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        小麥粉中2種新型真菌毒素含量測定方法

        2021-06-10 06:51:40周貽兵李磊吳玉田劉利亞
        食品工業(yè) 2021年5期

        周貽兵,李磊,吳玉田,劉利亞*

        貴州省疾病預(yù)防控制中心(貴陽 550004)

        真菌毒素是農(nóng)產(chǎn)品的主要污染物質(zhì)之一,且隨著氣候變化,產(chǎn)毒真菌譜及真菌毒素發(fā)生顯著變化,新興真菌毒素不斷被發(fā)現(xiàn),成為世界各國高度關(guān)注的食品安全熱點(diǎn)問題[1]。新興真菌毒素白僵菌素(BEA)和恩鐮孢菌素B(ENB)是由鐮刀菌屬真菌侵染小麥、玉米等農(nóng)作物后,在潮濕和低溫條件下產(chǎn)生的環(huán)狀六縮酚酸肽類真菌毒素[2-3]。BEA和ENB能提高陽離子穿過細(xì)胞膜能力,由此干擾正常生理水平下細(xì)胞的陽離子水平、影響細(xì)胞膜的電化學(xué)梯度,而產(chǎn)生細(xì)胞毒性、免疫毒性、血液等方面毒性[4-5]。國內(nèi)并無2種新興毒素檢測國家標(biāo)準(zhǔn),給農(nóng)產(chǎn)品中BEA和ENB污染狀況調(diào)查帶來難度,因此,建立小麥粉中BEA和ENB準(zhǔn)確、可操作性強(qiáng)的檢測方法為農(nóng)產(chǎn)品檢測提供參考。

        農(nóng)產(chǎn)品中真菌毒素常使用混合溶劑提取,采用QuEChERS法、免疫親和柱、多功能凈化柱、固相萃取柱等凈化方法有效降低基質(zhì)影響,使用液相色譜或液相色譜質(zhì)譜法進(jìn)行檢測[6-14]。在綜合文獻(xiàn)基礎(chǔ)上,結(jié)合面粉基質(zhì)干擾情況,采用PEP固相萃取柱凈化,對待凈化液、淋洗液中乙腈比例進(jìn)行優(yōu)化,建立UPLC-MS/MS檢測小麥粉中BEA和ENB這2種新興真菌毒素含量,為分析小麥粉中BEA和ENB這2種新興真菌毒素污染現(xiàn)狀提供參考依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        Ultimate 3000-TSQ Quantum Ultra超高壓液相色譜-三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀,配有電噴霧離子源(ESI)(美國Thermo公司);3-18K臺式高速離心機(jī)(Sigma中國有限公司);Milli-Q超純水機(jī)(美國密理博公司);IKA MS3渦旋混均儀(德國IKA公司);T 460 H型超聲波清洗器(北京博勵行儀器有限公司)。

        乙腈、甲酸(色譜純,美國Thermo公司);乙酸銨(LC-MS級,阿拉丁試劑上海有限公司)、氨水(優(yōu)級純,上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);PEP固相萃取柱(200 mg 6cc,美國Thermo公司);MycoSep 226、MycoSep 227、MycoSep 228多功能凈化柱(Romer國際貿(mào)易有限公司);實(shí)驗(yàn)用水為一級水;白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)品和恩鐮飽菌素B標(biāo)準(zhǔn)品(青島普瑞邦生物工程有限公司)。

        白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)品貯備液(1 mg/mL):取10 mg白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)品于10 mL容量瓶中,用乙腈定容至刻度,搖勻,備用。

        白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)溶液(100 μg/mL):準(zhǔn)確吸取1.00 mL質(zhì)量濃度1 mg/mL白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)貯備液于10 mL容量瓶中,用乙腈定容至刻度,搖勻,即得質(zhì)量濃度100 μg/mL白僵菌素標(biāo)準(zhǔn)溶液。

        白僵菌素和恩鐮孢菌素B混合標(biāo)準(zhǔn)溶液:分別準(zhǔn)確吸取質(zhì)量濃度均為100 μg/mL白僵菌素和恩鐮飽菌素B標(biāo)準(zhǔn)溶液1.00 mL和0.50 mL于10 mL容量瓶中,用乙腈定容至刻度,搖勻,備用。

        1.2 儀器工作條件

        1.2.1 色譜條件

        ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(100 mm×2.1 mm×1.7 μm,Waters公司);柱溫35 ℃;進(jìn)樣體積5 μL;流動相A為0.1%甲酸水溶液;流動相B為甲醇;梯度洗脫程序:0~0.5 min 95% A,0.5~7.5 min 95%的A線性變化為10%,7.5~11 min 10% A,11.1~14 min 95%A;流速0.3 mL/min。

        1.2.2 質(zhì)譜條件

        電噴霧(ESI+)離子源;噴霧電壓3 500 V;毛細(xì)管溫度300 ℃;蒸發(fā)溫度300 ℃;鞘氣壓力273 kPa;輔助氣102 kPa;碰撞氣0.2 Pa;多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)優(yōu)化參數(shù)見表1。

        表1 質(zhì)譜參數(shù)

        1.3 樣品提取與凈化

        準(zhǔn)確稱取5 g(精確至0.01 g)樣品于50 mL聚丙烯離心管中,加入30 mL乙腈-甲酸-水(體積比84︰1︰15)溶液,渦旋混勻,超聲提取30 min,渦旋提取1 min,以10 000 r/min離心5 min,轉(zhuǎn)移提取液于50 mL刻度離心管中,加入10 mL乙腈-甲酸-水(體積比84︰1︰15)溶液重復(fù)提取1次,離心,合并提取液,用乙腈-甲酸-水(體積比84︰1︰15)溶液定容至40 mL,混均,準(zhǔn)確吸取10 mL提取液于50 mL刻度離心管中,加入15 mL水稀釋,混均,待凈化。將樣品待凈化液經(jīng)6 mL甲醇和6 mL水活化后的PEP固相萃取柱凈化,3 mL乙腈-水溶液(體積比40︰60)淋洗并抽干固相萃取柱,用3 mL乙腈均分2次洗脫P(yáng)EP固相萃取柱,收集洗脫液,混均,渦旋混勻,過0.22 μm微孔濾膜,上機(jī)測定。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 監(jiān)測模式的選擇

        BEA和ENB 2種新興真菌毒素分子式分別為C45H57N3O9和C33H57N3O9,相對分子質(zhì)量為783.4和639.4,BEA在N-甲基-氨基酸殘基上具有苯基,ENB在相同位置上具有異丙基,均為環(huán)狀六縮酚酸肽類結(jié)構(gòu),在液質(zhì)中易于離子化。在甲醇-0.1%甲酸水溶液為流動相、0.3 mL/min流速條件下,以10 μL/min通過針泵將質(zhì)量濃度均為0.5 μg/mL BEA和ENB這2種新興真菌毒素注入質(zhì)譜儀器中,采用正離子和負(fù)離子模式進(jìn)行全掃描,BEA和ENB均在ESI+模式下響應(yīng)信號遠(yuǎn)高于ESI-模式下響應(yīng)信號,所以選擇ESI+模式檢測2種新興真菌毒素。比較ESI+模式下BEA和ENB的[M+H]+、[M+Na]+、[M+K]+、[M+NH4]+的響應(yīng)情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),BEA和ENB這2種真菌毒素[M+H]+響應(yīng)值>[M+NH4]+響應(yīng)值>[M+Na]+響應(yīng)值>[M+K]+響應(yīng)值。同時,考察甲醇-5 mmol/L的醋酸銨水溶液為流動相條件下,BEA和ENB的響應(yīng)情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)BEA的[M+H]+響應(yīng)值>[M+NH4]+;ENB的[M+H]+響應(yīng)值<[M+NH4]+響應(yīng)值,但[M+NH4]+與甲醇-0.1%甲酸水溶液為流動相條件下的[M+H]+響應(yīng)無顯著提高,且以[M+NH4]+為準(zhǔn)分子離子進(jìn)行碰碎,響應(yīng)高、穩(wěn)定的碎片離子為m/z640.7,196.0和214.1,而m/z640.7是ENB的[M+H]+離子之間相互串?dāng)_,影響定量,所以綜合考慮選擇甲醇-0.1%甲酸水溶液為流動相,BEA和ENB這2種新興真菌毒素均以[M+H]+準(zhǔn)分子離子為母離子進(jìn)行碰碎,進(jìn)行二級質(zhì)譜掃描,選擇響應(yīng)較高、穩(wěn)定且干擾較小的2個碎片離子構(gòu)成監(jiān)測離子對,同時對透鏡電壓、碰撞能量等質(zhì)譜條件進(jìn)行優(yōu)化,優(yōu)化后的質(zhì)譜條件見表1。

        BEA和ENB這2種新興真菌毒素極性較弱,在反相C18色譜柱上保留較強(qiáng),采用甲醇-0.1%甲酸水溶液梯度洗脫,BEA和ENB標(biāo)準(zhǔn)的TIC圖譜見圖1。

        2.2 樣品提取液的優(yōu)化

        農(nóng)產(chǎn)品中真菌毒素常采用乙腈、甲醇、乙腈-水、甲醇-水、酸化乙腈、酸化甲醇、酸化乙腈-水和酸化的甲醇-水溶液提取。因?yàn)樾←湻壑械矸酆偷鞍椎冉M分在提取過程中易發(fā)生交聯(lián)而影響毒素提取效果,所以在提取過程中需加水浸泡展開提高提取效率。BEA和ENB極性弱,仍采用真菌毒素常用的提取溶劑乙腈-水(體積比84︰16)混合溶液提取2種新興毒素,同時比較含1%甲酸酸化的乙腈-水溶液與未酸化的乙腈-水溶液對2種新興毒素的提取回收率,結(jié)果表明,小麥粉中BEA采用含1%甲酸酸化的乙腈-水溶液提取回收率(76.25%~99.31%)略高于未酸化乙腈-水溶液的回收率(72.15%~98.93%),而ENB采用含1%甲酸酸化的乙腈-水溶液提取回收率(74.60%~91.17%)略低于未酸化乙腈-水溶液的回收率(76.85%~93.67%);相同濃度下ENB的響應(yīng)高于BEA的響應(yīng),為了2種新興毒素同時檢測,優(yōu)先滿足靈敏度低BEA響應(yīng),綜合考慮選擇含1%甲酸酸化的乙腈-水溶液提取小麥粉中BEA和ENB這2種新興真菌毒素。

        圖1 標(biāo)準(zhǔn)的TIC圖譜

        2.3 凈化方法、待凈化液、淋洗液中乙腈比例和洗脫液乙腈用量的優(yōu)化

        小麥粉樣品基質(zhì)的存在影響B(tài)EA和ENB離子化效率,需采用一定凈化方法減小基質(zhì)的影響。真菌毒素常采用特異性強(qiáng)、回收率高的免疫親和柱凈化,凈化效果較佳,但BEA和ENB這2種新興毒素缺乏商品化市售免疫親和柱。文獻(xiàn)報道,采用快速Q(mào)uEChERS法凈化,BEA和ENB這2種新興真菌毒素的基質(zhì)標(biāo)曲與溶劑標(biāo)曲斜率比值分別為0.744和0.526,仍存在較強(qiáng)基質(zhì)抑制效應(yīng),凈化效果不佳[11]。分析吸附雜質(zhì)型多功能凈化柱MycoSep 226、MycoSep 227、MycoSep 228凈化效果,結(jié)果表明,3種多功能柱均吸附BEA和ENB這2種新興真菌毒素,吸附率在90%以上,不適用于小麥粉中BEA和ENB的凈化??疾鞂O性和非極性化合物均有保留且回收率受柱床干涸影響較小的PEP固相萃取柱凈化效果,BEA和ENB這2種新興真菌毒素的低、中、高3個濃度水平的回收率分別在76.25%~99.31%和74.60%~91.17%,滿足小麥粉中痕量BEA和ENB檢測。對比待凈化液中乙腈含量對BEA和ENB這2種新興真菌毒素回收率影響,結(jié)果表明,隨著乙腈比例增加,2種新興真菌毒素在PEP柱上保留特性顯著提高,但待凈化液中乙腈比例超過40%后,PEP固相萃取柱對BEA和ENB這2新興真菌毒素保留下降,所以采用PEP固相萃取柱凈化時,應(yīng)將樣品提取液進(jìn)行稀釋,乙腈比例控制在30%~40%,保證PEP固相萃取柱對BEA和ENB最佳保留效果。對比淋洗液中不同比例乙腈-水溶液對BEA和ENB這2種新興真菌毒素回收率影響,結(jié)果表明淋洗液中乙腈比例越高,淋洗雜質(zhì)效果越好,基質(zhì)抑制越弱,但淋洗液中乙腈比例超過40%,BEA和ENB被部分洗脫,回收率下降,淋洗液中乙腈比例50%時,ENB回收率降至80%以下,采用40%乙腈-水溶液,淋洗雜質(zhì),減少基質(zhì)的干擾??疾煜疵撘阂译嬗昧浚捎?.5 mL乙腈洗脫固相萃取柱中的BEA和ENB時,2種新興真菌毒素洗脫率在96%左右,目標(biāo)物洗脫不完全,所以加入1.5 mL乙腈洗脫對目標(biāo)物進(jìn)行洗脫,保證2種新興真菌毒素洗脫完全。

        2.4 基質(zhì)效應(yīng)的考察

        食品樣品基質(zhì)復(fù)雜,在UPLC-MS/MS分析中不可避免產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng),表現(xiàn)為基質(zhì)增強(qiáng)或基質(zhì)抑制。采用基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液曲線斜率和溶劑標(biāo)準(zhǔn)溶液曲線斜率之比(K)評價基質(zhì)效應(yīng),K大于1時為基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng),K小于1時為基質(zhì)減弱效應(yīng),K等于1時無基質(zhì)效應(yīng),結(jié)果表明,BEA和ENB這2種新興真菌毒素使用PEP固相萃取柱凈化后的小麥粉空白基質(zhì)溶液配制標(biāo)準(zhǔn)曲線和溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率比分別為0.945和0.922,即基質(zhì)抑制效應(yīng)在可接受范圍內(nèi),為提高小麥粉中BEA和ENB定量結(jié)果準(zhǔn)確性,仍采用基質(zhì)匹配的標(biāo)準(zhǔn)曲線定量。

        2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線與定量限

        將BEA和ENB這2種新興真菌毒素混合標(biāo)準(zhǔn)溶液逐級稀釋,用小麥粉樣品空白凈化基質(zhì)溶液配制成BEA質(zhì)量濃度為0,1.25,2.50,5.00,10.0,20.0,30.0,40.0和50.0 ng/mL以及ENB質(zhì)量濃度為0,0.625,1.25,2.50,5.00,10.0,15.0,20.0和25.0 ng/mL基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線,在優(yōu)化的儀器工作條件下進(jìn)樣分析,以質(zhì)量濃度(x)為橫坐標(biāo)、響應(yīng)值峰面積(Y)為縱坐標(biāo)繪制基質(zhì)匹配的標(biāo)準(zhǔn)曲線,BEA和ENB基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程分別為YBEA=2.71×105x+1.67×104(r=0.999 5)、YENB=6.17×105x+7.25×104(r=0.999 7),2種新興真菌毒素在相應(yīng)的濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,以S/N=10計算方法定量限,結(jié)果分別為3和1.5 μg/kg。

        2.6 方法精密度和回收率試驗(yàn)

        在空白樣品中加入定量限附近、標(biāo)準(zhǔn)曲線中間點(diǎn)和高濃度點(diǎn)驗(yàn)證方法的準(zhǔn)確性,選擇在空白小麥粉樣品中加入BEA質(zhì)量濃度為4.8,48和96 μg/kg,結(jié)果ENB質(zhì)量濃度為2.4,24和48 μg/kg低、中、高3個濃度水平的2種新興真菌毒素標(biāo)準(zhǔn)品,渦旋混均,放置30 min,使其樣品基質(zhì)與標(biāo)準(zhǔn)品充分接觸,按照1.3的樣品前處理進(jìn)行處理及測定,每個添加濃度水平測定6份平行樣,方法加標(biāo)回收率及重現(xiàn)性相對標(biāo)準(zhǔn)偏差結(jié)果見表2。

        由表2可知,BEA和ENB測定方法平均回收率分別為76.25%~99.31%和74.60%~91.17%,小麥粉中方法的重現(xiàn)性相對標(biāo)準(zhǔn)偏差低于10%。與韓小敏等[15]文獻(xiàn)報道的小麥粉中BEA和ENB回收率分別為100.5%~126.0%和114.6%~123.1%相比偏低,但考察BEA和ENB加標(biāo)回收率低端濃度水平分別為50和20 μg/kg,是定量限192倍(BEA定量限0.26 μg/kg)和400倍(ENB定量限0.05 μg/kg),不能準(zhǔn)確反映出定量限附近方法的準(zhǔn)確度,所以試驗(yàn)考察定量限附近方法的加標(biāo)回收率,BEA和ENB低、中、高3個濃度水平的加標(biāo)回收率均大于70%,滿足痕量真菌毒素的分析要求。

        表2 方法加標(biāo)回收率及精密度結(jié)果(n=6)

        2.7 實(shí)際樣品測定

        應(yīng)用試驗(yàn)方法對超市隨機(jī)購買的10批次小麥粉中BEA和ENB進(jìn)行檢測,其中2批次樣品檢出白BEA,含量分別為3.69和5.73 μg/kg;1份檢出ENB,含量為4.42 μg/kg。

        3 結(jié)論

        建立基于PEP固相萃取柱凈化、基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線定量、超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測小麥粉中BEA和ENB這2種新興真菌毒素測定方法。BEA和ENB這2種新興毒素分別在0~50 ng/mL和0~25 ng/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均大于0.999。在空白樣品中添加低、中、高3個濃度水平的BEA和ENB標(biāo)準(zhǔn)品,平均回收率均大于70%,方法重現(xiàn)性相對標(biāo)準(zhǔn)偏差小于10%,采用PEP固相萃取柱凈化,有效降低小麥粉中樣品基質(zhì)的影響,適用于小麥粉中痕量BEA和ENB這2種新興真菌毒素檢測,為分析小麥粉中BEA和ENB污染水平提供參考依據(jù)。

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