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        自建微陣列化學發(fā)光免疫分析法定量檢測心肌肌鈣蛋白I自身抗體及其初步臨床應用

        2021-03-30 04:54:40何成山姚曉陽蔣秀娣陸志成
        檢驗醫(yī)學 2021年3期
        關鍵詞:化學發(fā)光灰度芯片

        何成山,姚曉陽,蔣秀娣,陸志成

        (上海中醫(yī)藥大學附屬第七人民醫(yī)院檢驗科,上海 200137)

        心肌肌鈣蛋白I(cardiac troponin I,cTnI)是在心肌細胞損傷時被釋放入血循環(huán)中的,是診斷心肌損傷的重要血清學標志物。cTnI在生理狀態(tài)下為免疫系統(tǒng)的隱蔽抗原,當心肌細胞損傷時cTnI被釋放出來,觸發(fā)機體免疫系統(tǒng)產(chǎn)生心肌肌鈣蛋白I自身抗體(cardiac troponin I autoantibody,cTnIAAb)。1996年,BOHNER等[1]首次在急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)患者血清中發(fā)現(xiàn)cTnIAAb。隨后的多個研究均證實cTnIAAb可與cTnI檢測試劑盒中的檢測抗體或捕獲抗體競爭結(jié)合cTnI的抗原表位,對檢測結(jié)果造成負干擾[2]。近年來的研究結(jié)果顯示,除AMI患者外,還有部分擴張性心肌病、心肌炎等患者血清中也存在cTnIAAb,并與患者心肌的慢性炎癥、心臟功能受損、心肌損傷后的左室病理性重構(gòu)和心力衰竭的發(fā)生等密切相關[3-4]。因此,檢測血清cTnIAAb有重要的臨床意義。目前,國內(nèi)外尚無商品化的cTnIAAb檢測試劑盒。文獻報道的cTnIAAb檢測主要使用cTnI-肌鈣蛋白T(troponin T,TnT)-肌鈣蛋白C(troponin C,TnC)融合蛋白或cTnITnC融合蛋白作為檢測抗原,進行間接酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA),并進行定性檢測[3,5-7]。由于ELISA的敏感性和重復性欠佳,且有較多的人為因素可影響檢測結(jié)果。因此,本研究擬建立一種基于微陣列蛋白芯片技術(shù)的定量檢測cTnIAAb的化學發(fā)光免疫分析法。

        1 材料和方法

        1.1 研究對象

        選取2018年5月—2019年5月上海中醫(yī)藥大學附屬第七人民醫(yī)院門急診或住院急性冠狀動脈綜合征(acute coronary syndrome,ACS)患者500例(ACS組),其中男320例、女180例,年齡(58.8±10.8)歲。所有患者均依據(jù)《急性冠脈綜合征急診快速診療指南》[8]確診。入院時采用ARCHITECT i2000全自動化學發(fā)光免疫分析儀(美國雅培公司)及配套試劑檢測血漿或血清cTnI,結(jié)果均>0.1 ng/mL。排除自身免疫性疾病、肝臟疾病、腎臟疾病、血液系統(tǒng)疾病、惡性腫瘤患者及近期有手術(shù)、外傷和感染史的患者。隨機選取同期上海中醫(yī)藥大學附屬第七人民醫(yī)院體檢健康者100名作為正常對照組,其中男60名、女40名,年齡(53.5±11.2)歲。收集所有對象檢測后的剩余血清樣本,置于無菌無酶離心管中,-20 ℃保存?zhèn)溆谩1狙芯拷?jīng)上海中醫(yī)藥大學附屬第七人民醫(yī)院醫(yī)學倫理委員會批準,所有對象均知情同意。

        1.2 檢測血清cTnIAAb的微陣列化學發(fā)光免疫分析法的建立

        1.2.1 抗原包被芯片的制備 將硬基質(zhì)芯片(江蘇三聯(lián)生物工程有限公司)置于含2% NaOH的預處理液中浸泡24 h,用純水清洗2~8次,再將芯片置于0.5%硅烷水溶液中浸泡30 min。將浸泡好的硬基質(zhì)芯片置于烤箱中,140 ℃烘烤0.5 h。處理完成的芯片密閉保存。將重組人cTnI-C融合蛋白(上海博陽生物診斷公司饋贈)用穩(wěn)定劑(江蘇三聯(lián)生物工程有限公司)梯度稀釋,采用Nano-Plotter 2.1全自動點樣儀(德國GeSim公司)將各種濃度的抗原分別點樣于已預處理的芯片上,點樣量為20 nL/點。將點樣好的芯片分別浸入封閉液中封閉,然后取出芯片,150×g離心1 min,去除殘余封閉液,4 ℃保存待用。

        1.2.2 微陣列化學發(fā)光免疫分析法的建立 采用微陣列化學發(fā)光免疫分析法(間接法)檢測血清cTnIAAb,檢測儀器為SLXP-001全自動生物芯片閱讀儀(江蘇三聯(lián)生物工程有限公司)。具體步驟:(1)在芯片杯中加入1∶100稀釋的待檢血清,孵育30 min;(2)洗滌芯片,將芯片置于辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標記的抗人IgG溶液中,37 ℃孵育40 min;(3)沖洗芯片,將芯片置于發(fā)光底物溶液中,由電荷耦合器件(charge coupled device,CCD)相機讀取灰度值。在玻片上抗原點樣為1行4個點,以4個點灰度值的平均值作為最終結(jié)果,由儀器自動分析圖片并給出結(jié)果。

        1.2.3 實驗條件的優(yōu)化 隨機選取cTnI>0.1 ng/mL的ACS患者血清100份,采用稀釋液(江蘇三聯(lián)生物工程有限公司配制)1∶100稀釋,采用SLXP-001全自動生物芯片閱讀儀篩選出1份信噪比最高的血清樣本,作為后續(xù)實驗條件優(yōu)化的樣本。優(yōu)化條件以檢測結(jié)果反應信號高,本底信號低,信噪比最大為最優(yōu)實驗條件。(1)抗原(cTnI-C融合蛋白)濃度的選擇。從50.0、25.0、12.5、6.0 μg/mL 4個濃度中選取最優(yōu)抗原濃度。(2)點樣芯片封閉所用封閉液及封閉時間的選擇。觀察2%人乳、2%牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)、2%羊乳、2%乳清蛋白的封閉效果;將芯片在不同的封閉液中分別封閉12、24、48和72 h,取出后離心待檢。(3)抗體的選擇。對不同的抗體(HRP-兔抗人IgG、HRP-山羊抗人IgG、HRP-驢抗人IgG和HRP-鼠抗人IgG,均購自深圳菲鵬公司)進行篩選。(4)自制芯片穩(wěn)定性的驗證。采用加速穩(wěn)定性試驗驗證自制芯片的穩(wěn)定性,取1份高濃度cTnIAAb陽性血清(412.6 AU/mL);另取20片已制備好的芯片,其中4片即刻點樣檢測,剩余16片在37 ℃溫箱中保存,于第5天、第10天、第20天各取4片點樣檢測,觀察反應灰度值與即刻檢測的反應灰度值的差異。

        1.2.4 血清cTnIAAb參考區(qū)間及標準曲線的建立 采用建立的微陣列化學發(fā)光免疫分析法檢測100名健康體檢者的血清cTnIAAb濃度,以樣本反應灰度值的第95百分位數(shù)為臨界值,并賦值為20 AU/mL,健康人群的參考區(qū)間<20 AU/mL。選擇cTnIAAb檢測結(jié)果信噪比最高的血清,使用血清稀釋液從1∶50開始倍比稀釋至1∶12 800,采用微陣列化學發(fā)光免疫分析法檢測cTnIAAb,獲得樣本各稀釋度的灰度值,找出與健康體檢者樣本臨界值對應的發(fā)光信號灰度值,并賦值為20 AU/mL,以此計算不同稀釋倍數(shù)樣本中cTnIAAb反應的發(fā)光灰度值,繪制cTnIAAb濃度與發(fā)光灰度值對應的標準曲線。血清cTnIAAb濃度的單位為AU/mL。

        1.3 微陣列化學發(fā)光免疫分析法的性能評價

        1.3.1 精密度 (1)重復性。取cTnIAAb高值(152 AU/mL)和低值(38 AU/mL)血清樣本各1份,1 d內(nèi)連續(xù)檢測20次,計算變異系數(shù)(coefficient of variation,CV)。(2)中間精密度。取上述高值、低值血清樣本連續(xù)檢測3 d,每天連續(xù)檢測 5 次,計算CV。

        1.3.2 空白限(limit of blank,LoB)和檢測限(limit of detection,LoD) 以血清稀釋液為樣本,每天連續(xù)檢測5次,共檢測4 d,獲得20個檢測數(shù)據(jù),取第95百分位數(shù)所在濃度為LoB。根據(jù)公式 LoD=LoB+1.645s計算LoD。

        1.3.3 線性范圍 用血清稀釋液將1份高濃度cTnIAAb血清樣本從1∶50開始倍比稀釋至1∶12 800,采用微陣列化學發(fā)光免疫分析法檢測,獲得各稀釋度的發(fā)光灰度值,以各稀釋度的理論發(fā)光灰度值為參比,計算實測值與理論值之間的相關性。以r≥0.99時的最高樣本濃度為線性范圍上限,LoD為線性范圍下限。

        1.4 免疫印跡法鑒定cTnI自身抗體的特異性

        將15 μg cTnI-TnC融合蛋白或心肌肌鈣蛋白C(cardiac troponin C,cTnC)(批號8T57,芬蘭Hytest公司)與上樣緩沖液混合,95 ℃金屬浴加熱5 min,恢復至室溫后待用。采用100 g/L聚丙烯酰胺凝膠電泳,110 V電泳60 min[Biorad PowerPac基礎電泳儀(美國Bio-Rad公司)],將硝酸纖維素(nitrocellulose,NC)膜先用甲醇浸泡1 min激活,再將NC膜、濾紙、電泳凝膠在轉(zhuǎn)膜液中充分浸泡20 min,制成三明治結(jié)構(gòu),20 V電壓35 min,將電泳條帶轉(zhuǎn)移至NC膜上。NC膜置于5%脫脂奶粉中4 ℃封閉過夜。將cTnIAAb高濃度血清樣本(1∶50稀釋)、抗cTnI單克隆抗體[批號4T21(820),芬蘭Hytest公司]或抗cTnC單克隆抗體[批號4T27(1A2),芬蘭Hytest公司]與NC膜室溫孵育2 h;用磷酸鹽吐溫緩沖液(phosphate-buffered saline Tween-20,PBST)洗滌3次,加HRP-羊抗人IgG(1∶500稀釋)或HRP-羊抗鼠IgG(深圳菲鵬公司),室溫孵育1 h,用PBST洗滌3次。在NC膜表面滴上發(fā)光液混合物(上海翊圣生物科技有限公司),曝光后采用Image Guant LAS4000化學發(fā)光成像分析儀(美國GE公司)成像。

        1.5 統(tǒng)計學方法

        采用SPSS 18.0軟件進行統(tǒng)計分析。呈非正態(tài)分布的數(shù)據(jù)以中位數(shù)(M)[四分位數(shù)(P25,P75)]表示,組間比較采用Mann-WhitneyU檢驗。采用Spearman相關性分析評估cTnIAAb與cTnI的相關性。計數(shù)資料以率表示,組間比較采用χ2檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 微陣列化學發(fā)光免疫分析法實驗條件的優(yōu)化

        2.1.1 包被抗原 cTnI-TnC融合蛋白濃度的選擇 50 μg/mL cTnI-TnC融合蛋白點樣獲得的信噪比最高,故以此濃度作為芯片點樣濃度。

        2.1.2 最佳封閉液和封閉時間的選擇 2% BSA和2%羊乳本底較高,信噪比降低;2%乳清蛋白本底較低,特異性反應信號值也較低;2%人乳封閉液反應信號強,信噪比最高,且“陰性”樣本信號最低。因此,最佳封閉液為2%人乳。以2%人乳為封閉液,封閉12 h,陽性信號的信噪比最高;封閉24 h,反應信號值稍有下降;封閉48 h,芯片反應信號明顯降低。因此,最佳封閉時間為12 h。見圖1。

        圖1 最佳封閉液和封閉時間的選擇

        2.1.3 HRP標記抗體的選擇 采用4種HRP-抗人IgG抗體與篩選出的4例cTnIAAb陽性樣本和2例cTnIAAb陰性樣本反應。HRP-驢抗人IgG抗體、HRP-兔抗人IgG抗體的反應信號較弱,本底信號也較低;HRP-鼠抗人IgG抗體和HRP-羊抗人IgG抗體獲得的反應信號強,本底信號尚可,但HRP-羊抗人IgG抗體的信噪比更大。因此,選擇HRP-羊抗人IgG抗體為作二抗。 見圖2。

        圖2 酶標記抗人IgG的選擇

        2.1.4 自制芯片的穩(wěn)定性 加速穩(wěn)定性試驗結(jié)果顯示,7 d內(nèi)cTnIAAb的反應信號值幾乎無明顯改變,7~14 d反應信號值逐步下降。與即刻檢測相比,第14天反應信號值下降約30%,第21天的反應信號值僅為即刻檢測的40%。見圖3。

        圖3 自制芯片穩(wěn)定性評價的結(jié)果

        2.2 血清cTnIAAb定量檢測標準曲線和參考區(qū)間的建立

        以健康人群血清樣本反應灰度值的第95百分位數(shù)作為臨界值,其相對應的賦值濃度為20 AU/mL,以≥20 AU/mL為cTnIAAb陽性。系列稀釋樣本的反應灰度值與理論反應灰度值有很好的相關性(r2>0.99)。標準曲線見圖4。

        圖4 血清cTnIAAb定量檢測標準曲線

        2.3 微陣列化學發(fā)光免疫分析法檢測血清cTnIAAb的性能評價

        2.3.1 性能評價 (1)重復性。高值和低值樣本的CV分別為5.02%和11.26%。(2)中間精密度。高值和低值樣本的CV分別為14.13%和7.83%。(3)LoB和LoD。LoB為0.12 AU/mL,LoD為0.23 AU/mL。(4)線性范圍。線性范圍為0.23~815.00 AU/mL。(5)參考區(qū)間。參考區(qū)間為<20 AU/mL。

        2.3.2 免疫印跡法鑒定血清cTnIAAb的特異性 (1)cTnIAAb的特異性。采用免疫印跡法檢測6例經(jīng)微陣列化學發(fā)光免疫分析法測定cTnIAAb為強陽性的血清樣本(標記為1~6號,cTnIAAb濃度分別為103.6、153.9、273.6、368.7、356.8、406.5 AU/mL)和1例cTnIAAb陰性血清樣本(cTnIAAb為12.5 AU/mL)。結(jié)果顯示,cTnI-TnC融合蛋白的相對分子質(zhì)量為46 000,6例cTnIAAb陽性樣本在相對分子質(zhì)量40 000~55 000處出現(xiàn)明顯的反應條帶,cTnIAAb陰性血清未見該反應條帶,陽性對照條帶清晰(圖5)。(2)排除抗cTnC抗體對cTnIAAb檢測的干擾。因本研究采用的包被抗原為cTnI-TnC融合蛋白,故需先排除cTnIAAb陽性血清中可能存在的抗cTnC抗體與cTnI-TnC融合蛋白中的cTnC抗原反應而出現(xiàn)的假陽性。采用免疫印跡法檢測4例cTnIAAb強陽性血清和1例cTnIAAb陰性血清。結(jié)果顯示,僅抗cTnC單克隆抗體陽性對照(相對分子質(zhì)量為18 000)在相對分子質(zhì)量15 000~25 000處出現(xiàn)明顯的反應條帶,4例cTnIAAb陽性血清和1例cTnIAAb陰性血清在此處均未出現(xiàn)明顯的反應條帶(圖6)。

        圖5 免疫印跡法驗證cTnIAAb的特異性

        圖6 免疫印跡法檢測cTnIAAb陽性血清對抗cTnC單克隆抗體的反應性

        2.4 臨床標本的檢測

        以cTnIAAb≥20 AU/mL為陽性。ACS組血清cTnIAAb陽性率為8.4%(42/500),明顯高于正常對照組[2%(2/100)](χ2=5.023,P<0.05)。在cTnIAAb陽性樣本中,有7例樣本(ACS患者6例、正常對照者1例)cTnIAAb水平為20~30 AU/mL,有23例樣本(ACS患者22例、正常對照者1例)為31~50 AU/mL,有30例樣本(均為ACS患者)cTnIAAb水平>50 AU/mL。

        ACS組血清cTnIAAb水平為5.43(3.21~8.35)AU/mL,正常對照組為5.86(3.49~7.82)AU/mL,2個組之間血清cTnIAAb水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。有76.2%(32/42)的cTnIAAb陽性患者血清cTnI<0.5 ng/mL,僅有2例cTnI>10 ng/mL;所有cTnI>50 ng/mL的樣本均未檢出cTnIAAb。Spearman相關性分析結(jié)果顯示,ACS組血清cTnIAAb與cTnI無相關性(r2=0.1,P>0.05)。

        3 討論

        cTnIAAb常在缺血性心肌病、擴張性心肌病、圍產(chǎn)期心肌病等各種心肌病患者的血循環(huán)中被檢出。有研究結(jié)果顯示,缺血性心肌病患者血清cTnIAAb的檢出率為9.2%[9]~21.3%[10],cTnIAAb水平較高的患者左心室射血分數(shù)明顯低于cTnIAAb陰性者[11]。在圍產(chǎn)期心肌病[12]、長期血液透析[13]、缺血性心臟病[14]等患者中均發(fā)現(xiàn)血清cTnIAAb陽性,提示心功能受損。周桑等[3]的研究結(jié)果顯示,在入院時,cTnIAAb陽性AMI患者的超聲心動圖結(jié)果與cTnIAAb陰性AMI患者并無差異;隨訪1.4年后,cTnIAAb陽性AMI患者左心室舒張末期容積和左心室收縮末期容積均顯著升高。提示cTnIAAb陽性與AMI后左心室病理性重構(gòu)密切相關。WU等[15]的研究結(jié)果顯示,cTnIAAb可上調(diào)心肌細胞凋亡基因的表達,使心肌細胞凋亡增加。鑒于cTnIAAb具有重要的臨床意義,且目前無商品化試劑盒,因此本研究自建了定量檢測血清cTnIAAb的微陣列化學發(fā)光免疫分析法,并對該方法的檢測性能、特異性和臨床應用進行了初步評價。

        心肌細胞損傷后被釋放到血循環(huán)中的cTnI可以游離形式或復合形式存在,但游離形式的cTnI非常不穩(wěn)定,半衰期僅5 min,因此血循環(huán)中90%的cTnI以cTnI-TnC的穩(wěn)定形式存在[2]。因此,本研究選擇cTnI-TnC融合蛋白作為檢測抗原,建立定量檢測cTnIAAb的微陣列化學發(fā)光免疫分析法,除有較好的穩(wěn)定性外,更與病理狀態(tài)下血循環(huán)中存在的cTnI形式相似。本研究對自建檢測方法的實驗條件進行優(yōu)化,精密度良好(CV<15%),標準曲線r2>0.99,線性范圍為0.23~815.00 AU/mL,敏感性高(LoB為0.12 AU/mL,LoD為0.23 AU/mL)。加速穩(wěn)定性試驗結(jié)果顯示,制備好的芯片在37 ℃條件下可穩(wěn)定7 d,這提示芯片可在4 ℃條件下穩(wěn)定60~100 d,基本滿足了大批量實驗或臨床研究的需求。

        為了明確自建微陣列化學發(fā)光免疫分析法檢測cTnIAAb的特異性,本研究采用免疫印跡法進行了驗證。結(jié)果顯示,6例cTnIAAb陽性樣本在相對分子質(zhì)量40 000~55 000處均出現(xiàn)明顯的反應條帶,而cTnIAAb陰性樣本在此位置無反應條帶。cTnI-TnC融合蛋白的相對分子質(zhì)量為46 000,因此該位置出現(xiàn)的反應條帶應是血清中的cTnIAAb與電泳膜上的cTnI-TnC特異性結(jié)合產(chǎn)生的。由于本研究所用的檢測抗原為cTnI-TnC融合蛋白,因此有可能會與血清中的抗cTnI-TnC抗體或抗肌鈣蛋白自身抗體結(jié)合,導致出現(xiàn)假陽性。為了排除這種可能性,本研究采用免疫印跡法進行驗證。結(jié)果顯示,無論是cTnIAAb陽性血清樣本,還是陰性血清樣本,與轉(zhuǎn)膜的cTnITnC融合蛋白均無結(jié)合反應,在相對分子質(zhì)量15 000~25 000處均未出現(xiàn)反應條帶;只有抗cTnC單克隆抗體出現(xiàn)明顯的反應條帶。這提示血清中的cTnIAAb僅與cTnI-TnC融合蛋白中的cTnI產(chǎn)生結(jié)合反應,具有很好的特異性。

        HAGHIKIA等[12]的研究結(jié)果顯示,表觀健康人的cTnIAAb檢出率約為6%。TANG等[5]報道的正常人的cTnIAAb檢出率僅為0.5%。本研究結(jié)果顯示,正常對照組cTnIAAb的陽性率為2%。不同研究中cTnIAAb陽性率的差異可能與檢測方法、使用的檢測抗原等不同等有關。本研究結(jié)果顯示,cTnI均陽性的500例ACS患者中,血清cTnIAAb的陽性率為8.4%,顯著高于正常對照組[2%(2/100)](P<0.05);但2個組之間血清cTnIAAb水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),可能與ACS組cTnIAAb陽性率不高,陰性樣本較多,導致ACS患者的cTnIAAb平均水平較低有關。為了研究血清cTnI水平與cTnIAAb之間的關系,本研究進一步分析了cTnIAAb陽性患者的臨床資料,結(jié)果顯示,有76.2%(32/42)的cTnIAAb陽性患者血清cTnI<0.5 ng/mL,所有cTnI>50 ng/mL的樣本均未檢出cTnIAAb。由此可見,cTnIAAb主要在cTnI水平較低的患者中檢出,在cTnI水平較高的患者中少見。這是否由cTnIAAb對cTnI的檢測造成負干擾,導致cTnI檢測結(jié)果假性降低所致,尚需進一步研究加以明確。

        綜上所述,本研究建立的微陣列化學發(fā)光免疫分析法可用于定量檢測血清cTnIAAb,檢測性能基本達到臨床應用要求,為cTnIAAb的臨床應用提供了較好的方法學基礎。

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