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        H9N2 AIV 對雞、鴨和小鼠部分炎性因子和鈣調(diào)蛋白的影響

        2021-04-03 01:02:10馬衛(wèi)紅趙福瓊劉海繁姚紅艷李衛(wèi)鵬歐德淵
        現(xiàn)代畜牧獸醫(yī) 2021年3期
        關(guān)鍵詞:性反應(yīng)炎性機體

        馬衛(wèi)紅,趙福瓊,劉海繁,姚紅艷,李衛(wèi)鵬,錢 林,歐德淵*

        (1.貴州大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,貴州 貴陽 550025;2.惠水縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,貴州 惠水 550600;3.長順縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,貴州 長順 557000)

        禽流感(avian influenza,AI)是由正黏病毒(avian influenza virus,AIV)引起的禽類傳染病。根據(jù)病毒的毒力不同,分為高致病性和低致病性禽流感[1]。低致病性禽流感(LPAI)能感染禽類,各種日齡的家禽都可發(fā)生感染[2],常能引起雞的炎性損傷[3]。低致病性H9N2AIV 能感染人和多種哺乳動物[4],并引起一定程度的炎性損傷[5]。白細胞介素2(interleukin-2,IL-2)和腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)在機體的炎癥反應(yīng)和免疫反應(yīng)起著重要作用。有研究發(fā)現(xiàn),炎癥性腸病患者血清TNF-α、IL-2 水平表達上升[6]。IL-2 主要由CD4+細胞、CD8+細胞和NK 細胞產(chǎn)生,對機體細胞免疫和體液免疫均有良好的促進和提升作用,而TNF-α 作為重要的炎癥細胞因子,對免疫具有調(diào)節(jié)作用。史丹丹等[7]研究表明,鈣調(diào)蛋白(calmodulin,CaM)能參與介導(dǎo)急性骨骼肌炎癥反應(yīng)。CaM可能通過調(diào)節(jié)細胞內(nèi)Ca2+的濃度,或者直接參與介導(dǎo)炎癥和免疫反應(yīng)。AIV感染不同種類動物,引起的癥狀不同,可能跟機體的免疫反應(yīng)和炎性反應(yīng)有關(guān)。試驗通過觀察雞、鴨和小鼠外周血中IL-2 和TNF-α 以及肺組織中CaM的轉(zhuǎn)錄和表達情況,了解低致病性H9N2AIV對雞、鴨和小鼠造成炎性損傷的情況,以期為低致病性禽流感對不同種類動物致病機制提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 試驗動物

        24 只52 日齡黑羽烏骨雞和24 只52 日齡櫻桃谷肉鴨購自貴陽綠源禽業(yè)有限公司。24 只6~8 周齡昆明系小鼠購自貴陽醫(yī)學(xué)院。

        1.2 病毒

        雞源H9N2AIV,EID50=10-7.62,由貴州省動物疫病與獸醫(yī)公共衛(wèi)生重點實驗室保存并饋贈。

        1.3 試驗試劑

        雞、鴨和小鼠IL-2、TNF-α、CaM ELISA 試劑盒均購自科諾迪生物有限公司;M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶、TaqDNA聚合酶、SYBR Premix Ex Tap Ⅱ均購自TaKaRa公司。

        1.4 試驗動物分組及處理

        按動物種類將24 只雞、24 只鴨和24 只小鼠隨機分成4組,0、3、6、9 d作為分組標記。0 d作為陰性組,靜脈注射0.2 mL PBS,12 h 后采集其外周血和肺組織,3、6、9 d 作為陽性組,參考文獻靜脈注射0.2 mL H9N2AIV[8],在感染AIV 3、6、9 d后分別采集其外周血和肺組織。

        1.5 測定指標及方法

        1.5.1 IL-2、TNF-α含量

        按照雞、鴨和小鼠IL-2、TNF-α ELISA 試劑盒說明書進行檢測。

        1.5.2 CaM mRNA水平

        參照GenBank中相關(guān)序列和參考文獻設(shè)計雞、鴨和小鼠β-actin內(nèi)參基因及CaM基因引物,見表1。引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。用Trizol法提取各組肺組織中的總RNA,轉(zhuǎn)化為cDNA 后進行熒光RT-PCR擴增。擴增體系:SYBR Premix Ex Tap Ⅱ5 μL、模板1 μL、上下游引物各0.5 μL、ddH2O 3 μL。擴增程序:95 ℃預(yù)變性30 s;55 ℃退火、延伸30 s,每個循環(huán)結(jié)束時進行熒光信號檢測,共40 個循環(huán),反應(yīng)結(jié)束后溫度降到65 ℃,再以0.5 ℃、20 s升溫至95 ℃并檢測熒光信號得到熔解曲線。經(jīng)熒光檢測后得到相應(yīng)的CT值,根據(jù)2-ΔΔCt法計算各組動物CaM的相對表達量。

        表1 雞、鴨和小鼠β-actin內(nèi)參基因及CaM基因引物Tab.1 The β-actin gene and CaM gene primers in chicken,duck and mice

        1.5.3 CaM含量

        將雞、鴨和小鼠肺組織加等量的PBS 研磨后,取上清液-20 ℃冷凍保存,按照CaM ELISA試劑盒說明書進行操作,計算各組動物肺組織中CaM的含量。

        1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

        試驗所得數(shù)據(jù)采用SPSS 20 軟件進行單因素方差分析,應(yīng)用Duncan's法進行組間數(shù)據(jù)的多重比較,結(jié)果以“平均值±標準誤”表示,P<0.01表示差異極顯著,P<0.05表示差異顯著。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 H9N2 AIV 對雞、鴨和小鼠血清中IL-2 含量的影響(見表2)

        表2 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠血清中IL-2含量的影響Tab.2 Effect of H9N2 AIV on the serum IL-2 content of chickens,ducks and mice(n=6) 單位:ng/L

        由表2可知,與0 d(感染前)比,雞的IL-2濃度在感染H9N2AIV 3、6、9 d后均顯著升高(P<0.05);鴨的IL-2濃度在感染H9N2AIV 3、9 d后顯著升高(P<0.05),6 d后極顯著升高(P<0.01);小鼠的IL-2濃度在感染H9N2AIV 3 d后顯著升高(P<0.05),6 d后極顯著升高(P<0.01)。在感染H9N2AIV前后,鴨的IL-2濃度最高,其次是小鼠,最后是雞。

        2.2 H9N2 AIV 對雞、鴨和小鼠血清中TNF-α 含量的影響(見表3)

        表3 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠血清中TNF-α含量的影響Tab.3 Effect of H9N2 AIV on the serum TNF-α content of chickens,ducks and mice(n=6) 單位:ng/L

        由表3 可知,與0 d(感染前)比,雞的TNF-α 濃度在感染H9N2AIV 6、9 d 后均顯著升高(P<0.05);鴨的TNF-α 濃 度 在 感 染H9N2AIV 6 d 后 極 顯 著 升 高(P<0.01),9 d 后顯著升高(P<0.05);小鼠的TNF-α 濃度在感染H9N2AIV 3、6、9 d 后顯著升高(P<0.05)。在感染H9N2AIV 前后,小鼠的TNF-α 濃度最高,其次是鴨,最后是雞。

        2.3 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠肺組織CaM的影響

        2.3.1 H9N2AIV 對雞、鴨和小鼠肺組織CaM 轉(zhuǎn)錄的影響(見表4)

        表4 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠肺組織CaM轉(zhuǎn)錄的影響Tab.4 Effect of H9N2 AIV on CaM transcription in lung tissues of chickens,ducks and mice(n=6)

        由表4可知,與0 d(感染前)比,雞的CaM轉(zhuǎn)錄水平在感染H9N2AIV 3、9 d 后顯著升高(P<0.05),6 d 后極顯著升高(P<0.01);鴨的CaM轉(zhuǎn)錄水平在感染H9N2AIV 6 d后顯著升高(P<0.05);小鼠的CaM轉(zhuǎn)錄水平在感染H9N2AIV 3 d后顯著升高(P<0.05),6 d后極顯著升高(P<0.01)。在感染H9N2AIV 3、6、9 d后雞的CaM轉(zhuǎn)錄水平均高于鴨和小鼠。

        2.3.2 H9N2AIV 對雞、鴨和小鼠肺組織CaM 含量的影響(見表5)

        表5 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠肺組織CaM含量的影響Tab.5 Effect of H9N2 AIV on the content of CaM in lung tissues of chickens,ducks and mice(n=6) 單位:μg/L

        由表5可知,與0 d(感染前)比,雞的CaM含量在感染H9N2AIV 6 d 后極顯著降低(P<0.01),9 d 后顯著降低(P<0.05);鴨的CaM含量在感染H9N2AIV 9 d后極顯著降低(P<0.01);小鼠的CaM含量在感染H9N2AIV 6 d后極顯著降低(P<0.01)。在感染H9N2AIV 3、6、9 d 后,雞的CaM含量最高,其次是鴨,最后是小鼠。

        3 討論

        3.1 H9N2 AIV對雞、鴨和小鼠IL-2、TNF-α含量的影響

        研究表明,禽流感感染患者體內(nèi)血清細胞因子水平顯著升高[9],通常情況下宿主感染AIV 后會立即產(chǎn)生大量的細胞因子,隨后啟動局部或全身的炎癥反應(yīng)[10]。IL-2可以激活巨噬細胞、淋巴細胞等能產(chǎn)生TNF-α、INF-α和NO細胞因子,增強機體免疫應(yīng)答,參與機體的炎癥反應(yīng)[11]。IL-2對機體免疫反應(yīng)具有促進作用[12]。研究發(fā)現(xiàn),人工感染H9N2AIV 后第4 d 雞腦組織中IL-2 的mRNA 含量極顯著上調(diào)[13]。而TNF-α作為典型的炎癥細胞因子,也是最重要的促炎因子,可以直接參與炎癥反應(yīng)[14-15]。TNF-α適量的表達,有助于激活機體的免疫,但過量表達就會造成炎性損傷,甚至?xí)?dǎo)致細胞凋亡[16]。在試驗中,在感染AIV 3 d 后雞、鴨和小鼠IL-2 含量均顯著升高,6 d 時鴨和小鼠的IL-2 含量極顯著升高,而在感染AIV 6d 后雞和小鼠的TNF-α 含量均顯著升高,鴨極顯著升高,說明在感染AIV后雞、鴨和小鼠均發(fā)生了免疫反應(yīng)和炎性反應(yīng),在6 d 時3種動物的免疫和炎性反應(yīng)最為明顯,而3種動物相比,鴨的IL-2 和TNF-α 變化最明顯,小鼠的IL-2 變化最明顯。大量研究結(jié)果表明,雞與鴨的免疫反應(yīng)基因結(jié)構(gòu)和表達特征具有顯著差異,這些差異可能與它們對AIV抵抗力不同相關(guān)[17]。而鴨和小鼠在感染AIV 前后,IL-2、TNF-α 濃度均較雞高,可能鴨和小鼠感染AIV無明顯癥狀與細胞因子參與免疫反應(yīng)有關(guān)。

        3.2 H9N2 AIV 對雞、鴨和小鼠CaM mRNA 的轉(zhuǎn)錄水平及含量的影響

        CaM在動物機體細胞內(nèi)能與很多配體相互作用,參與介導(dǎo)炎癥反應(yīng)、代謝、細胞凋亡、肌肉收縮、記憶活動、神經(jīng)生長及免疫反應(yīng)等生命活動[18],同時CaM可以直接參與動物機體的炎癥和炎性反應(yīng)[19]。Ca2+被稱為是細胞內(nèi)的第二信使,而CaM可通過調(diào)節(jié)機體內(nèi)Ca2+濃度來調(diào)節(jié)細胞的功能[20]。若發(fā)生細胞內(nèi)Ca2+超載、Ca2+分布紊亂,就有可能引起細胞毒性,導(dǎo)致細胞的死亡[21]。在細胞凋亡和自噬過程中,Ca2+引起的依賴信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制涉及不同的CaM調(diào)控系統(tǒng)[22],而自噬過程可以通過Akt-mTOR、MAPK 和NF-κB信號等通路參與H9N2AIV 誘導(dǎo)的急性肺損傷[23]。感染AIV 后,雞、鴨和小鼠的CaM 的轉(zhuǎn)錄水平顯著上調(diào),在6 d時達到最大值,這與其炎性反應(yīng)是一致的。但雞和小鼠在感染AIV 后6 d的CaM 表達量卻極顯著下降,而鴨在感染后9 d CaM表達量極顯著下降,CaM可能參與炎性反應(yīng)的初始階段,對炎性反應(yīng)有促進作用,或許是直接參與炎性反應(yīng),所以導(dǎo)致CaM 的轉(zhuǎn)錄水平顯著升高。H9N2AIV 感染可抑制雞的免疫應(yīng)答,其中對細胞免疫應(yīng)答的抑制更為明顯[24],所以對CaM 的表達有抑制作用,可能通過抑制CaM 的表達來減輕機體的免疫反應(yīng),但AIV 如何影響CaM mRNA 的轉(zhuǎn)錄和CaM 的蛋白表達,其機制還有待進一步探討。

        4 結(jié)論

        本研究表明,鴨和小鼠外周血IL-2、TNF-α 含量在感染前后均比雞高,而鴨和小鼠肺的炎性損傷也較雞輕,說明AIV 造成的炎性損傷可能與IL-2、TNF-α 含量有關(guān)。感染AIV后,CaM在3種動物肺組織中的轉(zhuǎn)錄水平顯著升高,但其在肺組織中的含量下降,說明CaM 在AIV 造成的肺組織炎性損傷中可能起重要作用,但AIV對CaM的表達有抑制作用,具體機制還需要進一步研究。

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