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        微生物法檢測(cè)乳粉中葉酸的優(yōu)化研究

        2021-03-04 06:26:58蘇妙儀嚴(yán)家俊
        中國乳業(yè) 2021年2期
        關(guān)鍵詞:優(yōu)化

        文/蘇妙儀 嚴(yán)家俊 張 娟

        (廣東產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)研究院)

        維生素是人體神經(jīng)系統(tǒng)最重要的營養(yǎng)素,包括維生素A、B、D、E等,其中B族維生素又是重要的神經(jīng)營養(yǎng)類維生素。如果長期缺乏某種維生素,就會(huì)引起生理機(jī)能障礙而發(fā)生某種疾病。維生素?cái)z入可能降低肝癌的發(fā)病風(fēng)險(xiǎn),特別是維生素E和葉酸的效果更顯著[1]。葉酸屬于水溶性B族維生素,通常儲(chǔ)存于綠葉蔬菜、水果及動(dòng)物肝臟中,在蛋白質(zhì)代謝、維持人體機(jī)能等方面發(fā)揮著不可或缺的作用[2]。歐盟建議成年人每日葉酸推薦攝入量為400 μg,孕期和哺乳期婦女每日葉酸推薦攝入量為400~600 μg。我國食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)對(duì)嬰幼兒配方乳粉中強(qiáng)化維生素的含量有嚴(yán)格要求,對(duì)于嬰兒葉酸含量一般要求在2.5~12.0 μg/100 kJ之間,較大嬰兒和幼兒最低含量為1 μg/100 kJ[3,4]。葉酸能夠促進(jìn)嬰兒身體器官的發(fā)育,增加?jì)雰旱拿庖吡Φ?。因此,育齡期女性合理補(bǔ)充葉酸,是促進(jìn)優(yōu)生優(yōu)育的重要措施[5]。研究表明,葉酸攝入量不足或代謝通路受阻會(huì)增加腦卒中的發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)[6],葉酸水平低可能是阿爾茲海默病發(fā)生的危險(xiǎn)因素[7],維持較好的葉酸水平對(duì)降低高血壓、預(yù)防和控制心腦血管疾病具有重要意義[8]。因此食品中葉酸含量的準(zhǔn)確測(cè)定十分關(guān)鍵,對(duì)指導(dǎo)人們?nèi)粘o嬍?、預(yù)防疾病具有重要意義。

        目前,葉酸的檢測(cè)方法主要包括色譜法[9~13]、熒光法[14~17]、微生物法[18~19]、電化學(xué)法[20]和酶聯(lián)免疫法[21,22]等。在眾多檢測(cè)方法中,微生物法由于靈敏度高、不需要復(fù)雜設(shè)備儀器及成本低等優(yōu)點(diǎn)[25],在最新的第十七版官方分析化學(xué)家協(xié)會(huì)AOAC(Association of Official Analytical Chemists)和美國谷物化學(xué)家協(xié)會(huì)分析方法中,被列為食品葉酸的第一分析方法,其定量分析原理為微生物生長需要生長因子,而葉酸是鼠李糖乳酸桿菌(Lactobacillus caseisub sp. Rhamnosus ATCC7469)生長所必需的因子,并具有專一性。在一定條件下,鼠李糖乳酸桿菌的生長繁殖速度與溶液中葉酸的含量成正比關(guān)系,從而定量計(jì)算出葉酸的含量。但是微生物法也存在試驗(yàn)周期長,步驟繁瑣,對(duì)試驗(yàn)人員和試驗(yàn)室的要求較高,結(jié)果重復(fù)性差等局限性。因此本文在GB 5009.211-2014基礎(chǔ)上,對(duì)菌株冷凍制備保存,菌懸液濃度以及培養(yǎng)時(shí)間進(jìn)行摸索,以縮短接種液制備時(shí)間,從而縮短整個(gè)試驗(yàn)周期,以應(yīng)對(duì)日益增長的檢測(cè)需求,對(duì)促進(jìn)嬰幼兒乳粉中葉酸含量的研究具有一定的指導(dǎo)意義。

        1 試驗(yàn)材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        試驗(yàn)樣品:5 組嬰幼兒配方乳粉,隨機(jī)購于各大超市;SRM 1849a質(zhì)控樣品購于美國NIST。

        試驗(yàn)菌株:鼠李糖乳酸桿菌(Lactobacillus caseispp.rhamnosus)ATCC7469,購于環(huán)凱微生物科技有限公司。

        1.2 儀器試劑

        儀器:AC2-6S1生物安全柜,新加坡ESCO公司;GHP-9160隔水式恒溫培養(yǎng)箱,上海一恒科技有限公司;UV-1900紫外可見分光光度計(jì),島津(中國)有限公司。

        試劑:葉酸測(cè)定用培養(yǎng)基,乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基,乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基,均購于北京陸橋技術(shù)股份有限公司;葉酸標(biāo)準(zhǔn)品,購于德國Dr.Ehrenstorfer公司;相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制參照GB 5009.211-2014。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 接種液優(yōu)化

        將鼠李糖乳酸桿菌凍干粉接種到乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基上,(37±1)℃培養(yǎng)20~24 h。再轉(zhuǎn)種2 ~3 代增強(qiáng)活力。將活化后的菌液以8000 r/min離心5 min,棄去上清液,加入10 mL 生理鹽水,混勻。重復(fù)洗脫3次,確保無殘留培養(yǎng)基。預(yù)先用50 mL含有25%甘油的葉酸測(cè)定用培養(yǎng)基混勻制成菌懸液并分裝1.0mL至菌株保存管,-70 ℃凍存?zhèn)溆?。每次試?yàn)前從-70℃冰箱中取出適量的菌株儲(chǔ)備液,充分混勻。

        1.3.2 適宜菌懸液濃度與培養(yǎng)時(shí)間的探索試驗(yàn)

        使用0.85%生理鹽水對(duì)同一批次制成的菌株儲(chǔ)備液進(jìn)行稀釋,調(diào)節(jié)透光率成4 種濃度測(cè)試菌液:30%、50%、70%、90%,分別加入50 μL到葉酸含量為0.00 ng和1.00 ng的試管中,一式三份。培養(yǎng)16 h、20 h、24 h、28 h、32 h、36 h、40 h、44 h、48 h和60 h,同時(shí)以葉酸含量為0.00ng作為空白對(duì)照管,540 nm下分別測(cè)定其余試管的吸光度,比較各濃度測(cè)試菌懸液的生長規(guī)律。

        1.3.3 試樣制備方法的優(yōu)化[23]

        試樣的制備方法參考G B 5009.211-2014并進(jìn)行優(yōu)化,取試樣約1.0 g至50 mL離心管中,加入約30 mL純水,搖勻,定容至40 mL。95 ℃水浴30 min,其間振蕩至少5 次,迅速冷卻至室溫,使用0.22 μm 濾膜過濾除菌后,稀釋相應(yīng)倍數(shù),使葉酸稀釋液濃度落在標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍內(nèi),備用。

        1.3.4 準(zhǔn)確性試驗(yàn)

        以SRM 1849a質(zhì)控樣品中葉酸含量為基準(zhǔn),按1.3.3試樣制備的優(yōu)化方法處理試樣,并采用1.3.2試驗(yàn)所得的最適菌懸液濃度和培養(yǎng)時(shí)間的關(guān)系,進(jìn)行6 次平行試驗(yàn)。同時(shí)與國標(biāo)微生物法的測(cè)定結(jié)果進(jìn)行比較。

        1.3.5 重復(fù)性試驗(yàn)

        隨機(jī)選取5 組嬰幼兒配方乳粉,按1.3.3試樣制備的優(yōu)化方法處理試樣,并采用1.3.2試驗(yàn)所得的最適菌懸液濃度和培養(yǎng)時(shí)間的關(guān)系對(duì)每個(gè)試樣進(jìn)行6 次重復(fù)性試驗(yàn)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 適宜菌懸液濃度與培養(yǎng)時(shí)間關(guān)系的確定

        以測(cè)定試管的培養(yǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo),不同時(shí)間測(cè)得的吸光度值為縱坐標(biāo),繪制不同濃度測(cè)試菌液的生長曲線,見圖1~4。

        由圖1~4結(jié)果可知,營養(yǎng)物充足的情況下,隨著透光率的降低,菌懸液濃度增大,菌體進(jìn)入穩(wěn)定生長期越快,時(shí)間越短。圖1試管由于菌懸液濃度低,適應(yīng)期較長,在培養(yǎng)16~36 h之間處于適應(yīng)調(diào)整期,生長緩慢,吸光度值從0.098到0.298變化較小,測(cè)得吸光度值較圖2、3、4試管明顯偏低;圖2試管菌體經(jīng)過一段時(shí)期適應(yīng)后在16~40 h之間以最快的速度進(jìn)行繁殖進(jìn)入對(duì)數(shù)期,吸光度值變化明顯,在該時(shí)期內(nèi)營養(yǎng)物質(zhì)的濃度影響菌的生長速率和總生長量,在40 h之后增速緩慢,到60h測(cè)得吸光度值無明顯變化,處于穩(wěn)定生長期;圖3、4試管由于菌懸液濃度較高,短時(shí)間內(nèi)16 h分別測(cè)得吸光度值0.686和0.759,直接處于對(duì)數(shù)生長期,且兩組試管分別在36 h和28 h進(jìn)入穩(wěn)定期,到60 h之后增速緩慢,測(cè)得吸光度值無明顯變化。

        圖1 透光率90%濃度的測(cè)試菌懸液生長曲線

        圖2 透光率70%濃度的測(cè)試菌懸液生長曲線

        圖3 透光率50%濃度的測(cè)試菌懸液生長曲線

        圖4 透光率30%濃度的測(cè)試菌懸液生長曲線

        從該試驗(yàn)結(jié)果得知,圖2、3、4試管由于菌懸液濃度的逐步增大,菌體進(jìn)入穩(wěn)定生長期時(shí)間越短,分別在40 h、36 h和28 h進(jìn)入穩(wěn)定生長期,當(dāng)生長因子葉酸耗盡,鼠李糖乳酸桿菌停止增長,不管培養(yǎng)時(shí)間的延長,測(cè)得吸光度值無明顯變化,因此可以利用終點(diǎn)法測(cè)定葉酸的含量。試驗(yàn)中還發(fā)現(xiàn),由于標(biāo)準(zhǔn)系列管中低濃度葉酸含量很低,如果菌懸液濃度較高(圖3、4 試管),會(huì)在短時(shí)間內(nèi)進(jìn)入對(duì)數(shù)生長期、穩(wěn)定生長期甚至是衰老期,從而導(dǎo)致鼠李糖乳酸桿菌在標(biāo)準(zhǔn)系列管中均處于不同生長期,測(cè)得吸光度值有變化,最終影響試驗(yàn)結(jié)果。因此本次試驗(yàn)結(jié)果表明,該批次菌株儲(chǔ)備液用于葉酸測(cè)定時(shí),將測(cè)定菌懸液透光率稀釋在70%、培養(yǎng)時(shí)間在40 h以上可以保證試驗(yàn)的可行性與穩(wěn)定性。

        2.2 接種液優(yōu)化

        GB 5009.211-2014中接種液的制備:先將儲(chǔ)備菌株連續(xù)傳種2~3 代以保證細(xì)菌活力(耗時(shí)3~4天)并且每月至少傳代1 次。試驗(yàn)前活化后的菌株再接種至瓊脂培養(yǎng)基中(37±1)℃培養(yǎng)20~24 h后,備用。然后試驗(yàn)前一天,取2 mL葉酸標(biāo)準(zhǔn)工作溶液和4 mL葉酸測(cè)定用培養(yǎng)液混勻,分裝于2 支5 mL離心管中,塞好棉塞,于121 ℃高壓滅菌15 min后即為種子培養(yǎng)液。冷卻后用接種環(huán)將活化的菌株轉(zhuǎn)至2支種子培養(yǎng)液中,于(37±1) ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)20~24 h。試驗(yàn)當(dāng)天取出后將種子培養(yǎng)液混懸,無菌操作下用無菌注射器吸取0.5 mL轉(zhuǎn)接至另兩支已消毒但不含葉酸的培養(yǎng)液中,于(37±1) ℃培養(yǎng)6 h,振蕩混勻,制成接種液,立即使用。完成接種液制備,整個(gè)過程需要耗時(shí)4~5 天,操作繁瑣,制備時(shí)間長,并且由于菌株代數(shù)不同,活力不同,導(dǎo)致濃度也不易把握。再加上試驗(yàn)培養(yǎng)時(shí)間和最終吸光度測(cè)定,完成一批樣品檢測(cè)總耗時(shí)6~7天。檢驗(yàn)時(shí)間過長,不利于大批量、任務(wù)緊急的檢測(cè)。

        圖5 標(biāo)準(zhǔn)曲線-國標(biāo)微生物法

        圖6 標(biāo)準(zhǔn)曲線-優(yōu)化方法

        本研究方法是將活力增強(qiáng)2~3代后的菌株預(yù)先用50 mL含有25%甘油的葉酸測(cè)定用培養(yǎng)基混勻制成菌懸液并分裝1.0mL至菌株保存管,-70 ℃凍存?zhèn)溆?。每次試?yàn)時(shí)只需要拿出該批次菌株儲(chǔ)備液一支,凍融后,用0.85%生理鹽水稀釋至測(cè)定菌懸液透光率在70%可直接作為接種液使用,試驗(yàn)當(dāng)天可完成,節(jié)省了接種液的制備時(shí)間。其中甘油作為防凍劑防止冰晶對(duì)細(xì)胞造成傷害。

        2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線比較

        確定該批次菌株儲(chǔ)備液適宜的菌懸液濃度為透光率T=70%、培養(yǎng)時(shí)間在40h以上,比較國標(biāo)微生物法和優(yōu)化方法所作標(biāo)準(zhǔn)曲線的差異,結(jié)果見圖5、6。

        由圖5和圖6結(jié)果可知,兩種方法標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系較好,效果相當(dāng),R2值可達(dá)到0.99以上。國標(biāo)微生物法是將試驗(yàn)用菌濃度和培養(yǎng)時(shí)間限定在一定范圍內(nèi),但由于菌的生長規(guī)律存在一定的偏差,不同代數(shù)的菌株活力不同,因此使用相同菌濃度和培養(yǎng)時(shí)間往往不適用于不同代數(shù)的菌株生長,易造成結(jié)果不穩(wěn)定。而優(yōu)化方法固定同一批次菌株儲(chǔ)備液的菌懸液濃度為T=70%、接種量50 μL、37 ℃培養(yǎng)40 h以上,基本確保同一批次菌株的活力從而保證試驗(yàn)的穩(wěn)定性。

        2.4 準(zhǔn)確性與重復(fù)性試驗(yàn)比較

        本研究擬對(duì)樣品進(jìn)行簡單的水浴提取、稀釋,優(yōu)化樣品的提取步驟,結(jié)合菌株制備的優(yōu)化方法,對(duì)微生物法測(cè)定葉酸的含量進(jìn)行優(yōu)化,并將優(yōu)化方法應(yīng)用于檢測(cè)嬰幼兒乳粉中葉酸的含量。以質(zhì)控樣品SRM 1849a為基準(zhǔn),使用優(yōu)化方法處理樣品,并選擇最適菌濃度和培養(yǎng)時(shí)間進(jìn)行6 次試驗(yàn),比較優(yōu)化方法與國標(biāo)微生物法所測(cè)得結(jié)果的差異,結(jié)果見表1;同時(shí),選取了5 種不同的嬰幼兒配方乳粉樣品,使用優(yōu)化方法對(duì)每個(gè)樣品進(jìn)行6 次重復(fù)性試驗(yàn),結(jié)果見表2。以此對(duì)優(yōu)化方法進(jìn)行驗(yàn)證,為縮短檢驗(yàn)周期,提高試驗(yàn)效率。

        由表1結(jié)果可知,兩種方法所測(cè)結(jié)果都與SRM 1849a中葉酸含量為229.3±6.2 ug/100 g標(biāo)示值相符,準(zhǔn)確性良好。相對(duì)于國標(biāo)微生物法,優(yōu)化方法結(jié)果更準(zhǔn)確,6 次平行試驗(yàn)的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD較小,可達(dá)1.61%。由表2結(jié)果可知,5組不同嬰幼兒配方乳粉中葉酸含量的RSD分別為1.74%、3.67%、4.36%、5.85%和4.00%。表明該方法重復(fù)性良好。

        3 總結(jié)

        GB 5009.211-2014微生物法檢測(cè)嬰幼兒乳粉中葉酸含量從菌種制備、試樣提取到接種培養(yǎng)等步驟繁瑣、復(fù)雜,存在易受外部因素干擾等問題,導(dǎo)致試驗(yàn)周期長,結(jié)果穩(wěn)定性、重現(xiàn)性差。而微生物法測(cè)定維生素的關(guān)鍵因素是試驗(yàn)菌株,多次傳代易造成菌株活力不同從而導(dǎo)致試驗(yàn)穩(wěn)定性不可控。本研究在GB 5009.211-2014基礎(chǔ)上作了兩點(diǎn)優(yōu)化:(1)優(yōu)化接種液制備,菌株儲(chǔ)備液預(yù)先分裝到菌株保存管中,通過比較菌株的生長規(guī)律,得出該批次菌株儲(chǔ)備液的適宜濃度和培養(yǎng)時(shí)間,確保同一批次的菌株活力基本一致,可以有效控制試驗(yàn)中接種液的濃度、添加量和培養(yǎng)時(shí)間。達(dá)到制備一次菌液可多次使用的目的。由原來的6~7 天縮減至2~3天,既節(jié)省了每次試驗(yàn)制備接種液時(shí)間,實(shí)現(xiàn)來樣當(dāng)天檢測(cè),又保證了試驗(yàn)的穩(wěn)定有效。(2)試樣提取,國標(biāo)微生物法中對(duì)于嬰幼兒乳粉可采用直接提取法,但是也需要加入80 mL氫氧化鈉乙醇溶液,超聲振蕩2~4 h,至試樣完全溶解或分散,然后用水定容至刻度等步驟。本研究表明,嬰幼兒乳粉直接用純水定容,經(jīng)95 ℃水浴30 min提取稀釋后可直接檢測(cè)葉酸,縮短了試樣制備需要超聲2~4 h。

        綜上所述,本文對(duì)關(guān)鍵試驗(yàn)條件優(yōu)化研究,解決了接種液制備耗時(shí)長的問題;簡化試樣提取步驟,從而簡便了操作流程,縮短了檢驗(yàn)周期,減少多方面的干擾,具有良好的準(zhǔn)確性和重復(fù)性,保證了試驗(yàn)的穩(wěn)定有效。該優(yōu)化方法提高工作效率,降低檢驗(yàn)成本,適合在實(shí)驗(yàn)室推廣和使用,對(duì)實(shí)驗(yàn)室開展微生物法檢測(cè)乳粉中葉酸的含量具有一定的指導(dǎo)意義。

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