谷建斌 張景承 薛菲 耿蘊峰 王冬冬
胃癌是常見的消化道惡性腫瘤,盡管診斷技術(shù)在不斷提高,以手術(shù)治療為主的綜合治療(包括化療、靶向治療等)也越來越豐富,但胃癌患者的病死率仍位居腫瘤相關(guān)死亡的第3位[1]。為了提高胃癌患者的生存期,探索胃癌發(fā)生、發(fā)展的分子機制,尋找可靠的生物標(biāo)志物作早期診斷依據(jù)和可靠的治療靶點顯得尤為迫切,因此在基因組中大量轉(zhuǎn)錄的長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)成為胃癌研究的新熱點。lncRNA指長度超過200個核苷酸的非編碼RNA,近年來研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),在惡性腫瘤組織和正常組織中存在差異表達的lncRNA[2-3],在多種腫瘤如胃癌、結(jié)腸癌、肝癌的發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移以及復(fù)發(fā)過程中的重要作用也得到了證實[4-6]。核仁小分子RNA宿主基因3(SNHG3)是一種位于1p35.3的lncRNA。研究發(fā)現(xiàn)lncRNA SNHG3在胃腺癌組織中異常高表達[7],但目前關(guān)于lncRNA SNHG3在胃癌中發(fā)揮的作用及機制研究較少。因此,本研究主要探討下調(diào)lncRNA SNHG3的表達對人胃癌細胞增殖、侵襲、凋亡的影響及可能的機制,為胃癌的診斷和治療提供新的方向。
1.1 細胞株 人胃癌細胞株SGC-7901、正常胃黏膜上皮GES1均為河北醫(yī)科大學(xué)第四醫(yī)院科研中心惠贈;人胃癌細胞MGC-803購自中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)細胞中心;人胃腺癌細胞BGC-823購自上海賽百慷生物技術(shù)股份有限公司。
1.2 主要試劑與儀器 SNHG3-siRNA由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司設(shè)計合成。lncRNA SNHG3、β-Actin引物使用primer 5軟件設(shè)計,由上海生工公司合成。M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自美國promega公司;SYBR Green PCR Master Mix試劑盒購自北京全式金公司;Lipofectamin2000購自美國 Invitrogen 公司;goat anti rabbit IgG(H+L)、辣根過氧化物酶購自美國Jackson公司;Western blot增強化學(xué)發(fā)光試劑(ECL)購自美國Millipore公司。Roter gene 3000購自澳大利亞Corbett公司;NanoDrop ND-2000分光光度計購自美國NanoDrop公司;Transwell小室購自美國Corning公司;BD Accuri C6流式細胞儀購自美國BD公司。
1.3 方法
1.3.1 細胞培養(yǎng) 將人胃癌細胞BGC-823、SGC-7901、MGC-803及正常胃黏膜上皮細胞GES1均接種于RPMI 1640培養(yǎng)基,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),48 h后消化傳代。
1.3.2 lncRNA SNHG3相對表達量檢測 采用qRTPCR法。取對數(shù)生長期胃癌細胞BGC-823、SGC-7901、MGC-803及正常胃黏膜上皮細胞GES1,采用 qRTPCR試劑盒檢測lncRNA SNHG3的相對表達量。lncRNA SNHG3 引物:上游:5′AGACA GATTCGCAGTGGTCG3′,下游:5′GTCTCCATGGCCCACTTCTG3′;β-Actin 上游引物 5′-CACCCCAGCCATGTACGTTG-3′,下游引物 5′-AATGTCACGCACGATTTCCC-3′。采用2-ΔΔCt表示胃癌細胞 lncRNA SNHG3 相對表達量。
1.3.3 細胞分組及轉(zhuǎn)染 將對數(shù)生長期的人胃癌細胞BGC-823隨機分為SNHG3-siRNA組、陰性對照組和空白對照組,每組設(shè)3個復(fù)孔。各組常規(guī)培養(yǎng)24 h,SNHG3-siRNA組加入lncRNA SNHG3-siRNA(正義鏈:5′-GCAUUUAGCUAGGAAUGCATT-3′,反義鏈:5′-UGCAUUCCUAGCUAAAUGCTT-3′)轉(zhuǎn)染,陰性對照組加入無關(guān)序列 NC-siRNA(正義鏈:5′-ACUGCGACUGCUUCACUUGTT-3′,反義鏈:5′-CAAGUGAAGCAGUCGCAGUTT-3′)轉(zhuǎn)染,空白對照組不予轉(zhuǎn)染。所有操作嚴(yán)格按Lipofectamine 2000說明書進行。轉(zhuǎn)染24 h,提取細胞總RNA,NanoDrop 2000分光光度計和瓊脂糖凝膠電泳檢測,提取的總RNA純度和完整性符合實驗要求。按照M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書方法逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板進行PCR擴增。根據(jù)SYBR Green PCR Master Mix試劑盒說明配制反應(yīng)體系20 μl。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性 30 s,95℃ 變性10 s,60℃退火 10 s,72℃延伸20 s共40個循環(huán)。
1.3.4 細胞增殖能力檢測 采用CCK-8法。將轉(zhuǎn)染24 h的3組細胞消化制成單細胞懸液,以5×103個/孔種植于 96孔板(100 μl/孔),在培養(yǎng) 24 h時每孔加入CCK-8 溶液 10 μl,繼續(xù)培養(yǎng) 1 h,在 450 nm 波長下,用酶標(biāo)儀測定各孔光密度(OD)值。
1.3.5 細胞克隆形成能力檢測 克隆形成實驗:將細胞接種于 6孔板(1.5×104個/孔),置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 1~2周,觀察克隆細胞形成至合適大小時用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌2次,4%多聚甲醛固定15 min,加適量0.1%結(jié)晶紫染色液染色10 min,倒置顯微鏡下觀察5個視野,計數(shù)細胞的克隆數(shù)。克隆形成率(%)=(克隆數(shù)目/接種細胞數(shù))×100%。
1.3.6 細胞遷移能力檢測 采用Transwell小室試驗。取各組細胞,均計數(shù)5×104個細胞加入 Transwell小室上室中,用無血清培養(yǎng)液正常培養(yǎng),小室下加入含10%血清的DMEM培養(yǎng)液。培養(yǎng)48 h,將小室取出用PBS沖洗,4%多聚甲醛固定20 min,0.1%結(jié)晶紫染液染色20 min。顯微鏡下觀察并拍照,隨機選取5個視野計數(shù)穿膜細胞數(shù),每組設(shè)3個復(fù)孔,取平均值。
1.3.7 細胞侵襲能力檢測 采用Transwell小室試驗。Transwell小室上室用50 μl Matrigel膠包被,在37℃中放置3~5 h。各組分別取200 μl(密度為2.5×105個/ml)細胞接種于Transwell小室上室,在下室加入DMEM培養(yǎng)基。培養(yǎng)48 h后擦去上室的Matrigel膠和多余細胞,4%多聚甲醛固定20 min,0.1%結(jié)晶紫染色,隨機選取5個視野計數(shù)穿膜細胞數(shù),每組設(shè)3個復(fù)孔,取平均值。
1.3.8 細胞各周期百分比及凋亡率檢測 采用流式細胞術(shù)(FCM)進行細胞周期分析,通過標(biāo)準(zhǔn)胰蛋白酶消化程序收獲生長對數(shù)期的轉(zhuǎn)染和對照細胞,用PBS洗滌,加入500 μl PI染液和5 μl破膜劑,室溫避光孵育30 min,收集培養(yǎng)物并使用BD Accuri C6流式細胞儀分析細胞周期。數(shù)據(jù)表示為在細胞周期的G1、S和G2期細胞的百分比分布。按照細胞凋亡檢測試劑盒說明,將細胞每管加入 5 μl Annexin V-FITC 和 10 μl 20 μg/ml碘化丙啶溶液,室溫避光孵育15 min,使用流式細胞儀測定并獲取凋亡比例數(shù)據(jù)。
1.3.9 信號傳導(dǎo)與活化轉(zhuǎn)錄因子3(STAT3)、p-STAT3和基質(zhì)金屬蛋白酶-2(MMP-2)蛋白的表達水平檢測 采用Western blot法。使用RIPA緩沖液提取總細胞裂解物,通過配置12%十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS.PAGE,恒壓80 V,2 h)分離蛋白質(zhì),并轉(zhuǎn)移到PVDF膜,用5%脫脂奶粉封閉,并在4℃下與一抗孵育過夜。緩沖液洗膜(15 min×3次),將膜與二抗孵育,最后用ECL底物試劑盒檢測,實驗重復(fù)3次。采用Bio-Rad Image Lab 5.2.1軟件進行灰度分析。
1.4 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SAS 9.1統(tǒng)計軟件。計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 lncRNA SNHG3在人胃癌細胞與胃正常黏膜上皮細胞GES1中相對表達量的比較 qRT-PCR結(jié)果顯示,與胃正常黏膜上皮細胞GES1相比,BGC-823、MGC-803細胞的lncRNA SNHG3相對表達量均明顯增高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表1。選取lncRNA SNHG3相對表達量最高的胃癌BGC-823細胞系進行下一步的細胞功能試驗。BGC-823細胞中,SNHG3-siRNA組lncRNA SNHG3相對表達量均明顯低于陰性對照組、空白對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表2。
表1 lncRNA SNHG3在人胃癌細胞與胃正常黏膜上皮細胞GES1中相對表達量的比較
表2 3組BGC-823細胞中l(wèi)ncRNA SNHG3相對表達量比較
2.2 3組BGC-823細胞增殖能力比較 結(jié)果顯示SNHG3-siRNA組的OD值均明顯低于陰性對照組、空白對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表3。
2.3 3組BGC-823細胞克隆形成率比較 SNHG3-siRNA組、陰性對照組、空白對照組細胞的克隆形成實驗結(jié)果見圖1(插頁)。SNHG3-siRNA組克隆形成率均明顯低于陰性對照組、空白對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均 P<0.05),見表 4。
圖1 3組細胞克隆形成能力的比較
2.4 3組BGC-823細胞遷移和侵襲能力比較 在Tran-swell遷移實驗中,SNHG3-siRNA組細胞遷移數(shù)均明顯低于陰性對照組、空白對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);Transwell侵襲實驗中,SNHG3-siRNA 組細胞侵襲數(shù)均明顯低于陰性對照組、空白對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均 P<0.05),見圖 2(插頁)、表 5。
表3 3組BGC-823細胞增殖能力比較
表4 3組BGC-823細胞克隆形成率比較(%)
圖2 3組BGC-823細胞的遷移、侵襲能力的比較(a:遷移實驗;b:侵襲實驗;結(jié)晶紫染色,×200)
2.5 3組BGC-823細胞各周期細胞百分比和凋亡率比較 BGC-823細胞轉(zhuǎn)染SNHG3 siRNA 24 h后,SNHG3-siRNA組細胞G1期百分比均明顯高于空白對照組、陰性對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),3組細胞S期百分比比較差異則無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);SNHG3-siRNA組細胞G2期百分比均明顯低于空白對照組、陰性對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見圖3、表6。下調(diào)lncRNA SNHG3的表達后,SNHG3-siRNA組細胞凋亡率均明顯高于空白對照組、陰性對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見圖4。
表5 3組BGC-823細胞遷移、侵襲數(shù)比較(個/視野)
2.6 3組BGC-823細胞STAT3、p-STAT3和MMP-2蛋白表達水平比較 Western blot結(jié)果顯示,與陰性對照組和空白對照組比較,SNHG3-siRNA組的STAT3、p-STAT3和 MMP-2蛋白的表達水平均明顯下降,p-STAT3/STAT3的比值明顯降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均 P<0.05),見圖 5、表 7。
圖3 3組BGC-823細胞各周期細胞百分比的比較
圖4 3組BGC-823細胞凋亡情況的比較
表6 3組BGC-823細胞各周期細胞百分比的比較(%)
圖5 3組BGC-823細胞STAT3、p-STAT3、MMP-2蛋白表達水平的比較(STAT3為信號傳導(dǎo)與活化轉(zhuǎn)錄因子3;MMP-2為基質(zhì)金屬蛋白酶-2)
表7 3組 BGC-823細胞 STAT3、p-STAT3、MMP-2蛋白表達水平的比較
目前大量研究表明,lncRNA在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中起到重要的調(diào)控作用[8-9]。lncRNA SNHG3作為一種lncRNA,最初由Pelczar等[9]發(fā)現(xiàn)。近期研究發(fā)現(xiàn),lncRNA SNHG3在肝癌、結(jié)直腸癌中均表達增高[10-11],是肝癌、結(jié)直腸癌不良預(yù)后的重要指標(biāo)。Huang等[11]發(fā)現(xiàn),在結(jié)直腸癌中,SNHG3作為內(nèi)源性競爭性RNA與miR-182-5p相互競爭,導(dǎo)致c-Myc過表達并作用于c-Myc的目的基因,從而促進了結(jié)直腸癌進展。而在胃癌的研究中,lncRNA SNHG3在胃癌組織中高表達[7],并且高表達的胃癌患者的生存時間顯著低于低表達的胃癌患者[12]。為了進一步探討lncRNA SNHG3在胃癌中發(fā)揮的作用及機制,本研究以胃癌細胞為研究對象,qRT-PCR結(jié)果顯示,胃癌細胞BGC-823、MGC-803中l(wèi)ncRNA SNHG3的相對表達量均明顯高于胃正常黏膜上皮細胞系GES1,提示lncRNA SNHG3高表達與胃癌的發(fā)生相關(guān)。
應(yīng)用siRNA技術(shù)轉(zhuǎn)染BGC-823下調(diào)lncRNA SNHG3表達后,CCK-8實驗和克隆形成實驗結(jié)果顯示細胞增殖能力、克隆形成能力均受到顯著抑制,提示lncRNA SNHG3在胃癌發(fā)展及克隆性增殖過程中發(fā)揮了一定作用。進一步研究發(fā)現(xiàn),下調(diào)lncRNA SNHG3表達后,G1期細胞百分比上升,G2期細胞百分比下降,提示下調(diào)lncRNA SNHG3的表達,使細胞周期阻滯于G1期,抑制胃癌細胞BGC-823進入G2期,從而抑制胃癌細胞BGC-823的分裂增殖。下調(diào)lncRNA SNHG3的表達后,BGC-823細胞凋亡率顯著上升,這些結(jié)果表明lncRNA SNHG3下調(diào)所引起的分裂增殖抑制、凋亡增加可能是胃癌細胞增殖能力下降的部分原因。Transwell遷移、侵襲實驗表明,胃癌細胞BGC-823在lncRNA SNHG3下調(diào)后的遷移及侵襲能力均顯著降低,說明在侵襲和轉(zhuǎn)移的過程中l(wèi)ncRNA SNHG3可能也扮演了重要的角色。
信號傳導(dǎo)與活化轉(zhuǎn)錄因子(signal transducer andactivator of transcription,STATs)家族成員具有信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄調(diào)控雙重功能[13]。酪氨酸激酶相關(guān)受體、STATs、JAK酪氨酸激酶(Janus kinase)構(gòu)成了JAK-STAT信號通路。生理狀態(tài)下,JAK-STAT通路的激活快速而短暫,而在人類腫瘤細胞中該通路則持續(xù)激活[14],JAK-STAT信號的異常激活可促進腫瘤細胞增殖、遷移、侵襲及上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化[15]。STAT3作為IL-6R、表皮生長因子受體、JAK、Src等多個致癌性酪氨酸激酶信號通路的會聚點,其持續(xù)性激活能上調(diào) Bcl-xl、Mcl-1、CyclinsD1/D2、C-myc 和survivin基因的表達,下調(diào)p53基因的表達,縮短細胞在G1期的停滯時間,使其快速進入S期,干擾正常細胞的增殖、分化、凋亡[16]。磷酸化后的STAT3是STAT3的活性形式,其形成二聚體后進入細胞核內(nèi)調(diào)控相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄[17],誘導(dǎo)多種參與細胞存活、增殖、遷移、侵襲、血管生成及免疫逃逸等基因的表達,促進致癌性轉(zhuǎn)化。抑制STAT3磷酸化及p-STAT3介導(dǎo)的DNA轉(zhuǎn)錄和復(fù)制,可促進腫瘤細胞凋亡[18]。近期研究發(fā)現(xiàn),p-STAT3蛋白與胃癌患者不良預(yù)后及胃癌分化程度、TNM分期、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、遠處轉(zhuǎn)移及腫瘤浸潤深度密切相關(guān),提示其對胃癌的發(fā)展起調(diào)控作用,可能作為預(yù)測胃癌的一個分子標(biāo)志物[19]。本研究中,下調(diào)lncRNA SNHG3表達后,STAT3、p-STAT3的表達水平顯著下降。p-STAT3/STAT3的比值顯著降低,細胞周期阻滯于G1期,細胞凋亡比例顯著上升,提示lncRNA SNHG3表達下調(diào),可能與抑制STAT3的表達和STAT3的磷酸化水平有關(guān),進而抑制了BGC-823細胞增殖,誘導(dǎo)了凋亡。MMP-2是MMPs家族中的重要一員,其能夠降解細胞基底膜及細胞外基質(zhì)成分Ⅳ型膠原,從而促進腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移。研究發(fā)現(xiàn),STAT3可通過MMP-2啟動子上的結(jié)合位點,上調(diào)MMP-2基因表達水平,進而顯著提高胃癌細胞的轉(zhuǎn)移能力[20]。阻斷STAT3能明顯下調(diào)MMP-2蛋白的表達水平,抑制腫瘤細胞的生長和侵襲。本研究中,在下調(diào)lncRNA SNHG3表達后,STAT3、p-STAT3、MMP2 的表達水平均顯著下降,BGC-823細胞遷移及侵襲能力均顯著降低,提示可能與抑制MMP-2的表達從而抑制了BGC-823細胞的侵襲有關(guān)。這在一定程度上解釋了下調(diào)lncRNA SNHG3后細胞增殖、克隆、Transwell侵襲實驗和細胞凋亡實驗的結(jié)果,抑制lncRNA SNHG3基因有望應(yīng)用于胃癌的靶向治療。
綜上所述,本研究從細胞水平證實了lncRNA SNHG3在胃癌細胞中高表達,同時其是胃癌細胞增殖、抗凋亡、侵襲以及轉(zhuǎn)移的必要因素,對其進行干擾可以有效破壞胃癌細胞的這些生物學(xué)行為,這可能與抑制STAT3、MMP-2的表達和STAT3的磷酸化水平有關(guān)。下調(diào)lncRNA SNHG3 表達后,調(diào)控 STAT3、p-STAT3、MMP-2 表達水平的具體分子機制尚待進一步研究。