閆楚凡 韓笑 張勁松

中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬第四醫(yī)院眼科，沈陽(yáng) 110059

糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障多見于全身或局部長(zhǎng)期使用糖皮質(zhì)激素者，其發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明。許多生物學(xué)過程被證明與糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的發(fā)生相關(guān)，如細(xì)胞分化異常和糖皮質(zhì)激素受體(glucocorticoid receptor，GR)的激活等[1-3]；糖皮質(zhì)激素還導(dǎo)致晶狀體中E鈣黏附蛋白和N鈣黏附蛋白的表達(dá)量下降，而細(xì)胞黏附在晶狀體上皮細(xì)胞(lens epithelial cells，LECs)的正常分化和遷移中有重要作用[4]。微小RNA(microRNA，miRNA)是一種長(zhǎng)度為18～22個(gè)核苷酸的非編碼RNA，與基因的3’端非翻譯區(qū)結(jié)合，通過抑制基因的轉(zhuǎn)錄來(lái)影響蛋白的表達(dá)。既往研究發(fā)現(xiàn)，miR-29a可以靶向抑制GR mRNA的表達(dá)，同時(shí)其本身的表達(dá)量又依賴于GR的激活，形成一個(gè)負(fù)反饋回路，這個(gè)特點(diǎn)在糖皮質(zhì)激素治療過程中有助于減緩GR水平的逐漸降低[5]，這為糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的治療提供了新的思路。目前關(guān)于miRNA與糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的研究尚未見報(bào)道。本研究基于生物信息學(xué)方法分析經(jīng)地塞米松處理的LECs中差異基因的表達(dá)及其相關(guān)的生物學(xué)功能，篩選并驗(yàn)證hub基因的表達(dá)，預(yù)測(cè)與其最有可能相關(guān)的miRNA，以期為白內(nèi)障的治療提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1細(xì)胞來(lái)源 人LECs細(xì)胞株HLE-B3細(xì)胞購(gòu)自美國(guó)ATCC公司。

1.1.2主要試劑及儀器 地塞米松、Trixon X-100(北京索萊寶科技有限公司)；二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide，DMSO)(美國(guó)Sigma公司)；MEM培養(yǎng)液、胰蛋白酶、磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline，PBS)(江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司)；胎牛血清(澳洲AusGeneX公司)；青鏈霉素混合液(美國(guó)HyClone公司)；RNA iso Plus、實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒(日本TaKaRa公司)；質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%多聚甲醛(武漢博士德生物工程有限公司)；甘氨酸(大連美侖生物技術(shù)有限公司)；mRNA引物(武漢金開瑞生物工程有限公司)；EdU細(xì)胞增生檢測(cè)試劑盒(廣州銳博科技有限公司)。PCR逆轉(zhuǎn)錄儀(美國(guó)Bio-Rad公司)；實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(美國(guó)Applied Biosystem公司)；熒光顯微鏡(日本Olympus公司)。

1.2 不同生物信息學(xué)方法對(duì)地塞米松處理的HLE-B3細(xì)胞生物學(xué)功能的評(píng)估

1.2.1GEO2R法分析HLE-B3細(xì)胞差異基因 從公開數(shù)據(jù)庫(kù)GEO中下載GSE3040數(shù)據(jù)集，該數(shù)據(jù)集由Gupta等[6]上傳。該數(shù)據(jù)集中，用DMSO處理的HLE-B3細(xì)胞設(shè)置為對(duì)照組，經(jīng)過1 μmol/L地塞米松處理16 h的HLE-B3細(xì)胞設(shè)置為實(shí)驗(yàn)組，每組3個(gè)樣本。通過Affymetrix Human Genome U133A Array平臺(tái)，得到不同樣本間基因表達(dá)數(shù)據(jù)。參照文獻(xiàn)[7]的方法，利用GEO數(shù)據(jù)庫(kù)的生信分析工具GEO2R，以倍數(shù)變化>2、P值<0.05為條件篩選分析2個(gè)組間差異基因的表達(dá)。利用graphGP網(wǎng)站(https://www.ehbio.com/ImageGP/)，以logFC為橫坐標(biāo)、-log10(Pvalue)為縱坐標(biāo)繪制該數(shù)據(jù)集差異基因的火山圖。藍(lán)色代表下調(diào)基因，紫色代表上調(diào)基因，黃色代表表達(dá)無(wú)差異的基因。

1.2.2利用Metascape網(wǎng)站進(jìn)行差異基因功能富集分析 打開Metascape網(wǎng)站(http://metascape.org/gp/index.html/)[8]，將之前得到的差異基因名稱或者基因ID輸入基因列表并提交，即可獲取功能富集柱圖。所有富集到的詞條來(lái)源于GO生物學(xué)過程、KEGG通路、Reactome基因集、Canonical通路及CORUM。收集P值<0.01、最小計(jì)數(shù)為3、富集因子>1.5的項(xiàng)，并根據(jù)成員的相似性進(jìn)行分組。在對(duì)豐富項(xiàng)進(jìn)行層次聚類時(shí)，采用Kappa分?jǐn)?shù)作為一致性度量，一致性>0.3的子樹作為1個(gè)聚類，選擇集群中最具統(tǒng)計(jì)意義的術(shù)語(yǔ)來(lái)表示集群。

1.2.3作圖法分析hub基因 利用STRING數(shù)據(jù)庫(kù)(v10.5,https://string-db.org/cgi/input.pl)獲得差異基因相互關(guān)系數(shù)據(jù)，將其導(dǎo)入cytoscape軟件[9]，分析并制作蛋白互作網(wǎng)絡(luò)圖，在cytoscape中安裝cytohubba app，選擇MCC方法分析前25位hub基因及其相互關(guān)系，顏色越深表示基因重要性越高。

1.2.4mirCode預(yù)測(cè)與hub基因相關(guān)的miRNA 在mirCode數(shù)據(jù)庫(kù)(http://www.mircode.org)[10]中下載已知的高度保守的miRNA數(shù)據(jù)集，篩選出可能與前10個(gè)hub基因有調(diào)控關(guān)系的miRNA，利用cytoscape軟件，制作出預(yù)測(cè)的hub基因與miRNA的調(diào)控網(wǎng)狀圖。藍(lán)色六邊形點(diǎn)代表篩選出的關(guān)鍵hub基因，紫色圓點(diǎn)是與其相關(guān)的miRNA。

1.3 地塞米松處理后HLE-B3細(xì)胞生物學(xué)功能變化的離體細(xì)胞實(shí)驗(yàn)

1.3.1細(xì)胞培養(yǎng)及分組 將凍存的HLE-B3細(xì)胞從-80 ℃冰箱中取出，迅速將凍存管放到37 ℃水浴鍋中輕輕搖晃解凍1～2 min，置于低速離心機(jī)中，離心半徑16 cm，1 000 r/min離心3 min，棄上清液。用1 ml完全培養(yǎng)基重懸細(xì)胞并將其均勻接種于直徑6 cm培養(yǎng)皿中，添加3 ml完全培養(yǎng)基。置于37 ℃、體積分?jǐn)?shù)5% CO2溫箱中培養(yǎng)，待細(xì)胞融合至80%～90%時(shí)用胰蛋白酶消化并1∶ 3傳代。取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞(第3代及以后的細(xì)胞)，分別加入1 μmol/L DMSO和1 μmol/L地塞米松，置于37 ℃、5% CO2溫箱中培養(yǎng)16 h，作為對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組，進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.3.2EdU實(shí)驗(yàn)檢測(cè)HLE-B3細(xì)胞增生情況 取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HLE-B3細(xì)胞接種至96孔板中，分別設(shè)置實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組，每組3個(gè)復(fù)孔。用完全培養(yǎng)基按1 000∶ 1稀釋EdU溶液，終濃度為50 μmol/L，每孔加入100 μl該培養(yǎng)基，溫箱孵育2 h，棄培養(yǎng)液，PBS清洗2次，每次5 min。每孔加入4%多聚甲醛50 μl室溫下固定30 min，棄固定液，每孔加入質(zhì)量濃度2 mg/ml甘氨酸50 μl，脫色搖床孵育5 min后棄液，每孔加入100 μl PBS，脫色搖床清洗5 min后棄液。每孔加入100 μl體積分?jǐn)?shù)0.5% TrixonX-100脫色搖床孵育10 min，PBS清洗1次，5 min。每孔加入100 μl Apollo染色反應(yīng)液，避光室溫?fù)u床孵育30 min后棄液(之后步驟均避光進(jìn)行)，每孔加入0.5% Trixon X-100各100 μl，搖床清洗2次，每次10 min。每孔加入100倍稀釋Hoechst33342各50 μl，室溫下孵育5 min復(fù)染核，PBS清洗3次，每次5 min。熒光顯微鏡下觀察染色情況，綠色熒光染色細(xì)胞為增生期細(xì)胞，藍(lán)色熒光染色細(xì)胞為活細(xì)胞。細(xì)胞增生率=增生期細(xì)胞數(shù)/活細(xì)胞數(shù)×100%。

1.3.3實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)hub基因相對(duì)表達(dá)量 采用Trizol法分別提取實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組HLE-B3細(xì)胞的RNA，分光光度計(jì)測(cè)定RNA的濃度和純度，將其逆轉(zhuǎn)錄成cDNA，前10個(gè)hub基因的引物序列見表1。采用TB GreenTM Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)，按照試劑盒說明書步驟進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)條件：96 ℃預(yù)變性30 s；95 ℃變性5 s，60 ℃退火延伸34 s，共40個(gè)循環(huán)，添加熔解曲線。以GAPDH為內(nèi)參，采用2-△△Ct法計(jì)算目的基因的相對(duì)表達(dá)量。

表1 糖皮質(zhì)激素處理HLE-B3細(xì)胞中排名前10位hub基因的引物序列Table 1 The primer sequence of top 10 hub genes in glucocorticoid treated HLE-B3 cells引物名稱序列(5’-3’)SST正向:CTCCCTCGGACCCCAGACTC反向:AGGGCATCATTCTCCGTCTGGCXCL8正向:AGCTCTGTGTGAAGGTGCAGT反向:TGGGGTGGAAAGGTTTGGAGTGRM1正向:CCTCTGATGTTGTCCGCATGC反向:CCCCTGCCTTCTTTCTTCGGAGNRH1正向:TCTACTGACTTGGTGCGTGGA反向:CGTTGGGTTTCTGCCAGTTGACXCL5正向:GCTGCGTTGCGTTTGTTTACA反向:CGTTCTTCAGGGAGGCTACCAGRK5正向:GACCCTCCCTTCGTTCCAGAC反向:ATTGACGCCCTTCACAGTGGAPPBP正向:GGAAGTGATCGGGAAAGGAAC反向:ATCTGGGTCCAGGCAGATTTTCX3CR1正向:ACAGCAAGAAGCCCAAGAGTG反向:AGGGCAAAGTGGCTACAAACAPYY正向:AGGAGCTGAACCGCTACTACG反向:GGGGAAGAACGTTTTGGAAAGEDNRA正向:GATCACCGTCCTCAACCTCTG反向:AAAGGAATCCCAATTCCCTGA

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 23.0和Graphpad Prism 5軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析及作圖。計(jì)量資料的數(shù)據(jù)經(jīng)K-S檢驗(yàn)證實(shí)呈正態(tài)分布，以mean±SD表示；實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組中的SST、CXCL8、GRM1、GNRH1、CXCL5、PPBP、CX3CR1、PYY、EDNRA、GRK5的mRNA相對(duì)表達(dá)量差異比較，以及HLE-B3細(xì)胞增生值差異比較均采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 地塞米松作用后LECs中差異基因的篩選

通過GEO2R分析數(shù)據(jù)，得到341個(gè)差異基因，其中上調(diào)基因?yàn)?00個(gè)，下調(diào)基因?yàn)?1個(gè)。下調(diào)基因中差異最顯著的5個(gè)基因是SLC12A1、MED13L、ALDH5A1、SLC15A3和WWC1基因；上調(diào)基因中差異最顯著的5個(gè)基因是SCNN1A、ANKRD36、FKBP5、PYY和ADH1B基因(圖1)。

圖1 HLE-B3細(xì)胞差異基因表達(dá)火山圖 藍(lán)色代表在糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障中表達(dá)下調(diào)的基因，紫色代表糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障中表達(dá)上調(diào)的基因，黃色代表表達(dá)無(wú)差異的基因Figure 1 Volcano plot of differentially expressed genes in HLE-B3 cell Blue spots represented the down-regulated genes and purple spots represented the up-regulated genes,and yellow spots represented the genes without statistic difference in expression level in glucocorticoid induced cataract

2.2 地塞米松作用后2個(gè)組HLE-B3細(xì)胞增生值比較

HLE-B3細(xì)胞差異基因生物學(xué)功能富集分析列出了341個(gè)差異表達(dá)基因富集量最多的前20個(gè)詞條，結(jié)果顯示富集量最大的是對(duì)HLE-B3細(xì)胞增生的負(fù)向調(diào)節(jié)[-log10(P)=5.73]，第2和第3分別是細(xì)胞對(duì)脂多糖的反應(yīng)[-log10(P)=5.14]和細(xì)胞外基質(zhì)的降解[-log10(P)=5.12](圖2)。EdU細(xì)胞增生實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞增生率為(8.09±0.20)%，明顯低于對(duì)照組的(39.63±0.80)%，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=38.43，P<0.01)(圖3)。

圖2 HLE-B3細(xì)胞差異基因生物學(xué)功能富集分析 列出341個(gè)差異基因富集到的前20個(gè)詞條Figure 2 Functional enrichment analysis of differentially expressed genes in HLE-B3 cell The top 20 terms in functional enrichment analysis among 341 differentially expressed genes

圖3 EdU細(xì)胞增生實(shí)驗(yàn)檢測(cè)地塞米松對(duì)HLE-B3細(xì)胞增生的調(diào)控作用 A：實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組細(xì)胞染色(標(biāo)尺=100 μm) 藍(lán)色代表細(xì)胞核，綠色代表增生期細(xì)胞 B：實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組LECs增生率比較 與對(duì)照組比較，aP<0.01(獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)，n=3)Figure 3 The effect of dexamethasone on HLE-B3 cell proliferation tested by EdU proliferation assay A:Staining results of the experimental group and control group(bar=100 μm) Blue spots represented cell nuclei,and green spots represented cells in proliferation B:Comparison of LECs proliferation rate between the two groups Compared with the control group,aP<0.01(Independent-samples t test,n=3)

2.3 地塞米松作用后2個(gè)組HLE-B3細(xì)胞中hub基因mRNA相對(duì)表達(dá)量比較

排名前10位的hub基因分別為SST、CXCL8、GRM1、GNRH1、CXCL5、PPBP、CX3CR1、PYY、EDNRA和GRK5基因，其中唯一下調(diào)的是GRK5基因，其余表達(dá)均上調(diào)(圖4)。實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示，在得到的10個(gè)hub基因中，實(shí)驗(yàn)組HLE-B3細(xì)胞中SST、CXCL8、GRM1、PYY和EDNRA mRNA相對(duì)表達(dá)量較對(duì)照組明顯升高，CXCL5和GRK5 mRNA的相對(duì)表達(dá)量較對(duì)照組明顯降低，2個(gè)組比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)；2個(gè)組GNRH1、PPBP和CX3CR1 mRNA相對(duì)表達(dá)量比較差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P>0.05)(表2)。

圖4 hub基因及蛋白互作網(wǎng)絡(luò)圖 A：糖皮質(zhì)激素處理HLE-B3細(xì)胞中的hub基因 基因的顏色由紅變黃，代表重要性逐漸降低 B：差異基因的蛋白互作網(wǎng)絡(luò)圖 紫色的點(diǎn)代表在糖皮質(zhì)激素處理HLE-B3細(xì)胞中表達(dá)上調(diào)的基因，藍(lán)色的點(diǎn)代表表達(dá)下調(diào)的基因 圖5 與hub基因相關(guān)的miRNAs 藍(lán)色六邊形點(diǎn)代表篩選出的hub基因，紫色圓點(diǎn)代表與其相關(guān)的miRNAFigure 4 Hub genes and protein-protein interaction network A:Hub genes in glucocorticoid treated HLE-B3 cells The spots color changed from red to yellow,which meant the importance of genes gradually decreased B:Protein-protein interaction network of differentially expressed genes Purple spots represented the up-regulated genes and blue spots represented the down-regulated genes in the glucocorticoid-treated HLE-B3 cells Figure 5 The miRNAs associated with hub genes The blue hexagons represented hub genes,and purple spots represented miRNAs related to them

表2 2個(gè)組HLE-B3細(xì)胞中前10位hub基因mRNA相對(duì)表達(dá)量比較(mean±SD)Table 2 Comparison of the relative mRNA expression levels of top 10 hub genes in HLE-B3 cells between the two groups (mean±SD)組別樣本量不同基因mRNA相對(duì)表達(dá)量SSTCXCL8GRM1GNRH1CXCL5GRK5PPBPCX3CR1PYYEDNRA對(duì)照組31.02±0.131.00±0.061.00±0.061.03±0.161.00±0.061.02±0.151.06±0.251.00±0.011.36±0.081.05±0.21實(shí)驗(yàn)組32.09±0.121.53±0.112.08±0.350.60±0.030.47±0.120.26±0.020.80±0.020.97±0.044.35±0.097.17±1.56t值5.9924.1683.0412.5694.0515.1141.0260.79225.1903.882P值0.0040.0140.0380.0600.0150.0070.3630.473<0.010.017 注:獨(dú)立樣本t檢驗(yàn) Note:Independent-samples t test

2.4 HLE-B3細(xì)胞中與hub基因相關(guān)的miRNA預(yù)測(cè)

mirCode預(yù)測(cè)結(jié)果顯示，與hub基因關(guān)聯(lián)最密切的前6位miRNA分別是miR-15abc、miR-214、miR-23abc、miR-129-5p、miR-132和miR-24(圖5)。

3 討論

隨著糖皮質(zhì)激素越來(lái)越廣泛地應(yīng)用于臨床，糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障患病人數(shù)也逐漸增多，早在1960年就有研究者發(fā)現(xiàn)在長(zhǎng)期使用糖皮質(zhì)激素治療風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的患者中，有39%在治療過程中出現(xiàn)后囊下白內(nèi)障[11]。單一的基因表達(dá)差異不足以解釋疾病形成的原因。本研究通過高通量測(cè)序獲得基于糖皮質(zhì)激素作用于人HLE-B3細(xì)胞的差異基因，從而模擬糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的發(fā)病過程中基因表達(dá)的數(shù)據(jù)。利用現(xiàn)有的生物分析工具，分析出大量有表達(dá)差異的基因及其之間的相互作用關(guān)系，以及具體影響了哪些生物學(xué)功能。

既往研究多認(rèn)為，糖皮質(zhì)激素通過促進(jìn)LECs向間質(zhì)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化，從而導(dǎo)致后囊下白內(nèi)障的形成，且其發(fā)生率隨著糖皮質(zhì)激素劑量的增加而升高[12]。本研究通過差異基因的功能富集分析發(fā)現(xiàn)，1 μmol/L地塞米松很可能會(huì)抑制HLE-B3細(xì)胞的增生，并通過EdU實(shí)驗(yàn)證實(shí)了這一點(diǎn)。之前有研究表明低濃度(100 nmol/L)的地塞米松可以促進(jìn)LECs的增生[3]，由此可以推測(cè)隨著地塞米松濃度的增加，其逆轉(zhuǎn)了對(duì)細(xì)胞增生的調(diào)控作用。晶狀體由LECs和其分化而來(lái)的纖維細(xì)胞構(gòu)成，后囊下白內(nèi)障主要由LECs過度增生及上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化異常造成。既往研究發(fā)現(xiàn)地塞米松能夠抑制鼠晶狀體上皮外植體中LECs的上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化[13]，本研究發(fā)現(xiàn)地塞米松能夠抑制LECs增生，因此其有可能應(yīng)用于白內(nèi)障的治療。

已有研究發(fā)現(xiàn)，SST基因在糖尿病視網(wǎng)膜病變和黃斑水腫患者玻璃體中表達(dá)減低[14-15]；CXCL8基因在糖尿病視網(wǎng)膜病變患者房水中的表達(dá)水平遠(yuǎn)高于無(wú)視網(wǎng)膜病變糖尿病患者，它能介導(dǎo)白細(xì)胞的激活與血管內(nèi)皮細(xì)胞的黏附[16]；CXCL5基因在干眼患者淚液中的表達(dá)量升高[17]；GRK5基因可以促進(jìn)視紫紅質(zhì)磷酸化，導(dǎo)致夜盲[18]；PPBP基因的表達(dá)量在視網(wǎng)膜中央靜脈阻塞患者玻璃體中顯著升高[19]；CX3CR1基因可以調(diào)控小膠質(zhì)細(xì)胞介導(dǎo)的光感受器的退化，是視網(wǎng)膜色素變性的潛在治療靶點(diǎn)[20-21]；阻斷EDNRA基因可以抑制病理性新生血管生成，并提高早產(chǎn)兒視網(wǎng)膜病變患者的視力[22]；但GRM1、GNRH、PYY和F2RL3尚未見在眼科學(xué)領(lǐng)域的研究報(bào)道。本研究中排名前10位的hub基因在白內(nèi)障以及糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障中均無(wú)具體研究，它們能否延緩疾病的發(fā)生或治療糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障還有待進(jìn)一步探討；同時(shí)，糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的hub基因多與視網(wǎng)膜疾病相關(guān)，2種疾病之間是否有相互關(guān)系，目前仍不清楚。

許多研究發(fā)現(xiàn)，miRNA在疾病的發(fā)生和發(fā)展中十分重要，目前一些miRNA相關(guān)藥物已進(jìn)入臨床前試驗(yàn)和臨床試驗(yàn)階段，如miR-34模擬物用于治療血液系統(tǒng)惡性腫瘤已進(jìn)入I期臨床試驗(yàn)階段，它還可以抑制肺癌、肝癌的生長(zhǎng)[23]。在小鼠非小細(xì)胞肺癌模型中發(fā)現(xiàn)，miR-200模擬物可以增強(qiáng)輻射敏感度并延長(zhǎng)小鼠的生存時(shí)間[24]，提示miRNA可以作為治療疾病的新靶點(diǎn)。本研究預(yù)測(cè)出與hub基因相關(guān)的miRNA目前均未在激素性白內(nèi)障中有具體研究，但在高糖誘導(dǎo)的LECs上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化模型中，miR-214的表達(dá)量顯著下降，山奈酚和lncRNA PVT1都可以通過靶向調(diào)節(jié)miR-214來(lái)調(diào)控LECs的增生和上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化[25-26]；經(jīng)過正常晶狀體與白內(nèi)障晶狀體測(cè)序?qū)Ρ群蟀l(fā)現(xiàn)，miR-23在透明晶狀體中的表達(dá)水平高于白內(nèi)障晶狀體[27]；過表達(dá)miR-24直接作用于p53基因，促進(jìn)LECs凋亡[28]。

綜上所述，本研究篩選了糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障模型中的差異基因并進(jìn)行了功能富集分析，發(fā)現(xiàn)1 μmol/L地塞米松能夠顯著抑制HLE-B3細(xì)胞增生，通過實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證前10位hub基因中有6個(gè)與分析結(jié)果相符，同時(shí)預(yù)測(cè)了與糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障最有可能相關(guān)的6個(gè)miRNA，可以作為下一步研究糖皮質(zhì)激素性白內(nèi)障的具體指標(biāo)。需要說明的是，本研究為離體細(xì)胞學(xué)研究，并非來(lái)自在體模型，如動(dòng)物模型和人體標(biāo)本研究，研究結(jié)果是否與在體研究一致尚不清楚，仍需進(jìn)一步研究。

利益沖突所有作者均聲明不存在任何利益沖突