王文華,李秀婷,徐友強(qiáng),李微微,孫寶國(guó)*
(1 北京食品營(yíng)養(yǎng)與人類(lèi)健康高精尖創(chuàng)新中心 北京工商大學(xué) 北京100048 2 北京市食品添加劑工程技術(shù)研究中心 北京工商大學(xué) 北京100048)
鄰苯二甲酸酯類(lèi) (Phthalate Esters,PAEs)因在提高塑料制品穩(wěn)定性、柔韌性、凝聚力和防水性能等方面具有優(yōu)良特性,故自20 世紀(jì)50年代起被廣泛添加到各種塑料制品中[1-2]。目前全球PAEs的年消耗量高達(dá)6 800 萬(wàn)t[3],主要用于建筑、汽車(chē)、醫(yī)療產(chǎn)品、電線和電纜行業(yè);也用作油漆、黏合劑、化妝品和潤(rùn)滑劑的添加劑[2]。PAEs 與塑料非共價(jià)連接,很容易從塑料中浸出和遷移到周?chē)h(huán)境基質(zhì)中[4-7]。由于大量生產(chǎn)和廣泛使用,因此PAEs在不同環(huán)境中被頻繁檢出[8-12]。環(huán)境中的PAEs 會(huì)通過(guò)食物鏈對(duì)水生生物和人類(lèi)健康產(chǎn)生負(fù)面影響[13]。如PAEs 可與雌激素受體結(jié)合,引起激素紊亂[14];干擾內(nèi)分泌系統(tǒng)[15];誘導(dǎo)生殖毒性[16-17],肝臟過(guò)氧化物酶體增殖[18],肝細(xì)胞腫瘤[19];誘發(fā)兒童肥胖[20],并可能危害胎兒健康[21]。
隨著對(duì)其危害的逐步認(rèn)識(shí),PAEs 引發(fā)的健康問(wèn)題成為人們關(guān)注的焦點(diǎn),美國(guó)環(huán)保局已將最常見(jiàn)的PAEs 列為優(yōu)先控制環(huán)境污染物[22-23]。除了在水體、土壤檢測(cè)到PAEs 外,水稻、小麥、高粱等農(nóng)作物中也不同程度地被檢出鄰苯二甲酸二甲酯(Dimethyl phthalate,DMP)、鄰苯二甲酸二乙酯(Diethyl phthalate,DEP)、鄰苯二甲酸二丁酯(Dibutyl phthalate,DBP)、鄰苯二甲酸二異丁酯(Diisobutyl phthalate,DiBP)、鄰苯二甲酸二(2-乙基己基)酯〔Di(2-ethylhexyl)phthalate,DEHP〕[24],可能通過(guò)飲食攝入增加人體健康風(fēng)險(xiǎn)。高效降解鄰苯二甲酸酯成為解決這一問(wèn)題的關(guān)鍵。
在自然條件下,PAEs 結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,其水解、光解速度非常緩慢,屬于難降解物質(zhì)[25-26]。在去除鄰苯二甲酸酯的研究中,細(xì)菌降解的主導(dǎo)作用被廣泛報(bào)道,成為環(huán)境中去除PAEs 的主要微生物[1,27],且新的高效降解細(xì)菌不斷被發(fā)現(xiàn),如從白酒曲中篩選獲得1 株康氏副球菌 (Paracoccus.kondratievae)BJQ0001,對(duì)PAEs 降解有重要作用[28]。
本試驗(yàn)從酒醅中分離出1 株可有效降解DBP的不動(dòng)桿菌屬細(xì)菌,命名為Aci-17。利用GenBank上已知酯降解基因序列的高度同源區(qū)設(shè)計(jì)引物,從菌株Aci-17 基因組中克隆出1 個(gè)全長(zhǎng)1 077 bp 的酯鍵水解酶基因,其重組表達(dá)蛋白除了具有高效降解DBP 能力外,還可高效降解DMP、DEP、DiBP。借助生物信息學(xué)軟件對(duì)其進(jìn)行生物信息學(xué)分析,在I-TASSER 在線建?;A(chǔ)上,通過(guò)Est96蛋白與配體分子對(duì)接方法,探究Est96 催化鄰苯二甲酸酯生物降解機(jī)制,以期為鄰苯二甲酸酯生物降解提供重要依據(jù)。也為不動(dòng)桿菌Aci-17 的后續(xù)開(kāi)發(fā)利用奠定理論基礎(chǔ)。
不動(dòng)桿菌Aci-17 從酒醅中分離獲得,聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)引物委托北京奧科鼎盛生物科技有限公司合成,基因測(cè)序委托華大基因完成。細(xì)菌基因組DNA 提取試劑盒、大腸桿菌(E.coli)DH5α 感受態(tài)細(xì)胞、大腸桿菌BL21 感受態(tài)細(xì)胞,購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;克隆載體pMD18-T、Trans Taq-T DNA聚合酶、NovoRecRPCR 一步定向克隆試劑盒、表達(dá)載體pCold-TF,購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司;其它化學(xué)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>
MSMY 培養(yǎng)基:根據(jù)Li 等[29]在礦物鹽培養(yǎng)基(mineral salt medium,MSM)基礎(chǔ)上添加酵母膏成分的改良礦鹽培養(yǎng)基;DBP 溶解在二甲基亞砜(Dimethyl sulfoxide,DMSO)中,并在加入培養(yǎng)基之前通過(guò)0.22 μm 的無(wú)菌膜過(guò)濾。
LB 培養(yǎng)基:酵母膏(5.0 g/L)、胰蛋白胨(10.0 g/L)和氯化鈉(10.0 g/L)。
EPS301 瓊脂糖凝膠電泳儀、DYY-III-8B 穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀,北京六一儀器廠;ImageQuant 300凝膠成像儀、Multitemp Ⅲ恒溫循環(huán)水浴器,美國(guó)GE 公司;HR60-IIA2 生物安全柜,青島海爾特種電器有限公司;Microfuge 20R 高速冷凍離心機(jī),美國(guó)Beckman Coulter 公司;T100-Thermal cycler PCR 儀,美國(guó)Bio-Rad 公司;立式壓力蒸汽滅菌器,上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠。
1.4.1 Aci-17 對(duì)DBP 的生物降解 參考Xu 等[28]的方法,將Aci-17 在LB 培養(yǎng)基中活化培養(yǎng)后,細(xì)胞培養(yǎng)物(體積分?jǐn)?shù)2%)接種到含DBP 的MSMY培養(yǎng)基中,DBP 最終質(zhì)量濃度分別為200,400,600 mg/L 和800 mg/L。試驗(yàn)設(shè)置3 個(gè)平行。在96 h 培養(yǎng)期內(nèi)每隔12 h 收集細(xì)胞培養(yǎng)樣品(10 mL),加入正己烷(2 mL),將所有試劑轉(zhuǎn)移到50 mL 管中并劇烈混合30 s。13 000×g 下離心5 min,收集上清液,0.22 μm 無(wú)菌膜過(guò)濾,使用氣相色譜定量測(cè)定殘余的DBP。
1.4.2 16 S rDNA 測(cè)序 離心收集過(guò)夜培養(yǎng)Aci-17 菌體,按照細(xì)菌基因組DNA 試劑盒操作步驟提取基因組DNA,檢測(cè)其純度合格后,以細(xì)菌總DNA 為模板,16S 通用引物擴(kuò)增16S 序列。反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,30 個(gè)循環(huán);72 ℃再延伸10 min。PCR 產(chǎn)物送至華大基因測(cè)序有限公司測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果與美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)數(shù)據(jù)庫(kù)中核酸序列進(jìn)行比對(duì),選取同源性高的菌株的16S rDNA 序列,利用MEGA 7.0 軟件進(jìn)行多序列比對(duì),用鄰接(Neighbor-Joining)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
1.4.3 基因Est96 克隆、重組載體構(gòu)建及蛋白誘導(dǎo)表達(dá) 根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道具有降解PAEs 能力的不動(dòng)桿菌LMB-5 全基因組信息[30]及GenBank 上已知的不動(dòng)桿菌酯酶基因序列 (GenBank 登陸號(hào):AGY55959.1,AFK31309.1,AEW03609.1,WP_163143359.1,HAK15034.1,ENV65051.1,OJU 85238.1,EPH30775.1),利用序列的高度同源區(qū)設(shè)計(jì)目的基因保守區(qū)簡(jiǎn)并引物 (表1),PCR 擴(kuò)增獲得基因保守序列,依據(jù)保守區(qū)域測(cè)序結(jié)果及高度同源序列設(shè)計(jì)全長(zhǎng)引物(表1),以Aci-17 基因組DNA 為模板PCR 擴(kuò)增,擴(kuò)增條件:94 ℃、5 min;94℃、30 s,55 ℃、30 s,72 ℃、2.5 min,循環(huán)30 次;72℃、10 min。1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR 產(chǎn)物條帶,送至華大基因進(jìn)行基因序列測(cè)定。
表1 克隆表達(dá)過(guò)程使用引物Table 1 Primers used for amplification and recombinant construction of expression vector
使用根據(jù)In-Fusion 設(shè)計(jì)含EcoRⅠ酶切位點(diǎn)的引物將目的基因克隆至原核表達(dá)載體pCold-TF 載體,將重組質(zhì)粒pCold-TF-Est96 轉(zhuǎn)化到E.coli BL21 (DE3)中,選擇測(cè)序正確的轉(zhuǎn)化子搖瓶培養(yǎng)至OD600值達(dá)0.6~0.8 時(shí)加入終濃度為50 mmol/L 的IPTG,在20、200/min 條件下培養(yǎng)20 h,13 000×g 離心5 min 收集菌體,Tris-HCl 洗滌2次后懸浮細(xì)胞,超聲破碎,離心取上清即為Est96粗酶液。
1.4.4 酯酶Est96 生物信息學(xué)分析
1.4.4.1 酯酶Est96 氨基酸序列及基本性質(zhì)分析 氨基酸序列來(lái)源于NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中蛋白質(zhì)序列;多序列比對(duì)借助Clustal Omega 和ESPript 3.0在線分析獲得;ExPASy-ProtParamtool 和SignalP 4.1 Server 預(yù)測(cè)工具用于對(duì)Est96 蛋白的理化性質(zhì)和信號(hào)肽分析。
1.4.4.2 親/疏水性及跨膜區(qū)分析 蛋白親水/疏水性分析由Expasy 網(wǎng)站ProScale 工具完成,蛋白跨膜區(qū)預(yù)測(cè)采用在線軟件TMHMM 2.0 進(jìn)行。
1.4.4.3 二級(jí)、三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè) 在線提交Est96 氨基酸序列至SOPMA Secondary Structure Prediction Method 完成蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè);三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)由I-TASSER 服務(wù)器在線計(jì)算完成。所用生物信息學(xué)在線分析工具見(jiàn)表2。
表2 生物信息學(xué)在線分析工具及網(wǎng)址Table 2 Bioinformatics online programs and web sites
1.4.5 酯酶Est96 功能驗(yàn)證 參考Xu 等[28]的方法,反應(yīng)混合物在30 ℃,200 r/min 反應(yīng)12 h,反應(yīng)結(jié)束,如1.4.1 節(jié)所述方法制備樣品用于氣相色譜分析。
1.4.6 分析方法 參考Xu 等[28]方法,采用Agilent7890B 氣相色譜系統(tǒng),色譜柱為Agilent 19091 Ne-213I 柱(30 m×0.32 mm×0.50 μm),以80 ℃恒溫5 min,20 ℃/min 的速率升溫至240 ℃,最后240 ℃保持恒溫25 min,進(jìn)行定量分析。載氣為氮?dú)?,流?.0 mL/min,進(jìn)樣量1.0 μL。Origin8.0 軟件用于統(tǒng)計(jì)分析,t 檢驗(yàn)分析數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.4.7 分子對(duì)接 為深入了解酯鍵水解酶Est96在DMP 降解過(guò)程中與配體間相互作用,對(duì)兩者進(jìn)行了分子對(duì)接。使用PubChem 化合物數(shù)據(jù)庫(kù)檢索并獲得DMP 的SDF 格式[31],借助Pymol 2.4.1 轉(zhuǎn)換為PDB 格式[32]。使用軟件AutoDockTools 1.5.6打開(kāi)處理過(guò)的受體分子(Est96 酯酶)和配體分子(DMP)[33],選定對(duì)接中心點(diǎn)區(qū)域三維坐標(biāo),即X=69.113,Y=57.253,Z=64.025,選擇I-TASSER 預(yù)測(cè)的Est96 活性位點(diǎn)作為潛在結(jié)合位點(diǎn)創(chuàng)建對(duì)接受體網(wǎng)格盒的空間為24?×24?×22?,網(wǎng)格間距0.375 ?,進(jìn)行100 輪次擬合對(duì)接分析。選取具有最低結(jié)合能值的構(gòu)象進(jìn)行分析,使用Discovery Studio 2020 在2D 層面上分析Est96 與DMP 形成的作用力,使用Pymol 2.4.1 對(duì)Est96 與DMP 在3D 空間形成的作用力進(jìn)行分析。
在以DBP 為唯一碳源的MSMY 培養(yǎng)基中,DBP 初始質(zhì)量濃度分別為200,400,600 mg/L 和800 mg/L 時(shí),每24 h 測(cè)定培養(yǎng)基中殘留的DBP質(zhì)量濃度,經(jīng)過(guò)Aci-17 的生物降解,殘留DBP 質(zhì)量濃度與降解時(shí)間關(guān)系曲線如圖1所示,隨降解時(shí)間延長(zhǎng),體系中DBP 殘留量逐漸減小,96 h 時(shí)初始質(zhì)量濃度為200,400,600 mg/L 和800 mg/L的樣本中DBP 降解率分別為100.00%,78.20%,84.66%,64.11%。DBP 的初始濃度會(huì)影響Aci-17對(duì)DBP 的降解速率。
圖1 Aci-17 降解不同初始質(zhì)量濃度DBPFig.1 Degradation of different initial concentrations of DBP by Aci-17
圖2 Aci-17 基因組、16S PCR 擴(kuò)增電泳驗(yàn)證圖及16S rDNA 基因序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.2 Identification of extracted genome,16S PCR products and based phylogentic trees for 16S rDNA gene sequence of Aci-17
提取Aci-17 基因組DNA 電泳檢測(cè)如圖2a顯示,沒(méi)有明顯的拖尾現(xiàn)象。以基因組DNA 為模板,進(jìn)行16S rDNA 擴(kuò)增,瓊脂糖凝膠電泳條帶清晰且片段大小在1~2 kb 之間(圖2b)。將PCR 擴(kuò)增的16S rDNA 片段序列提交至GenBank 數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行相似性分析,通過(guò)Clustal X 軟件多重比對(duì)后,用MEGA 6.0 軟件中的Neighbor-Joining 法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(圖2c)。
以Aci-17 基因組DNA 為模板簡(jiǎn)并引物PCR擴(kuò)增,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)顯示200~250 bp 有明顯條帶(圖3a),DNAMAN 軟件分析測(cè)序結(jié)果顯示保守區(qū)序列長(zhǎng)度為237 bp,依據(jù)此保守區(qū)序列及高度同源序列設(shè)計(jì)全長(zhǎng)引物進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,獲得編碼框全長(zhǎng)1 077 bp 的Est96 基因(圖3b)。
按照1.4.3 節(jié)中方法得到Est96 粗酶液,SDSPAGE 電泳檢測(cè)結(jié)果顯示(圖3c),目的蛋白有單一且清晰的條帶,與預(yù)測(cè)大小相吻合,表明Est96成功表達(dá)為可溶性蛋白。
2.4.1 酯酶Est96 多序列比對(duì)及基本性質(zhì)分析利用ESPript3.0 在線程序?qū)С龅男蛄袑?duì)比圖 (圖4)顯示Est96 與水解酶第Ⅳ家族氨基酸序列具有較高保守性,Est96 具有水解酶第Ⅳ家族的GXSXG 保守基序和HGGG 氧陰離子孔結(jié)構(gòu),及1個(gè)由親核殘基Ser201,酸性殘基Asp253 和1 個(gè)保守His325 組成的典型絲氨酸水解酶催化三聯(lián)體,親核殘基Ser201 位于Gly199-Asp200-Ser201-Ala202-Gly203 保守基序中。在大多數(shù)水解酶第Ⅳ家族中,活性位點(diǎn)絲氨酸存在于經(jīng)典的GXSXG 保守基序中[30,34],GXSXG 保守基序與PAEs 的降解密切相關(guān)[35-38],Est96 氨基酸序列中的GXSXG 保守基序中的第1 個(gè)X 是Asp,第2 個(gè)X 是其它鄰苯二甲酸酯酶中常出現(xiàn)的非極性殘基Ala,GDSAG這個(gè)基序在絲氨酸水解酶中是獨(dú)特的[39]。典型催化三聯(lián)體的序列相似性和保守性表明,鄰苯二甲酸酯水解酶中重要的共同功能的基序在進(jìn)化過(guò)程中一直是保守的。HGGG 四肽基序位于高度保守的五肽基序上游,其在水解過(guò)程中與疏水結(jié)合口袋有關(guān)[40]。在其它細(xì)菌如熱棒菌屬(Pyrobaculum,BAC06606.1)、嗜酸硫化桿菌 (Sulfobacillus acidophilus,AEW03609.1)、鞘脂菌屬(Sphingobium,AJO67804.1)、芽孢桿菌屬(Bacillus,AAU04567.1)酯酶序列中也是保守的。
通過(guò)ExPASy-ProtParam 工具對(duì)Est96 基本性質(zhì)進(jìn)行分析,顯示Est96 是由358 個(gè)氨基酸殘基組成的多肽鏈,分子質(zhì)量40.66 ku,預(yù)測(cè)等電點(diǎn)9.23,帶正、負(fù)電荷氨基酸分別為42 和32,分子式為C1835H2863N511O516S10,原子總數(shù)5 735,消光系數(shù)39 560,含量最高的氨基酸為異亮氨酸(9.5%),不穩(wěn)定系數(shù)46.45,脂肪族指數(shù)88.02。Est96 不穩(wěn)定指數(shù)大于40,表明該蛋白為不穩(wěn)定蛋白。研究發(fā)現(xiàn),蛋白質(zhì)的不穩(wěn)定性可能由其序列中某些氨基酸的順序決定[41]。以上基本酶學(xué)性質(zhì)的分析有助于后續(xù)蛋白質(zhì)的分離純化及性質(zhì)研究。
圖3 Est96 基因保守序列、全長(zhǎng)序列電泳檢測(cè)及Est96 誘導(dǎo)表達(dá)SDS-PAGE 分析Fig.3 Electrophoresis analysis of coreing sequence and full-length sequence of Est96 and analysis of SDS-PAGE for Est96
圖4 Est96 與脂肪酶第Ⅳ家族其它5 個(gè)蛋白的序列比對(duì)Fig.4 Protein sequences alignment between Est96 and other homologs from the family Ⅳ
將Est96 氨基酸殘基序列遞交SignalP 5.0區(qū)域。因此,生物信息學(xué)分析結(jié)果說(shuō)明Est96 存在于胞內(nèi)。Server,顯示信號(hào)肽(Sec/SPI)為0.0123,雙精氨酸易位信號(hào)肽(Tat/SPI)為0.0006,脂信號(hào)肽(Sec/SPII)為0.0008(圖5),結(jié)果表明Est96 不具有信號(hào)肽序列。沒(méi)有信號(hào)肽的引導(dǎo),新合成的蛋白質(zhì)不能發(fā)生轉(zhuǎn)運(yùn),即翻譯完畢的蛋白會(huì)滯留在合成的
2.4.2 親/疏水性及跨膜區(qū)分析 采用Protscale在線軟件Hphob/Kyte & Doolittle 算法計(jì)算Est96蛋白的疏水性 (圖6a)。位于320 位的異亮氨酸(Ile)疏水性最強(qiáng),分值-2.433。位于229 位的脯氨酸(Pro)親水性最強(qiáng),分值1.878。親疏水預(yù)測(cè)結(jié)果顯示Est96 蛋白的疏水區(qū)域少于親水區(qū)域,屬于親水蛋白。采用TMHMM 2.0 進(jìn)行蛋白跨膜區(qū)預(yù)測(cè)結(jié)果(圖6b)顯示蛋白無(wú)跨膜結(jié)構(gòu),屬于胞內(nèi)蛋白。
2.4.3 二級(jí)、三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè) 二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)表明,Est96 中α-螺旋占蛋白質(zhì)43.85%,伸展鏈占蛋白質(zhì)13.97%,β-折疊占蛋白質(zhì)6.42%,無(wú)規(guī)則卷曲占蛋白質(zhì)35.75%??梢?jiàn),對(duì)于Est96 而言,α-螺旋和無(wú)規(guī)則卷曲是蛋白結(jié)構(gòu)的主要組成部分。
借助I-Tasser 在線服務(wù)器對(duì)Est96 三維結(jié)構(gòu)進(jìn)行建模,模型預(yù)測(cè)得分C-Score 為0.74(置信區(qū)間為-5-2),TM-Score 為0.62±0.14,表明模型預(yù)測(cè)具有良好的準(zhǔn)確性和合理性,可用于后續(xù)分子對(duì)接。建模結(jié)構(gòu)分析顯示Gly129、Gly130、Val133、Ser201、Ala202、Val 230、Val 257、His325 是與酯酶活性相關(guān)的活性位點(diǎn),為后續(xù)分子對(duì)接提供基礎(chǔ)。
圖5 Est96 信號(hào)肽預(yù)測(cè)Fig.5 Prediction of the signal peptide of Est96
圖6 Est96 疏水性分析與跨膜區(qū)預(yù)測(cè)Fig.6 The hydrophobicity analysis and prediction of transmembrane domain of Est96
以DMP、DEP、DiBP、DBP、DEHP 為底物驗(yàn)證Est96 對(duì)PAEs 降解作用。結(jié)果表明Est96 能高效降解短側(cè)鏈PAEs(圖7),對(duì)體系中的DMP 降解率達(dá)99.996%,Est96 催化分解了體系中超過(guò)95%的DEP、DiBP 和DBP。然而,其中DEHP 降解率低于30%,這一結(jié)果可能與側(cè)鏈碳原子數(shù)量多的PAEs 空間位阻大、不容易被微生物降解利用的報(bào)道一致[1],隨著側(cè)鏈碳原子數(shù)量的增加,PAEs 的水溶性呈下降趨勢(shì),同時(shí)長(zhǎng)側(cè)鏈影響酶反應(yīng)的空間效應(yīng),微生物更傾向于降解DMP、DEP、DBP、DPP和BBP 等短側(cè)鏈PAEs[1,42-43]。重組蛋白對(duì)5 種PAEs 降解特性表明,該蛋白對(duì)短側(cè)鏈PAEs 具有較高降解效率。
圖7 Est96 對(duì)DMP、DEP、DiBP、DBP和DEHP 的催化降解Fig.7 The degradation of DMP,DEP,DiBP,DBP and DEHP by Est96
基于Est96 對(duì)DMP 降解效率最高的試驗(yàn)結(jié)果,采用誘導(dǎo)契合策略,將DMP 對(duì)接到Est96 活性部位,活性位點(diǎn)以及底物結(jié)合位點(diǎn)在單體內(nèi)完成,受體分子和配體之間通過(guò)空間匹配和能量匹配相互識(shí)別并形成分子復(fù)合物,得到DMP 的最佳取向,對(duì)接打分為-5.8 kcal/mol。
圖8 Est96 與DMP 相互作用的分子對(duì)接圖Fig.8 Molecular docking analysis of Est96 with DMP
借助PyMOL 2.4.1 可視化工具分析Est96 與DMP 分子對(duì)接結(jié)果,DMP 結(jié)合在Est96 催化活性口袋中(圖8A,C),His127-Gly128-Gly129-Gly130、Gly199-Asp200-Ser201-Ala202-Gly203、His325-Gly326-Phe327 3 個(gè)保守結(jié)構(gòu)域是催化活性口袋的重要組成 (圖8B、C)。DMP 與Ser201 殘基、Asp253 殘基和His325 殘基形成穩(wěn)定的四面體過(guò)渡態(tài)(圖8B),經(jīng)典的催化三聯(lián)體“絲氨酸殘基-天冬氨酸-組氨酸殘基”被認(rèn)為是酯鍵羰基碳原子上親核攻擊的原因,這種四面體過(guò)渡狀態(tài)保證了酯鍵水解的催化作用[44]。DMP 分子酯基中的氧原子作為氫鍵的受體,與Est96 上一個(gè)高度保守域的His325 氨基酸側(cè)鏈形成氫鍵(圖8B、C),氫鍵鍵長(zhǎng)為2.5?。研究表明氫鍵是酶與配體相互作用的關(guān)鍵作用力[45],參與氫鍵形成的His325 氨基酸殘基被認(rèn)為是Est96 與小分子配體相互作用的關(guān)鍵殘基。配體DMP 的苯環(huán)與Phe66 形成π-π 堆積,與Met 82 形成了π-二硫鍵的相互作用穩(wěn)定酶-底物復(fù)合體,與結(jié)合口袋牢固結(jié)合。已有研究證實(shí)親核絲氨酸殘基和氧陰離子空穴的殘基對(duì)酶的催化功能至關(guān)重要,這些位置的定點(diǎn)突變導(dǎo)致酶功能的喪失[46-48]。
從中國(guó)傳統(tǒng)白酒釀造過(guò)程中分離鑒定出1 株有效降解DBP 的不動(dòng)桿菌屬細(xì)菌Aci-17,通過(guò)克隆和重組表達(dá)菌株Aci-17 中的1 個(gè)酯鍵水解酶編碼基因,驗(yàn)證了該基因表達(dá)蛋白Est96 對(duì)谷物中常見(jiàn)的5 種鄰苯二甲酸酯降解效率。結(jié)果表明,Est96 不僅能夠降解DBP,還可高效降解DMP、DEP、DiBP。同時(shí),在鄰苯二甲酸酯降解過(guò)程中Est96 顯示底物偏好性,優(yōu)選烷基側(cè)鏈短而直的鄰苯二甲酸酯作為底物。