王偉科，陸 娜，閆 靜，宋吉玲，袁衛(wèi)東，周祖法

(杭州市農業(yè)科學研究院，浙江 杭州 310024)

秀珍菇(Pleurotuspulmonarius)在分類學上屬于擔子菌門、傘菌綱、傘菌目、側耳科、側耳屬的大型真菌[1]，其口感極好，味道鮮美，纖維含量少，熱量低，肉質脆爽，且營養(yǎng)豐富，蛋白質含量極高，同時還含多醣、纖維素、礦物質素、氨基酸與多種微量元素等，被驗證具有抗腫瘤的功能，是一種價值極高的珍稀食用菌[2]。秀珍菇抗逆性較強，生產周期較短，出菇整齊，產量可觀，應用工廠化設施進行規(guī)模化栽培已成為其生產的主要方式[3]。生產上秀珍菇采用低溫誘導調控出菇的方法，了解秀珍菇低溫誘導下原基形成的分子機理，對秀珍菇工廠化栽培具有重要的指導意義[4]。

課題組前期對秀珍菇低溫誘導后樣本與原基形成前期的樣本進行了轉錄組測序，并分析了樣本間的差異表達基因，經轉錄組測序后ID為Cluster-6377.69422的基因在秀珍菇菌絲體經低溫刺激后原基形成前期樣本中高度表達，經基因注釋與Swissprot描述，其編碼S-腺苷甲硫氨酸合成酶，將其命名為PpSAMS。

S-腺苷甲硫氨酸合成酶 (S-adenosylmethioninesynthetase， SAMS)是植物代謝過程中的一個關鍵酶，它催化ATP和甲硫氨酸反應生成的S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosyl-methionine， SAM)，是重要的甲基供體，也是生物合成多胺和乙烯等的前體，能夠參與植物的轉氨丙基、轉甲基和轉硫等多種重要的生化反應過程[5-7]。同時，SAMS還可以與RNA結合參與基因的表達調控[8]。研究表明，SAMS基因與植物對干旱、鹽堿和低溫的抗性密切相關，并協(xié)助植物耐受非生物脅迫，提高植物抗逆性[9-11]。此外，不同植物SAMS基因或同一物種的不同家族成員之間的表達模式具有明顯的組織和時間特異性[12-14]，表明不同的SAMS基因可能參與了不同的生理代謝過程。因此，分析不同物種的SAMS基因，對深入了解該基因的功能具有重要意義。

目前已經在番茄[15]、擬南芥[13]、松樹[16]等多種生物中克隆了SAMS基因，但還未見秀珍菇SAMS基因(PpSAMS)相關報道。本實驗利用生物信息學技術分析篩選出該基因的全長序列，設計引物克隆了該基因，并對其進行了相關分析，為進一步深入研究該基因奠定了基礎，同時為闡明秀珍菇經低溫刺激誘導原基與子實體形成的分子機理提供參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

1.1.1 供試菌株

供試菌株為秀珍菇5766，由臨安鼎新農業(yè)科技有限公司提供。

1.1.2 基質配方

基質配方為：棉籽殼39%、木屑39%、麩皮18%、石膏1%、石灰1%。

1.1.3 樣本處理

菌包接種后于26～28 ℃條件下避光培養(yǎng)，待菌絲滿袋后，選取生長狀態(tài)一致的菌包開展試驗。分4組取樣，每組10包，分別記為S0、S1、S2、S3。S0，菌絲滿袋后，用鑷子挑取發(fā)菌良好的菌包料面純菌絲體10 g，置于-80 ℃超低溫冰箱保存；S1，菌絲滿袋后，發(fā)菌良好的菌包置于10 ℃條件下12 h，按S0方法取樣保存；S2，菌絲滿袋后，發(fā)菌良好的菌包置于10 ℃ 條件下12 h，再待其恢復到室溫狀態(tài)后，按S0方法取樣保存；S3，原基形成期取原基10 g，保存方法與S0一致。

1.2 試驗方法

1.2.1 總RNA的提取

樣本總RNA的提取采用Trizol法進行[17]，樣本經液氮研磨后Trizol裂解，離心棄沉淀，上清加入氯仿/異戊醇抽提，振蕩混勻。離心后上清加入體積比1∶1的異丙醇，沉淀總RNA。沉淀經75%乙醇洗滌后溶于40 μL DEPC水中。

1.2.2 cDNA的合成

總RNA經1.2%瓊脂糖凝膠電泳與Nanodrop2000c檢測純度和濃度后，參考Biorad公司的iScript cDNA Synthesis Kit合成cDNA。

1.2.3 基因克隆

根據(jù)秀珍菇測序結果，選取PpSAMS基因。同時運用引物設計軟件Primer 5.0設計相關引物如下：上游引物5′-ATGTTCTCCATCCGCATCTCC-3′；下游引物5′-CGCCCATCAAACTCCTCTAA-3′。

以反轉錄后cDNA為模板進行PCR擴增，共50 μL反應體系：10×Pfx緩沖液5.0 μL，50 mmol·L-1MgSO41.0 μL，25 mmol·L-1dNTP 2.0 μL，10 mmol·L-1上游引物2.0 μL，10 mmol·L-1下游引物2.0 μL，cDNA模板5.0 μL，PfxDNA Polymerase1.0 μL，ddH2O 32 μL。

反應條件為：94 ℃預變性4 min；94 ℃ 40 s，54 ℃ 40 s，72 ℃延伸1 min，30個循環(huán)；72 ℃延伸7 min。擴增產物用PCR產物膠回收試劑盒直接純化回收。連接T載體后轉化大腸埃希菌，提取質粒DNA進行鑒定，陽性克隆送北京擎科生物技術有限公司測序。

1.2.4 基因的生物信息學分析

在http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast、http://amigo.geneontology.org/、http://www.uniprot.org等相關網址進行生物信息學分析。采用軟件VectorNTI、MEGA5.0對序列進行多重比對，并構建系統(tǒng)進化樹[18]。

1.2.5 基因表達分析

分別提取秀珍菇常溫處理菌絲體、低溫誘導后菌絲體、低溫誘導原基形成前期菌絲體與原基4個不同處理階段總RNA，參考iScript cDNA Synthesis Kit進行cDNA第一鏈的合成，同時根據(jù)測序后的PpSAMS序列設計引物，按照SYBR Premix ExTaqTM Ⅱ使用說明，檢測基因PpSAMS的表達，以Actin作為內參，計算PpSAMS的相對表達量[19]。目的基因和內參基因Actin的退火溫度均為53 ℃，樣品設3個重復。引物見表1。

2 結果與分析

2.1 PpSAMS基因克隆與生物信息學分析

為研究PpSAMS基因信息并探究其功能，通過利用RT-PCR技術從秀珍菇中克隆得到1 100 bp左右的DNA片段，克隆測序后，通過ORF Finder尋找其開放讀碼框，顯示為1個全長為1 152 bp的ORF框，推斷其為編碼384個氨基酸的功能蛋白。

表1 實時熒光定量PCR反應引物序列

BLAST顯示其與密黏褶菌(Gloeophyllumtrabeum)S-腺苷甲硫氨酸合成酶基因(S-adenosylmethionine adenosyltransferase，GenBank:XM_007864819.1)相似度為83%。

與GenBank中登錄的基因進行同源性比較和功能預測分析后，獲得序列被驗證確認為一個編碼384個氨基酸的CDS(Coding sequence，圖1)。Vector NTI軟件推算該編碼蛋白的相對分子質量在41.8 ku左右。

2.2 PpSAMS基因編碼蛋白系統(tǒng)進化分析

利用MEGA5.0 軟件對秀珍菇PpSAMS基因編碼氨基酸序列開展進化樹分析，顯示秀珍菇PpSAMS編碼的蛋白與糙皮側耳同源蛋白親緣關系最近，與其他真菌同源蛋白的親緣關系較遠(圖2)。

2.3 PpSAMS的GO功能分析

GO功能分析顯示，PpSAMS蛋白具有結合ATP、金屬離子的功能，同時具有S-腺苷甲硫氨酸合成酶活性。GO功能分析顯示，PpSAMS蛋白參與了甲硫氨酸、單碳的代謝過程，同時參與了S-腺苷甲硫氨酸的生物合成。S-腺苷甲硫氨酸在甲基轉移中是一個重要的甲基供體，并可以將DNA甲基化，從而調控基因的表達?？梢?，PpSAMS蛋白在秀珍菇DNA甲基化調控過程中起重要作用。

2.4 PpSAMS的KEGG分析

KEGG pathway分析顯示，S-腺苷甲硫氨酸合成酶催化L-甲硫氨酸形成S-腺苷甲硫氨酸，后者參與了生物體內的一系列代謝過程，包括乙烯合成與丙酸的代謝(圖3)。

2.5 低溫誘導后秀珍菇不同生長階段PpSAMS的表達研究

PpSAMS在秀珍菇菌絲體常溫處理(S0)、低溫誘導(S1)、低溫誘導后原基形成前期(S2)、原基期4個不同生長階段均有不同程度的表達。其中S1階段PpSAMS的相對表達量高于S0階段,說明菌包受到低溫脅迫后，PpSAMS的表達量有一定程度的升高；而S2階段PpSAMS的相對表達量明顯高于S0與S1階段，說明PpSAMS在一定程度的低溫誘導后，啟動了體內某些生理生化反應，誘導原基形成(圖4)。

圖1 PpSAMS基因的ORF讀碼框與翻譯結果Fig.1 ORF and transcription of PpSAMS

圖2 PpSAMS基因氨基酸序列系統(tǒng)進化樹Fig.2 Phylogenetic tree of amino acid sequence of PpSAMS between Pleurotus pulmonarius and other fungi

圖3 PpSAMS基因KEGG代謝通路分析Fig.3 KEGG pathway analysis of PpSAMS

圖4 PpSAMS在秀珍菇不同生長階段的表達情況Fig.4 Expression profile of PpSAMS in Pleurotus pulmonarius at different growth stages

3 討論

出菇過程是大型食用菌整個生命過程中不可缺少的環(huán)節(jié)，在秀珍菇栽培研究中，低溫誘導刺激相關基因表達的調控能夠實現(xiàn)其整齊出菇[20]。因此，研究秀珍菇子實體發(fā)育分子機制與發(fā)育相關基因可為秀珍菇出菇技術提供指導，也可為發(fā)掘優(yōu)異種質資源和雜交親本遺傳背景篩選提供幫助[21]。

擔子菌子實體形成的分子機理研究一直是國內外學者的研究熱點，目前已分離鑒定得到多個與食用菌結實有關的基因。香菇priB基因在菌絲體時期不表達，在原基和子實體發(fā)育形成的早期大量表達，推測其在香菇子實體形成中起到重要作用[22]。金針菇原基形成相關的HMG-box轉錄因子基因Fv-hmg在金針菇原基時期的表達量顯著高于雙核菌絲時期，推測該轉錄因子參與調控金針菇的原基形成[23]。本實驗結果與上述研究結果相似，推測PpSAMS在誘導秀珍菇原基形成過程中起到重要作用。

研究表明，植物與大型食用真菌在遭受低溫脅迫時，能夠利用自身甲基化程度(甲基化和去甲基化)的改變調控基因表達[24]。S-腺苷甲硫氨酸合成酶催化甲硫氨酸和ATP形成S-腺苷甲硫氨酸，而S-腺苷甲硫氨酸在甲基轉移中是一個重要的甲基供體，并可以將DNA甲基化，進而影響基因的表達[25]。本研究中PpSAMS基因在秀珍菇受低溫誘導后表達量上升，推測其屬于真菌的應激反應，提高了秀珍菇菌絲體抗低溫能力；同時PpSAMS的表達誘導了S-腺苷甲硫氨酸的生物合成，將相關基因甲基化，從而影響了秀珍菇的生長發(fā)育，尤其在原基形成前期，其表達量顯著上升，推測其在秀珍菇菌絲體扭結進而形成原基的過程中發(fā)揮了一定的作用，但其具體調控機制有待于進一步研究。