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        ELA 對骨髓間充質(zhì)干細胞氧化應激損傷的保護作用

        2021-04-07 06:53:40符佳穎陳旭翔許岱詩劉欣楊歡周長青吳海東曾朝濤吳浩鄭光輝王彤
        嶺南急診醫(yī)學雜志 2021年1期
        關(guān)鍵詞:充質(zhì)存活骨髓

        符佳穎 陳旭翔 許岱詩 劉欣 楊歡 周長青 吳海東 曾朝濤吳浩 鄭光輝 王彤*

        近年來,骨髓間充質(zhì)干細胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)移植治療心肌梗死的優(yōu)越性得到了廣泛關(guān)注。MSCs 移植已被證實能夠有效縮小心肌梗死面積、形成新生血管、改善心室重塑、提高患者的心功能[1]。然而,多項臨床試驗指出MSCs 在移植后受到局部梗死微環(huán)境的影響導致生存能力低下,未能達到理想的治療效果[2]。因此,如何提高MSCs 在缺氧環(huán)境下的生存能力是干細胞移植亟需解決的關(guān)鍵問題。ELABELA(ELA)是一種內(nèi)源性肽類激素,課題組前期的實驗表明ELA 能夠通過改善和促進MSCs 的細胞增殖和遷移能力[3]。但ELA 是否能夠提高MSCs 抵抗氧化應激損傷的能力需要進一步驗證。本實驗通過采用過氧化氫(H2O2)誘導MSCs 凋亡,探討ELA 對MSCs 氧化應激損傷的影響及其最佳治療濃度。

        1 材料與方法

        1.1 材料 SPF 級Sprague Dawley(SD)大鼠,體質(zhì)量(100±20)克,購于廣州中醫(yī)藥大學動物實驗中心,許可證號:SCXK(粵)2018-0034。實驗中對動物處理方法取得中山大學倫理委員會批準,批準號:2019-057-01。

        1.2 方法 (1)細胞培養(yǎng)根據(jù)課題組已建立成熟的 方 法 進 行 分 離、培 養(yǎng) 及 鑒 定MSCs[4]。第3 代MSCs 用于后續(xù)實驗研究。(2)細胞分組及H2O2誘導細胞凋亡模型建立將體外培養(yǎng)的MSCs 隨機分為Control 組、H2O2組、500 nM ELA 組,1 μM ELA 組,5 μM ELA 組,10 μM ELA 組。H2O2組 細 胞 加 入 含400 μM H2O2的無血清培養(yǎng)基,在37℃條件下培養(yǎng)6 h,建立H2O2誘導細胞凋亡模型,模擬心肌梗死后體內(nèi)氧化應激微環(huán)境[5]。Control 組加入等量PBS;500 nM ELA 組,1 μM ELA 組,5 μM ELA 組,10 μM ELA 組各自加入不同濃度ELA(500 nM,1 μM,5 μM,10 μM)后進行H2O2誘導細胞凋亡。(3)MTS 法檢測細胞增殖及細胞活力將MSCs 按3×103 個/孔接種到96 孔板,每孔100 μl,待細胞貼壁。按(2)方法處理各組細胞后,每孔加入cellTiter96AQ 單溶液細胞增殖檢測試劑20 μl,于37℃孵育2 小時,應用酶標儀檢測A490 值。(4)DCFH-DA 熒光探針法檢測細胞內(nèi)活性氧(reactive oxygen species,ROS)水平收集各組MSCs 后,使其重懸于10 μM DCFH-DA中,充分混勻,置于37℃細胞培養(yǎng)箱內(nèi)孵育30 分鐘。使用無血清培養(yǎng)基洗滌細胞3 次,以除去未進入細胞內(nèi)的DCFH-DA 探針。應用熒光酶標儀(激發(fā)波長=485 nm,發(fā)射波長=520 nm)檢測各組細胞內(nèi)ROS 水平。細胞內(nèi)相對ROS 水平=各組熒光強度/Control 組熒光強度×100%。

        1.3 統(tǒng)計學分析 采用SPSS 23.0 統(tǒng)計軟件進行分析,實驗數(shù)據(jù)以(x ± s)表示。多組間差異比較采用方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t 檢驗,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 ELA 對MSCs 細胞增殖及細胞活力的影響通過MTS 實驗驗證ELA 是否能增強MSCs 在氧化應激損傷下的細胞增殖及存活能力。與Control 組相比,H2O2組的細胞增殖能力顯著降低(P<0.05,圖1,2)。與H2O2組相比,500 nM ELA 組,1 μM ELA 組,5 μM ELA 組MSCs 保持良好的細胞活性(P<0.05,圖1,2),且呈劑量依賴效應。盡管10 μM ELA 組細胞活力優(yōu)于H2O2組(P<0.05,圖1,2),與5 μM ELA 組相比,其促進MSCs 細胞生存能力減低,提示5 μM ELA 促進氧化應激狀態(tài)下MSCs 細胞生存能力為最佳。

        圖1 各組骨髓間充質(zhì)干細胞的OD490 值

        圖2 各組骨髓間充質(zhì)干細胞的細胞活力(%)

        2.2 ELA 對MSCs 細胞內(nèi)ROS 水平的影響 通過檢測MSCs 細胞內(nèi)ROS 水平觀察ELA 是否能增強MSCs 抵抗氧化應激損傷。與Control 組相比,在氧化應激條件下,MSCs 的細胞內(nèi)ROS 水平含量上升(P<0.05,圖3)。分別加入500 nM ELA,1 μM ELA,5 μM ELA 治療后,與H2O2組相比,MSCs 的細胞內(nèi)ROS 水平含量下降(P<0.05,圖3),且與ELA 濃度梯度相關(guān)。MSCs 經(jīng)10 μM ELA 治療后,細 胞 內(nèi)ROS 水 平 高 于5 μM ELA 組,提 示5 μM ELA 是抑制MSCs 細胞內(nèi)ROS 產(chǎn)生的最佳濃度。

        圖3 各組骨髓間充質(zhì)干細胞內(nèi)ROS 水平

        3 討 論

        MSCs 是來源于骨髓并具有自我更新和多向分化潛能的成體干細胞,盡管MSCs 治療心肌梗死取得了較大的研究進展,由于缺氧和氧化應激導致MSCs 在局部梗死心肌的存活率較低[6],導致MSCs移植治療效率仍然不理想。ELA 分泌于胚胎干細胞,是由32 個氨基酸構(gòu)成的多肽。ELA 具有較強的胚胎信號活性,在早期心管向心血管譜系發(fā)育和分化中扮演著重要的角色[7]。研究證實,ELA 能夠有效調(diào)控心肌梗死模型大鼠的心肌重塑,增強心肌收縮力,改善心肌梗死后心功能[8]。然而,ELA 是否能夠改善MSCs 移植后在體內(nèi)氧化應激狀態(tài)下的生存能力目前未有相關(guān)研究。

        本研究證實了ELA 能夠促進氧化應激狀態(tài)下MSCs 的存活能力,并探討了不同濃度ELA 對MSCs 細胞活力的保護作用。其中,500 nM ELA,1 μM ELA 及5 μM ELA 對MSCs 的保護作用呈現(xiàn)濃度依賴效應,并降低了細胞內(nèi)ROS 生成水平。研究表明,氧化應激狀態(tài)下ROS 水平升高,過度的氧自由基及其衍生物產(chǎn)生與細胞存活能力密切相關(guān)[9]。目前,已經(jīng)證實ELA 能夠通過PI3K/AKT 通路調(diào)控G1/S 階段細胞周期從而實現(xiàn)胚胎干細胞的自我更新和生存能力[10]?;谝陨涎芯堪l(fā)現(xiàn),我們推測ELA 保護MSCs 抗氧化應激的作用可能與ROS 介導的PI3K/AKT 通路活化狀態(tài)有關(guān)。然而,10 μM ELA 對改善MSCs 在氧化應激狀態(tài)下的存活能力有所降低,其具體的原因需進一步驗證。

        綜上所述,ELA 能夠增強氧化應激狀態(tài)下MSCs 的生存能力,有利于提高MSCs 在梗死心肌中的存活。本實驗的結(jié)果初步表明ELA 治療對于改善MSCs 抵抗氧化應激損傷是一種可行的方法,其作用機制有待進一步研究。

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