李光偉,李 波,金 莉,邱麗萍,張亞珍,吳淑琴
(齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院 1. 病理生理學(xué)教研室、2.機能實驗教學(xué)中心、3.病理學(xué)教研室,黑龍江 齊齊哈爾 161006)
糖尿病(diabetes mellitus,DM)是危害人類健康的常見的慢性代謝性疾病,發(fā)病率逐年提高,我國是DM患者最多的國家之一,DM血管病變是其致死致殘的主要原因[1-2]。DM血管病變的重要特點是動脈粥樣硬化,動脈平滑肌細胞增生和遷移是其發(fā)生的原因之一。DM血管病變以及血管平滑肌功能紊亂是多因子參與的復(fù)雜網(wǎng)絡(luò)調(diào)控過程[3]。研究表明[4],鈣離子和鈣信號轉(zhuǎn)導(dǎo)在動脈中膜平滑肌細胞表型改變以及增生、遷移過程中發(fā)揮重要作用。
鈣敏感受體(calcium sensing receptor,CaSR)是一種G蛋白偶聯(lián)受體,在細胞分泌、增殖、分化、趨化、凋亡等過程中發(fā)揮重要作用[5]。近年來,越來越多的研究顯示,心血管系統(tǒng)中有CaSR的全長表達,并在血管收縮與動脈粥樣硬化等生理及病理過程中發(fā)揮調(diào)節(jié)功能[6]。但是CaSR在糖尿病腎動脈硬化中的作用尚無報道。根據(jù)文獻調(diào)研與前期預(yù)實驗情況,我們推測:CaSR可能參與糖尿病腎動脈平滑肌細胞(renal artery smooth muscle cell,RAMSC)增生及遷移的發(fā)展過程。為證明此假說,我們做如下研究,以期為糖尿病腎動脈硬化的臨床治療提供新的藥物靶點。
1.1 材料
1.1.1實驗動物 健康Wistar大鼠,體質(zhì)量(200±20)g,♂,SPF級。由齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院實驗動物中心提供。動物許可證號:SYXK(黑)2008004。
1.1.2主要試劑 CaSR抗體(sc-47741,Santa);PCNA抗體(sc-25280,Santa);MMP-2抗體(sc-13595,Santa);α-SMA抗體(BM0002,博士德);NPS2143(sc-361280A,Santa);GdCl3(sc-224004,Santa);胰島素(CI6561,coolader);細胞周期試劑盒(G019,南京建成);MMP-2 ELISA檢測試劑盒(H146-1,南京建成);Transwell小室(3422,corning);DAB顯色試劑盒(AR1022,博士德);即用型SABC試劑盒(SA1025,博士德)。
1.1.3主要儀器 倒置顯微鏡(Olympus);DF-D 型恒壓恒流電泳儀(北京六一廠) ;高速離心機(Sigma);化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(上海天能);流式細胞儀(Becton Dickinson);激光共聚焦顯微鏡(Olympus)。
1.2 方法
1.2.1大鼠腎動脈平滑肌細胞的原代培養(yǎng) wistar大鼠處死,無菌條件下迅速取腎動脈,冷 PBS 漂洗,剔掉多余組織。縱向剖開,輕刮內(nèi)膜。中膜在冷 PBS 中漂洗,切成約 1 mm2組織塊,均勻貼于培養(yǎng)瓶底部,將培養(yǎng)瓶翻轉(zhuǎn)置于培養(yǎng)箱中 5-6 h,加入20%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基,將培養(yǎng)瓶翻轉(zhuǎn)過來,靜置培養(yǎng)。
1.2.2大鼠腎動脈平滑肌細胞鑒定 細胞丙酮固定,PBS洗;0.5% H2O2稀釋的甲醇室溫20 min,PBS洗;山羊血清室溫20 min;α平滑肌肌動蛋白(α smooth muscle actin,α-SMA)抗體4 ℃過夜;PBS洗,二抗37 ℃ 30 min,PBS洗;SABC 37 ℃孵育20 min,DAB顯色10 min;自來水沖洗,蘇木精復(fù)染,二甲苯透明,封片。
1.2.3實驗分組及模型的復(fù)制 成對數(shù)生長的RAMSC無血清培養(yǎng)24 h,加入藥物干預(yù),分組如下,對照組:正常細胞培養(yǎng)(含5.5 mmol·L-1葡萄糖的DMEM培養(yǎng)基),不做任何處理;單純模型組(高糖+高胰島素):加入葡萄糖25 mmol·L-1,胰島素(10-7mol·L-1)作用72 h;模型+CaSR激動劑:加入GdCl3(30 μmol·L-1)4 h后,再加入葡萄糖25 mmol·L-1,胰島素(10-7mol·L-1)作用72h;模型+CaSR抑制劑:加入NPS2143(10 μmol·L-1) 12 h后,再加入葡萄糖25 mmol·L-1,胰島素(10-7mol·L-1)作用72 h。
1.2.4Western blot檢測CaSR、PCNA及MMP-2的蛋白水平 細胞刮下后加入蛋白裂解液及PMSF,冰上孵育30 min,4 ℃、12 000 r·min-1離心30 min,上清液進行蛋白定量。取20 μg蛋白樣品,10% SDS-PAGE電泳,90 mV轉(zhuǎn)移2 h至硝酸纖維素薄膜,封閉1.5 h;分別加入一抗CaSR、增殖細胞核抗原(proliferating cell nuclear antigen,PCNA)、基質(zhì)金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase,MMP-2)(1 ∶500) 4 ℃過夜。洗膜,二抗(1 ∶10 000)孵育1 h,ECL發(fā)光,半定量分析 。
1.2.5細胞增殖周期的檢測 各組細胞胰蛋白酶消化后,PBS洗2次,細胞密度為1×106·L-1,離心2 000 r·min-1,5 min,PBS洗,離心同前,加3 mL預(yù)冷乙醇固定,4 ℃過夜,離心2 000 r·min-1,5 min,緩沖液洗滌,離心同前,加A液250 μL,室溫孵育10 min,加B液200 μL,室溫孵育10 min,加預(yù)冷C液200 μL,室溫避光10 min,上機檢測。
1.2.6Transwell小室法檢測細胞遷移 各組細胞離心,調(diào)整細胞濃度1.0×109/L種于上室,下室加入含有10% FBS的完全培養(yǎng)基600 μL,據(jù)分組情況向上室內(nèi)加入不同藥,培養(yǎng)72 h;上室取出后去除未遷移的細胞,PBS洗;甲醇固定上室細胞20 min;PBS洗,風(fēng)干,0.5%結(jié)晶紫染色20 min,PBS洗,風(fēng)干。將小室倒立,400倍正置顯微鏡下任意選取5個不同的視野,拍照并計數(shù)穿膜細胞數(shù)量。
1.2.7ELISA法檢測MMP-2含量 取各組細胞培養(yǎng)液,離心1 500 r·min-110 min,取1 mL上清液待測。按ELISA試劑盒說明書操作。各組均進行3個復(fù)孔檢測,均值為終質(zhì)量濃度。分別以標準物的質(zhì)量濃度及450 nm波長的吸光度值為橫縱坐標,在半對數(shù)坐標紙上繪出標準曲線。在坐標曲線上通過樣品A值,查出相應(yīng)的樣品質(zhì)量濃度。
1.2.8細胞內(nèi)鈣離子濃度的檢測 細胞棄培養(yǎng)液,含鈣Krebs溶液沖洗。Fluo-4 AM 37 ℃避光孵育30 min;去除負載液,含鈣Krebs溶液沖洗,備用。在鏡下選取細胞狀態(tài)好,質(zhì)膜完整的細胞進行實驗。用激光掃描共聚焦顯微鏡監(jiān)測細胞內(nèi)鈣離子的變化,激發(fā)波長為488 nm。
2.1 大鼠腎動脈平滑肌細胞鑒定為鑒定提取的原代大鼠RASMC,我們進行抗α-SMA免疫組化染色。結(jié)果如Fig 1,胞質(zhì)染成黃褐色,胞核不著色,胞質(zhì)中有較多的條絲狀物,與細胞縱軸平行,即為肌動蛋白。計數(shù)200個細胞,見10個細胞未染色,平滑肌細胞的純度為95%。
Fig 1 Identification of RASMCs (immunohistochemical staining ×400)
2.2 不同藥物處理對CaSR表達的影響為探究胰島素抵抗對CaSR表達的影響,我們通過Western blot實驗檢測了不同藥物處理后CaSR蛋白的表達情況。結(jié)果如Fig 2,與control組比較,HG+HI組CaSR表達增加(P<0.05);與HG+HI組比較,GdCl3能增加CaSR表達(P<0.05),CaSR抑制劑NPS2143的作用相反。
Fig 2 Effects of different treatment factors on
2.3 不同藥物處理對PCNA蛋白表達的影響PCNA是反映細胞增殖狀態(tài)的良好指標,為觀察CaSR活化對RASMC增殖的影響,我們觀察了不同藥物處理后PCNA蛋白表達的變化。結(jié)果顯示(Fig 3):與control組比較,高糖和高胰島素能夠上調(diào)PCNA蛋白表達水平(P<0.05);在此基礎(chǔ)上GdCl3能夠進一步增加其表達水平(P<0.05); NPS2143則與GdCl3作用相反。
Fig 3 Effects of different treatment factors on PCNA
2.4 不同藥物處理對細胞周期及細胞增殖指數(shù)的影響為進一步探究CaSR活化對RASMC增殖的影響,我們又觀察了不同藥物作用后細胞周期及細胞增殖指數(shù)的變化。細胞增殖指數(shù)(PI)=(S+G2/M)/ (S+G2/M+G0/G1)。結(jié)果顯示:高糖和高胰島素組S和G2/M期細胞數(shù)量增多,PI高于對照組(P<0.05),CaSR激動劑組PI高于HG+HI組(P<0.05),NPS2143組PI明顯低于HG+HI組(P<0.05),如Fig 4。
Fig 4 Effects of different treatment factors on cell cycle n=3)
2.5 不同藥物處理對細胞遷移的影響為研究CaSR活化對RASMC遷移的影響,我們做了Transwell小室實驗。結(jié)果顯示(Fig 5):HG+HI組平均每個高倍視野穿過濾膜的細胞數(shù)明顯增加(P<0.05與control組比較),提示高糖和高胰島素可增加RASMC的運動侵襲能力。高糖和高胰島素基礎(chǔ)上NPS2143能抑制細胞遷移,GdCl3能促進其遷移(P<0.05)。
Fig 5 Effects of different treatment factors
2.6 不同藥物處理對MMP-2蛋白表達的影響MMP-2能夠降解細胞外基質(zhì),在細胞遷移過程中發(fā)揮重要作用,為觀察其在CaSR活化對RASMC遷移中的作用,我們通過Westen blot實驗檢測了不同藥物處理情況下MMP-2蛋白表達的變化。如Fig 6所示,HG+HI組MMP-2蛋白表達增加(P<0.05與control組比較);高糖和高胰島素基礎(chǔ)上GdCl3和NPS2143分別能上調(diào)和下調(diào)這種作用(P<0.05與HG+HI組比較)。
2.7 不同藥物處理對細胞分泌MMP-2的影響為觀察MMP-2在CaSR活化對 RASMC遷移中的作用,我們又檢測了細胞上清液中的MMP-2含量。如Fig 7,HG+HI組細胞上清液中的MMP-2蛋白含量高于對照組(P<0.05),但卻明顯低于HG+Gd組(P<0.05),NPS2143則與GdCl3作用相反。
2.8 不同藥物處理對細胞內(nèi)鈣離子濃度的影響為揭示CaSR活化促進RASMC增殖和遷移的機制,我們檢測了不同藥物處理后細胞內(nèi)鈣離子濃度的變化。在HG+HI組細胞內(nèi)鈣濃度增加(P<0.05與control組比較),HG+Gd組細胞內(nèi)鈣離子濃度進一步上升(P<0.05與HG+HI組比較),HG+NPS組鈣離子濃度下降(P<0.05與HG+HI組比較),如Fig 8所示。
Fig 6 Effects of different treatment factors on
Fig 7 Effects of different treatment factors on secretion of MMP-2 by RASMCs n=3)
近年來,DM已成為威脅人類生命健康的“甜蜜殺手”,我國是DM患者最多的國家之一。作為慢性代謝性疾病DM有多種并發(fā)癥:嚴重代謝紊亂、感染性疾病、血管的病變及糖尿病足等,其中血管病變是DM致死致殘的主要原因[3]。DM大血管病變的臨床特點是血管功能及結(jié)構(gòu)異常,包括動脈硬化斑塊形成、血管僵硬度增加等。與其他血管損傷不同的是DM血管病變內(nèi)環(huán)境紊亂更加復(fù)雜,高血糖、胰島素抵抗及脂代謝紊亂等導(dǎo)致內(nèi)皮細胞更易損傷。失去內(nèi)皮保護的中膜平滑肌細胞暴露于多重刺激下,發(fā)生增殖、遷移并合成大量的細胞外基質(zhì),沉積于血管壁[7]。研究表明[4],鈣離子和鈣信號轉(zhuǎn)導(dǎo)在動脈中膜平滑肌細胞表型改變以及增生、遷移過程中發(fā)揮重要作用。
Fig 8 Effects of different treatment factors on calcium ion concentration n=3)
鈣敏感受體(calcium sensing receptor,CaSR)是一種G蛋白偶聯(lián)受體,參與體內(nèi)很多重要的病理生理過程。近年來,CaSR在心血管系統(tǒng)中的功能及其在代謝性疾病,如高血壓、肺動脈高壓及糖尿病性心肌病變等中的作用正在被逐步揭示[8-10]。有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)CaSR在動脈粥樣硬化大鼠血管內(nèi)皮細胞以及氣道平滑肌細胞中有表達,其活化影響細胞的增殖和遷移[11-12]。盡管CaSR 與動脈粥樣硬化關(guān)系密切,但其在DM血管病變中的作用卻鮮有報道。
高血糖及胰島素抵抗是DM患者的重要內(nèi)環(huán)境特征,也是引起機體出現(xiàn)各種病理改變的基礎(chǔ)。Malecki等[13]發(fā)現(xiàn)DM患者單核細胞CaSR表達增多,并依賴于空腹血糖濃度。Lu等[14]研究證實高糖促進大鼠主動脈內(nèi)皮細胞CaSR的表達,并可能參與內(nèi)皮細胞凋亡過程。本研究結(jié)果顯示:大鼠RASMC中存在CaSR蛋白的表達,高糖和胰島素能使其表達增加,CaSR激動劑上調(diào)此作用,抑制劑則相反,提示胰島素抵抗能夠活化大鼠RASMC的CaSR。
平滑肌細胞增殖是動脈硬化的重要原因,Zhu等[15]研究表明,在CaSR shRNA大鼠,吸煙引起的肺動脈增生明顯減弱。新近研究揭示缺氧活化的CaSR促進人肺動脈平滑肌細胞增殖和表型轉(zhuǎn)化,進而促進肺動脈高壓的發(fā)生和發(fā)展[4]。我們的結(jié)果亦顯示高糖和胰島素能促進RASMC增殖。這些作用能夠被CaSR激動劑GdCl3所增強,被其抑制劑所減弱,提示胰島素抵抗活化的CaSR參與了RASMC的增殖過程,是導(dǎo)致DM患者發(fā)生腎動脈硬化的原因之一。
血管平滑肌細胞遷移和表型改變是導(dǎo)致DM血管損傷的重要因素。Brennan等[16]研究表明活化的CaSR能夠促進腫瘤細胞轉(zhuǎn)移,比如乳腺癌、前列腺癌等。本研究結(jié)果提示:胰島素抵抗活化的CaSR促進RASMC遷移過程。血管平滑肌細胞遷移受很多因素的影響,MMP是一類能夠降解細胞外基質(zhì)的蛋白酶家族,通過改變細胞和基質(zhì)的結(jié)合特性協(xié)助細胞遷移,在腫瘤細胞的浸潤、轉(zhuǎn)移中起促進作用。MMP-2是血管平滑肌細胞中表達的一種重要的MMP,能水解Ⅳ型膠原,是細胞穿越基底膜過程的重要物質(zhì)。本實驗結(jié)果提示,胰島素抵抗活化的CaSR通過增加MMP-2蛋白的表達,增強其降解細胞外基質(zhì)作用進而促進細胞遷移的進程。
同時,我們觀察到細胞內(nèi)鈣離子濃度隨著細胞增殖及遷移的程度而同步變化,鈣離子濃度升高,細胞的增殖及遷移指標相應(yīng)上調(diào),而鈣離子濃度下降后,細胞增殖及遷移指標也隨之相應(yīng)下調(diào)。Lu等[17]報道:在缺氧條件下CaSR通過IP3受體導(dǎo)致鈣離子從肌漿網(wǎng)釋放,進而促進心肌細胞凋亡。本實驗結(jié)果提示:在胰島素抵抗活化的CaSR所介導(dǎo)RASMC增殖及遷移的過程中,鈣離子也起到了類似的中繼作用,并且促進了細胞的增殖與遷移。
綜上,胰島素抵抗活化的CaSR促進RASMC的增殖與遷移過程,進而參與DM腎血管硬化的形成,且鈣離子在此過程中扮演了重要的角色。本研究為DM腎動脈硬化的臨床治療提供了新思路與新視角。但由于本研究為體外細胞實驗,尚未建立動物模型驗證,另外細胞內(nèi)鈣離子濃度增加通過哪些具體分子機制促進RASMC的增殖和遷移,這些問題仍有待后續(xù)研究。