陳 瓊，陳 朋，李俊穎，崔紹華，喬 倩

（仙樂(lè)健康科技股份有限公司，廣東汕頭 515041）

兒童由于免疫系統(tǒng)不成熟，通常會(huì)比成年人更容易受到微生物的感染和引發(fā)更嚴(yán)重的疾病[1]，據(jù)報(bào)道，呼吸道感染疾病常發(fā)于5 歲以下兒童[2-3]。因此提高兒童的免疫力，增強(qiáng)兒童對(duì)感染性疾病的抵抗能力，有助于兒童的健康成長(zhǎng)。

β-葡聚糖是由葡萄糖分子構(gòu)成的多糖類化合物，是真菌、酵母、一些細(xì)菌和燕麥、大麥等谷物細(xì)胞壁的主要結(jié)構(gòu)成分[4]。其中酵母β-葡聚糖是首個(gè)被發(fā)現(xiàn)具有免疫增強(qiáng)作用的葡聚糖[5]，被公認(rèn)是一個(gè)潛在的免疫調(diào)節(jié)劑，同時(shí)對(duì)先天免疫和適應(yīng)性免疫有加強(qiáng)作用。動(dòng)物體內(nèi)不存在β-葡聚糖，因此β-葡聚糖會(huì)觸發(fā)人體的免疫響應(yīng)，包括促進(jìn)吞噬作用和細(xì)胞因子的產(chǎn)生，從而增強(qiáng)機(jī)體消除感染因子的能力[6]；同時(shí)有研究表明β-葡聚糖可以增強(qiáng)T 細(xì)胞刺激能力，進(jìn)而促進(jìn)相關(guān)細(xì)胞因子的分泌，增強(qiáng)適應(yīng)性免疫能力[7]。鋅為兒童生長(zhǎng)發(fā)育的必要營(yíng)養(yǎng)素，對(duì)于免疫系統(tǒng)的發(fā)育及免疫功能有一定的促進(jìn)作用。鋅是中樞免疫器官發(fā)育，免疫細(xì)胞及免疫因子發(fā)揮正常免疫功能的保持所必須的必要元素之一，它通過(guò)干預(yù)胸腺的成熟發(fā)育，細(xì)胞因子的產(chǎn)生，調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡和基因轉(zhuǎn)錄來(lái)參與免疫過(guò)程[8]，缺乏鋅可能會(huì)導(dǎo)致巨噬細(xì)胞殺害胞內(nèi)寄生物的能力以及Th 淋巴細(xì)胞和NK 細(xì)胞的活性降低，從而影響T 細(xì)胞免疫功能[9]。

目前，關(guān)于酵母β-葡聚糖和鋅二者的復(fù)合配方研究主要為體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)或以魚(yú)為研究模型[10-12]，對(duì)于酵母β-葡聚糖或鋅免疫調(diào)節(jié)功能的研究也多用成年鼠作為研究對(duì)象[13-14]，隨著小鼠周齡數(shù)增長(zhǎng)，其免疫系統(tǒng)結(jié)構(gòu)與功能會(huì)發(fā)生改變，例如出現(xiàn)結(jié)構(gòu)退化、功能減退等[15]，因此酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)成年鼠的研究結(jié)果無(wú)法客觀反映其對(duì)幼年鼠免疫功能的影響。為了解二者組合對(duì)生長(zhǎng)發(fā)育期免疫系統(tǒng)的影響，本試驗(yàn)擬用幼齡小鼠，并以環(huán)磷酰胺構(gòu)建免疫低下模型，在此基礎(chǔ)上以酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)其進(jìn)行干預(yù)，旨在于探究酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方是否可以逆轉(zhuǎn)由環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的幼齡小鼠免疫抑制。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

SPF 級(jí)BALB/c 幼鼠（3 周齡）48 只，體重（13.52±2.06）g，實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)SCXK（粵）2013-0002，實(shí)驗(yàn)動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào)No.44007200058759 廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心；酵母β-葡聚糖 湖北安琪酵母有限公司；檸檬酸鋅 鄭州瑞普生物工程有限公司；小鼠IL-2、TNF-α、IFN-γ、SIgA 酶聯(lián)免疫檢測(cè)試劑盒 天津安諾瑞康生物技術(shù)有限公司；無(wú)菌脫纖維羊血 南京茂捷微生物科技有限公司；水楊酸緩沖液 武漢百浩天生物科技有限公司。

JJ3000 型動(dòng)物電子秤 美國(guó)G&G 公司；Cellometer Mini 型自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)儀 美國(guó)Nexcelom 公司；5424型小型高速離心機(jī) 德國(guó)Eppendorf 公司；Varioskan Flash 型全波長(zhǎng)多功能酶標(biāo)儀 美國(guó)Thermo 公司；Cytomics FC500MPL 流式細(xì)胞儀 美國(guó)Beckman Coulter 公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 動(dòng)物分組及給藥 分組：將所有小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)一周后隨機(jī)分成空白組、模型組及復(fù)合物組，每組各16 只，雌雄各半。復(fù)合物組劑量參考人群實(shí)驗(yàn)所用劑量進(jìn)行設(shè)計(jì)，給予酵母β-葡聚糖和鋅復(fù)合配方（相當(dāng)于酵母β-葡聚糖：90 mg/kg/d、鋅：2.8 mg/kg/d），酵母β-葡聚糖和鋅（來(lái)源于檸檬酸鋅）用等量遞增法進(jìn)行混合均勻，模型組與空白組給予等體積蒸餾水，每日灌胃1 次，實(shí)驗(yàn)周期為4 周（28 d）。實(shí)驗(yàn)期間，溫度恒定、通風(fēng)，所有小鼠自由飲食、飲水。在給藥的第14、15 d 對(duì)模型組和復(fù)合物組小鼠腹腔注射環(huán)磷酰胺40 mg/kg 以造小鼠免疫抑制模型。試驗(yàn)第29 d，將各組小鼠再次分為兩組（每組8 只，雌雄各半）：第Ⅰ組小鼠用于體重與免疫器官質(zhì)量測(cè)定、白細(xì)胞和淋巴細(xì)胞計(jì)數(shù)、細(xì)胞因子含量測(cè)定、脾淋巴細(xì)胞活性與NK 細(xì)胞活性測(cè)定、派氏結(jié)數(shù)目計(jì)數(shù)與SIgA 含量測(cè)定實(shí)驗(yàn)、小腸形態(tài)學(xué)觀察；第Ⅱ組小鼠腹腔注射0.2 mL 2%（v/v）綿羊血紅細(xì)胞（Sporeshaped Red Blood Cell,SRBC），并于4 d 后（即第33 d）用于溶血空斑試驗(yàn)與血清溶血素測(cè)定。

1.2.2 小鼠體重與免疫器官質(zhì)量測(cè)定 實(shí)驗(yàn)前將第I 組小鼠進(jìn)行稱重并記錄，最后一次給藥24 h 后對(duì)每只小鼠稱重并記錄，進(jìn)行取血，完整解剖摘取脾臟、胸腺，去除脂肪和筋膜組織后稱重，根據(jù)臟器指數(shù)計(jì)算公式計(jì)算胸腺指數(shù)和脾臟指數(shù)。

臟器指數(shù)計(jì)算公式：臟器指數(shù)（g/g）=臟器質(zhì)量（g）× 100/體重（g）

1.2.3 小鼠白細(xì)胞和淋巴細(xì)胞計(jì)數(shù) 取第Ⅰ組小鼠血液，用全自動(dòng)血細(xì)胞分析儀檢測(cè)白細(xì)胞數(shù)和淋巴細(xì)胞數(shù)。

1.2.4 細(xì)胞因子含量測(cè)定 取第I 組小鼠全血在4 ℃7500 r/min 離心15 min，收集上清液，按照試劑盒說(shuō)明書(shū)方法檢測(cè)血清IL-2、TNF-α 及IFN-γ 含量。

1.2.5 溶血空斑試驗(yàn)與血清溶血素測(cè)定 參照《保健食品檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)規(guī)范》[16]中方法取第II 組小鼠脾細(xì)胞進(jìn)行溶血空斑試驗(yàn)，取第II 組小鼠血清進(jìn)行血清溶血素半數(shù)溶血值HC50測(cè)定。

1.2.6 小鼠脾淋巴細(xì)胞活性與NK 細(xì)胞活性測(cè)定參考徐榮[17]實(shí)驗(yàn)方法，無(wú)菌取第I 組小組脾臟，制備脾細(xì)胞懸液；脾淋巴細(xì)胞活性應(yīng)用ConA 刺激脾淋巴細(xì)胞分化增殖，采用四甲基偶氮唑鹽（MTT）法測(cè)定；NK 細(xì)胞活性采用乳酸脫氫酶（LDH）法測(cè)定。

1.2.7 小鼠派氏結(jié)數(shù)目計(jì)數(shù)與SIgA 含量測(cè)定 取第Ⅰ組小鼠全段小腸，計(jì)數(shù)小腸派氏結(jié)的個(gè)數(shù)。再取出靠近十二指腸段的空腸約5 cm，刮取腸黏膜內(nèi)容物，溶于PBS 溶液中，按試劑盒說(shuō)明書(shū)方法測(cè)定SIgA含量。

1.2.8 小鼠小腸形態(tài)學(xué)觀察 取第I 組小鼠小腸空腸段置于10%甲醛中固定，常規(guī)石蠟包埋后制作切片，進(jìn)行HE 染色，光鏡下觀察并拍照，測(cè)量小腸絨毛高度、隱窩深度，并計(jì)算絨毛高度與隱窩深度的比值，計(jì)數(shù)每張切片每100 個(gè)腸黏膜柱狀上皮細(xì)胞間的杯狀細(xì)胞數(shù)量。

1.3 數(shù)據(jù)處理

試驗(yàn)結(jié)果以均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示，并應(yīng)用SPSS 20.0 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析，總體均值的比較采用單因素方差分析（One-Way ANOVA），方差齊性時(shí)，組間比較采用LSD 法檢驗(yàn)，方差不齊時(shí)需對(duì)原始數(shù)據(jù)做函數(shù)變換使各組達(dá)到方差齊性后再用LSD 法進(jìn)行組間比較，P＜0.05 表示有顯著性差異，P＜0.01 表示有極顯著性差異。

2 結(jié)果與分析

2.1 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠體重及免疫器官系數(shù)的影響

如圖1 所示，三組間的初始體重沒(méi)有差異，最終體重也沒(méi)有差異（圖1a ）。與空白組相比（圖1b、圖1c），模型組經(jīng)過(guò)腹腔注射環(huán)磷酰胺后，脾臟系數(shù)顯著降低（P＜0.05），胸腺系數(shù)極顯著降低（P＜0.01），說(shuō)明環(huán)磷酰胺成功誘導(dǎo)了幼年小鼠的免疫器官發(fā)育缺陷。復(fù)合物組小鼠在被給予酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方后，與模型組相比，脾臟系數(shù)和胸腺系數(shù)都顯著升高（P＜0.05），結(jié)果說(shuō)明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠改善環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的幼齡小鼠免疫器官發(fā)育缺陷，這與汪巖等實(shí)驗(yàn)結(jié)果相一致[18]。

圖1 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠體重及臟器系數(shù)的影響（Mean±SD，n=8）Fig.1 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on body weight and viscera coefficient in immature mice

2.2 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠白細(xì)胞及淋巴細(xì)胞的影響

如圖2 所示，與空白組相比，模型組小鼠白細(xì)胞數(shù)和淋巴細(xì)胞比例均下降，但二者均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異（P＞0.05）。與模型組相比，復(fù)合物組小鼠在被給予酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方后白細(xì)胞數(shù)極顯著性提高（P＜0.01），淋巴細(xì)胞比例顯著提高（P＜0.05）。結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠有效提高由環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的免疫抑制幼齡小鼠白細(xì)胞數(shù)和淋巴細(xì)胞比例。

圖2 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠白細(xì)胞數(shù)及淋巴細(xì)胞比例的影響（Mean±SD，n=8）Fig.2 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on number of white blood cells and lymphocyte ratio in immature mice

2.3 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠血清細(xì)胞因子的影響

IL-2 濃度升高可激活Th2 細(xì)胞，提高機(jī)體的體液免疫應(yīng)答[19]；IFN-γ則可通過(guò)活化Th1 細(xì)胞，提高機(jī)體細(xì)胞免疫效能[20]，TNF-α是由巨噬細(xì)胞被激活而產(chǎn)生的，其能提高巨噬細(xì)胞的吞噬活性[21]。如圖3 所示，與空白組相比，模型組血清中IL-2、TNFα和IFN-γ含量均下降，其中TNF-α（圖3b ）、IFNγ（圖3c ）的含量極顯著降低（P＜0.01），IL-2（圖3a ）含量顯著降低（P＜0.05）。復(fù)合物組小鼠血清IL-2、TNF-α 和IFN-γ 含量有不同程度的提高，與模型組相比，IL-2 含量上升，但未見(jiàn)顯著性，而 TNF-α和IFN-γ含量均極顯著提高（P＜0.01）。結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠改善環(huán)磷酰胺導(dǎo)致的幼齡小鼠細(xì)胞因子分泌減少，其中對(duì)抑制TNF-α和IFN-γ的減少尤為顯著（P＜0.01）。

圖3 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠血清IL-2、TNF-α 和IFN-γ 的影響（Mean±SD，n=8）Fig.3 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on contents of IL-2,TNF-α and IFN-γ in serum of immature mice

2.4 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠血清溶血素HC50 及溶血空斑數(shù)的影響

血清溶血素HC50和溶血空斑數(shù)是常用于衡量生物體體液免疫功能的指標(biāo)[16]。如圖4 所示，與空白組相比，模型組小鼠血清溶血素HC50、溶血空斑數(shù)均極顯著降低（P＜0.01）。復(fù)合物組小鼠血清溶血素HC50及溶血空斑數(shù)與模型組相比均得到提高，且具極顯著性（P＜0.01），與空白組相比無(wú)顯著性變化（P＞0.05）。以上結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠有效抑制環(huán)磷酰胺引起的免疫低下幼齡小鼠的血清溶血素水平和溶血空斑數(shù)的減少。

圖4 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠血清溶血素HC50 及溶血空斑數(shù)的影響（Mean±SD，n=8）Fig.4 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on serum hemolysin HC50 and number of hemolytic plaques in immature mice

2.5 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖能力及NK 細(xì)胞活性的影響

如圖5 所示，與空白組相比，模型組脾淋巴細(xì)胞增殖活性（圖5a ）、NK 細(xì)胞活性（圖5b ）均極顯著降低（P＜0.01）。復(fù)合物組小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖活性、NK 細(xì)胞活性與模型組相比均得到提升，其中淋巴細(xì)胞增殖活性顯著提高（P＜0.05），NK 細(xì)胞活性極顯著提高（P＜0.01）。以上結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠逆轉(zhuǎn)由環(huán)磷酰胺引起幼齡小鼠的脾淋巴細(xì)胞和NK 細(xì)胞的活性降低。

圖5 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖能力及NK 細(xì)胞活性的影響（Mean±SD，n=8）Fig.5 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on proliferation ability of splenic lymphocytes and NK cell activity in immature mice

2.6 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠小腸SIgA含量及小腸派氏結(jié)數(shù)量的影響

SIgA 是腸道黏膜免疫的功能指標(biāo)，通過(guò)產(chǎn)生抗體與抗原特異性結(jié)合，抑制病原微生物的黏附功能。派式結(jié)是腸道B 細(xì)胞的生發(fā)中心，生成分泌型IgA（SIgA）[22]。如圖6 所示，與空白組相比，模型組小鼠小腸SIgA（圖6a）分泌的含量極顯著降低(P＜0.01)，派氏結(jié)數(shù)目（圖6b）顯著減少（P＜0.05），提示環(huán)磷酰胺成功誘導(dǎo)了腸道免疫功能障礙。與模型組相比，復(fù)合物組小鼠小腸SIgA 含量顯著提高（P＜0.05），派氏結(jié)數(shù)也極顯著增多（P＜0.01）。以上結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠緩解環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的幼齡小鼠小腸SIgA 含量降低以及派氏結(jié)數(shù)量減少。

圖6 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠小腸SIgA 含量及小腸派氏結(jié)數(shù)量的影響（Mean±SD，n=8）Fig.6 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on the content of SIgA and the number of PPs in small intestine of immature mice

2.7 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠腸道黏膜形態(tài)的影響

杯狀細(xì)胞分泌腸道中黏蛋白[23]，隱窩深淺，可以側(cè)面體現(xiàn)小腸上皮細(xì)胞成熟率，分泌、吸收等腸細(xì)胞功能[24]。如圖7 所示，與空白組相比，模型組小腸絨毛高度（圖7a）、隱窩深度（圖7b）、絨毛高度/隱窩深度（圖7c）、杯狀細(xì)胞數(shù)量（圖7d）的均無(wú)顯著性差異（P＞0.05）。與模型組相比，復(fù)合物組小鼠小腸絨毛高度、絨毛高度/隱窩深度比值無(wú)顯著差異，而隱窩深度顯著性降低（P＜0.05）、杯狀細(xì)胞數(shù)顯著升高（P＜0.05）。以上結(jié)果表明酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠顯著（P＜0.05）增加幼齡小鼠小腸杯狀細(xì)胞數(shù)量，并且有效（P＜0.05）減少小鼠小腸隱窩深度。

圖7 酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方對(duì)幼齡小鼠絨毛高度、隱窩深度、絨毛高度/隱窩深度及杯狀細(xì)胞數(shù)的影響（M±SD，n=8）Fig.7 Effects of yeast β-glucan and zinc compound formula on villus height,crypt depth,villus height/crypt depth,and the number of goblet cells in small intestine of immature mice

3 討論與結(jié)論

本研究中，模型組小鼠免疫器官指數(shù)、白細(xì)胞數(shù)、淋巴細(xì)胞數(shù)、NK 細(xì)胞活性和免疫相關(guān)細(xì)胞因子均顯著（P＜0.05）低于空白組，表明本研究成功地用環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)了幼齡小鼠的免疫抑制。然而，攝取β-葡聚糖和鋅復(fù)合配方的小鼠，經(jīng)環(huán)磷酰胺處理后，免疫器官指數(shù)、外周血中白細(xì)胞和淋巴細(xì)胞比例，淋巴細(xì)胞增殖活性顯示均顯著（P＜0.05）高于模型組小鼠，提示酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方能夠逆轉(zhuǎn)環(huán)磷酰胺導(dǎo)致的小鼠免疫器官缺陷和免疫細(xì)胞減少。

T 細(xì)胞是一種重要的免疫細(xì)胞，分化成熟后經(jīng)循環(huán)系統(tǒng)分布至外周免疫器官。其中輔助型T 細(xì)胞（Th1 和Th2）分泌的不同類型的細(xì)胞因子是決定細(xì)胞功能的重要因素，主要表現(xiàn)為T(mén)h1 細(xì)胞調(diào)節(jié)機(jī)體細(xì)胞免疫功能，Th2 細(xì)胞參與體液免疫應(yīng)答。環(huán)磷酰胺可以通過(guò)使Th1/Th2 發(fā)生細(xì)胞偏倚，誘導(dǎo)免疫抑制[25]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)，Th1、Th2 分泌細(xì)胞因子（IL-2、IFN-γ）在攝取酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方條件下獲得顯著（P＜0.05）上調(diào)，此結(jié)果與Bakheet 的研究結(jié)果一致[26]。在后續(xù)研究中，建議將通過(guò)細(xì)胞流式技術(shù)檢測(cè)Th1、Th2 細(xì)胞數(shù)量，確認(rèn)Th1/Th2 細(xì)胞比值。

除了輔助型T 細(xì)胞以外，巨噬細(xì)胞和NK 細(xì)胞是參與殺傷腫瘤細(xì)胞的兩種主要效應(yīng)細(xì)胞，巨噬細(xì)胞和NK 細(xì)胞被細(xì)胞因子和趨化因子激活，在調(diào)節(jié)腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移以及去除病毒中發(fā)揮核心作用[27-28]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方逆轉(zhuǎn)環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)NK 細(xì)胞活性下降以及巨噬細(xì)胞分泌細(xì)胞因子（TNF-α）濃度減少。

腸道黏膜免疫系統(tǒng)是機(jī)體最大，也是相對(duì)獨(dú)立的免疫系統(tǒng)，是機(jī)體對(duì)抗病原體感染的第 一層屏障，同時(shí)，也在維護(hù)宿主與外環(huán)境間的黏膜穩(wěn)態(tài)上發(fā)揮重要作用。有報(bào)道證明以成年小鼠為研究對(duì)象酵母β-葡聚糖可提高SIgA 含量[4]，而鋅通過(guò)調(diào)控小腸上皮細(xì)胞，宿主免疫細(xì)胞等來(lái)維持小腸內(nèi)穩(wěn)態(tài)，是保持適當(dāng)腸黏膜厚度的基礎(chǔ)[29]，本研究結(jié)果首次證明了，以幼齡小鼠為實(shí)驗(yàn)對(duì)象，酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合物可以通過(guò)調(diào)節(jié)腸道黏膜免疫緩解環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的免疫抑制。

綜上所述，本研究發(fā)現(xiàn)酵母β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方可以通過(guò)逆轉(zhuǎn)免疫器官缺陷，提高免疫細(xì)胞數(shù)量，同時(shí)增強(qiáng)特異性免疫和非特異性免疫，提高腸道黏膜免疫，來(lái)逆轉(zhuǎn)環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的幼齡小鼠免疫抑制現(xiàn)象，證明β-葡聚糖加鋅復(fù)合配方具有較好的調(diào)節(jié)幼齡小鼠免疫機(jī)能的作用。