最嚴(yán)重,中等毒株次之,弱毒株最不明顯。

        圖4 組織切片圖

        2.4 基因組組裝

        對(duì)測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)估和組裝,由結(jié)果可得菌株S10670、E24190、P211、P555、P32、P444和P111組裝后得基因組大小依次為5.3 Mb、5.1 Mb、4.7 Mb、4.8 Mb、4.9 Mb、4.8 Mb和4.6 Mb,GC含量均在50%左右,基因組大小和GC含量均在大腸桿菌基因組大小和GC含量的正常范圍,其它詳細(xì)信息見(jiàn)表4,組裝結(jié)果可知菌株S10670的基因組最大。

        表4 基因組組裝結(jié)果

        2.5 基因預(yù)測(cè)

        對(duì)組裝好的序列進(jìn)行基因組成分析,菌株S10670、E24190、P211、P555、P32、P444和P111采用Glimmer軟件預(yù)測(cè)基因數(shù)量分別為5 124、4 936、4 563、4 601、4 762、4 724和4 376,用rRNAmmer1.2軟件預(yù)測(cè)出的rRNA數(shù)量依次為9個(gè)、9個(gè)、5個(gè)、5個(gè)、3個(gè)、3個(gè)和7個(gè),tRNAscan軟件預(yù)測(cè)出的tRNA數(shù)量依次為85個(gè)、74個(gè)、75個(gè)、66個(gè)、77個(gè)、70個(gè)和74個(gè),基因、rRNA、tRNA數(shù)量和GC含量均符合大腸桿菌基因組的基本特征(表5)。

        表5 基因預(yù)測(cè)結(jié)果統(tǒng)計(jì)

        2.6 COG功能注釋

        本研究7株菌株基因的COG分類得到22類,菌株S10670、E24190、P211、P555、P32、P444和P111注釋到的功能基因數(shù)量分別為3 482個(gè)、3 483個(gè)、3 274個(gè)、3 286個(gè)、3 342個(gè)、3 341個(gè)和3 183個(gè)。由圖5可知,注釋到的與代謝相關(guān)基因的數(shù)量最多。

        圖5 COG注釋分類統(tǒng)計(jì)

        2.7 VFDB注釋

        通過(guò)與毒力因子數(shù)據(jù)庫(kù)(VFDB)比對(duì),菌株S10670、E24190、P211、P555、P32、P444和P111注釋到的毒力基因數(shù)量分別為126、61、52、55、47、44、38個(gè),其中分泌系統(tǒng)和黏附與侵襲毒力基因最多。由表6可知,強(qiáng)毒株S10670的基因組中含有志賀毒素基因(Stx),溶血素基因(hlyA,hlyB,hlyC,hlyD,hlyE/clyA),黏附相關(guān)的毒力基因有外膜蛋白黏附素基因(paa)、緊密黏附素基因eae、緊密黏附素易位受體蛋白基因Tir、toxB,血紅素吸收相關(guān)基因(chuA,chuT,chuW,chuX,chuY),大量III型分泌系統(tǒng)相關(guān)基因如NLE系列基因(nleA,nleB1,nleB2-1,nleC,nleE-1,nleF,nleG-1,nleG2-3,nleG7,nleH1-1,nleH1-2)、Esp系列基因(espB,espF,espG,map,tir,espJ,espL1,espL2,espL4,espM1,espR1,espR3,espR4,espW,espX1~espX6,espY1~espY5)、Esc系列基因(escC,escD,escF,escJ,escL,escN,escO,escR,escS,escT,escU,escV)和VI型分泌系統(tǒng)相關(guān)基因(aec15~aec19,aec22~aec32);強(qiáng)毒株E24190基因組中含有腸毒素基因(LT)、溶血素基因(hlyA)和CFA/I菌毛相關(guān)基因(cfaA,cfaB,cfaC,cfaD/cfaE);中等毒株P(guān)211基因組中含有CFA/I菌毛相關(guān)基因(cfaA,cfaB,cfaC,cfaD/cfaE)、P菌毛相關(guān)基因(papA,papC,papD,papH)和鐵轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)吸收系統(tǒng)相關(guān)基因(sitA,sitB,sitC,sitD);中等毒株P(guān)555基因組中含有12個(gè)VI分泌系統(tǒng)相關(guān)基因(aec15~aec19,aec22~aec32);弱毒株P(guān)32、P444和111基因組中含有的毒力基因也存在于菌株S10670、E24190、P211和P555中,如黏附相關(guān)毒力因子大腸桿菌普通菌毛(ECP)、大腸桿菌層粘連蛋白結(jié)合蛋白菌毛(ELF)、出血性大腸桿菌菌毛(HCP)和I型菌毛(Fim),侵襲素相關(guān)毒力因子(ibeB,ibeC),鐵轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)相關(guān)毒力基因(entA,entB,entC,entE,entS,hitC)分泌系統(tǒng)相關(guān)毒力基因(espL1,espL4,espR1,espX1,espX4,espX5,aec15)和溶血素基因(hlyE/clyA)。

        表6 毒力因子統(tǒng)計(jì)

        3 討論與結(jié)論

        大腸桿菌的致病性是由多種毒力因子互相協(xié)作產(chǎn)生。志賀樣毒素(Stx)是一種志賀毒素,具有細(xì)胞毒性、腸毒性、神經(jīng)毒性作用,是毒性最強(qiáng)的細(xì)菌毒素之一,包括Stx1和Stx2兩種亞型,Stx2較Stx1的毒力更強(qiáng),Stx2的變異體Stx2e是導(dǎo)致仔豬發(fā)生水腫病的重要毒素[15]。緊密黏附素eae能使細(xì)菌緊密黏附到腸上皮細(xì)胞,eae與緊密黏附素易位受體蛋白Tir結(jié)合引起進(jìn)一步的信號(hào)傳導(dǎo),細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度驟增,腸內(nèi)液體分泌增加,引起特征性的粘附脫落病變(attaching and effacing,A/E)[16,17]。Chu系列基因編碼的蛋白與血紅素的吸收有關(guān),血紅素是宿主體內(nèi)最豐富的鐵離子資源,主要由chuA基因從細(xì)胞外或者宿主的血紅素中攝取鐵和血紅蛋白中的鐵元素[18]。溶血素(Hemolysin)基因(hlyA,hlyB,hlyC,hlyD,hlyE/clyA)孔道形成蛋白家族的成員,溶血素可溶解哺乳動(dòng)物紅細(xì)胞,在靶細(xì)胞膜上形成孔道繼而殺死靶細(xì)胞[19]。Ⅲ型分泌系統(tǒng)效應(yīng)因子( Non-LEE encoded effactor ,Nle ) NleH和NleD具有抗凋亡活性,NleH能夠促進(jìn)細(xì)胞的生存,抑制腸細(xì)胞的丟失,從而維持大腸桿菌的定值[20]。在感染期過(guò)程中,大腸桿菌表面分子能夠誘導(dǎo)外源性的細(xì)胞凋亡,Ⅲ型分泌系統(tǒng)效應(yīng)因子如EspF,Map能夠誘導(dǎo)內(nèi)源性的凋亡途徑[21]。EspF能夠誘導(dǎo)線粒體的溶解﹑破壞細(xì)胞緊密聯(lián)接結(jié)構(gòu)和促進(jìn)抗凋亡蛋白的降解[22]。Map能夠破壞細(xì)胞之間的緊密聯(lián)結(jié),誘導(dǎo)線粒體功能失活[23]。毒力因子Stx、eae、Tir、Chu、hlyB、hlyC、hlyD和III型分泌系統(tǒng)相關(guān)基因Nle、EspF 、Map在本研究中僅存在于強(qiáng)毒株S10670中,hlyA存在于強(qiáng)毒株S10670和E24190中。熱敏腸毒素(LT)為一種免疫蛋白,與霍亂腸毒素(CT)有著密切關(guān)系,組成一個(gè)毒素家族,LT是產(chǎn)腸毒素大腸桿菌的主要致病因子之一,可引起水樣腹瀉[24]。LT在本研究中僅存在于強(qiáng)毒株E24190中。

        VI型分泌系統(tǒng)(T6SS)是一種新型的分泌系統(tǒng),普遍存在于革蘭氏陰性菌中,最早是在霍亂弧菌中發(fā)現(xiàn)的,T6SS參與細(xì)菌生物膜的形成,并介導(dǎo)細(xì)菌與宿主之間的粘附和毒性作用[25],本研究檢測(cè)到的VI分泌系統(tǒng)是ACE T6SS相關(guān)毒力因子。ACE T6SS僅存在于強(qiáng)毒株S10670和中等毒株P(guān)555中。CFA/I是一種優(yōu)勢(shì)血清型定居因子,整個(gè)CFA/I定居因子由4個(gè)基因 (cfaA,cfaB,cfaC,cfaD/E) 編碼[26,27],編碼的相應(yīng)多肽稱為cfaA,cfaB,cfaC,cfaD/E,成熟定居因子由cfaB和cfaE組成,cfaB是主要結(jié)構(gòu)亞單位,cfaE位于定居因子頂端,二者均能介導(dǎo)CFA/I對(duì)人小腸上皮細(xì)胞相應(yīng)受體的結(jié)合,致病性大腸桿菌通過(guò)其菌體表面的宿主特異性定居因子CFA/I介導(dǎo)粘附于小腸黏膜上皮細(xì)胞[28],大量增殖,釋放腸毒素,引起仔豬腹瀉,CFA/I在本研究中存在于強(qiáng)毒株E24190和中等毒株P(guān)211中。

        P型菌毛多分布于尿道致病性大腸桿菌(UPEC)的黏附素,能介導(dǎo)大腸桿菌粘附于上尿道,P型菌毛是UPEC導(dǎo)致腎盂腎炎的主要毒力因子,已知的編碼P菌毛操縱子的基因有papA、papB、papC、papD、papE、papF、papG、papH和papI,其中 PapA 蛋白是 P 菌毛的主要成分[29]。鐵/錳轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(Iron/manganese transport)是鐵攝取轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)毒力因子,由sitA、sitB、sitC和sitD四個(gè)基因編碼組成,該系統(tǒng)中的sitB是ATP結(jié)合蛋白,所以該系統(tǒng)相當(dāng)于是ATP離子泵,可以提供細(xì)菌轉(zhuǎn)運(yùn)過(guò)程所需的能量,外膜轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)還可以將二價(jià)鐵載入細(xì)胞內(nèi),參與營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的攝取、細(xì)菌毒素的分泌以及將抗生素泵出細(xì)胞使細(xì)菌具有抗藥性[30]。P菌毛和鐵/錳轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白本研究中僅存在于中等毒株P(guān)211中。

        綜上所述,本研究通過(guò)細(xì)菌感染小鼠鑒別7株菌株的致病力,采用二代測(cè)序技術(shù)測(cè)定7株致病性大腸桿菌的基因組序列,經(jīng)組裝,得到致病力相關(guān)的毒力基因,研究結(jié)果為大腸桿菌分子致病機(jī)制奠定理論基礎(chǔ)。

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