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        Ang-2表觀遺傳學(xué)修飾在壓力介導(dǎo)的椎間盤退變中的作用機(jī)制研究*

        2020-12-21 10:53:06周鵑王志偉馮晶夏平趙曉龍汪朋李艷麗陳永杰
        生物骨科材料與臨床研究 2020年6期
        關(guān)鍵詞:胞外基質(zhì)培養(yǎng)箱表觀

        周鵑#王志偉#馮晶*夏平趙曉龍汪朋李艷麗陳永杰

        椎間盤退變(intervertebral disc degeneration,IDD)引起的下腰痛在現(xiàn)代社會(huì)中非常普遍,造成了嚴(yán)重的社會(huì)負(fù)擔(dān)和患者生活質(zhì)量的下降。研究表明,髓核是椎間盤行使功能的中心和最早發(fā)生退變的部位,髓核細(xì)胞退變及其導(dǎo)致的細(xì)胞外基質(zhì)成分改變是椎間盤退變?cè)缙谧钪匾牟±硖卣鱗1]。遺傳、年齡、體重、過度壓力、炎癥刺激等是椎間盤退變的主要病因[2]。在過度壓力條件下,髓核細(xì)胞外基質(zhì)合成代謝減少,分解代謝增加,從而導(dǎo)致椎間盤退變[3]。近年來,研究表明壓力因素通過表觀遺傳學(xué)修飾的途徑影響著IDD的發(fā)生,但其如何調(diào)控椎間盤退變的機(jī)制卻鮮有報(bào)道[4]。表觀遺傳學(xué)修飾是指細(xì)胞DNA序列未發(fā)生改變,但基因的功能發(fā)生可逆、可遺傳的改變[5-6]。本研究探討表觀遺傳修飾改變對(duì)過度壓力介導(dǎo)的IDD進(jìn)程的影響,為IDD的臨床治療和疾病預(yù)防提供思路和理論實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 獲取正常與退變椎間盤標(biāo)本

        對(duì)武漢市中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院2018年1月至2019年6月采用脊柱外科手術(shù)的患者術(shù)前進(jìn)行椎間盤退變進(jìn)行Pfirrmann分級(jí),并在手術(shù)中收集了4例脊柱側(cè)彎患者正常的髓核組織及4例腰椎間盤突出癥患者退變的髓核組織。所有標(biāo)本均在離體30 min內(nèi)提取髓核細(xì)胞。該研究已獲本院臨床倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號(hào):[2017]9),所有患者知情同意并簽署臨床研究知情同意書。

        1.2 主要藥品與試劑

        實(shí)驗(yàn)中使用的5-氮雜胞苷(Selleck公司,上海),Angiopoietin 2抗體、兔多克隆抗體Tie-2以及Aggrecan抗體(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司,武漢),兔多克隆抗體CollagenⅡ抗體和SOX-9抗體(Abcam公司,英國(guó)),兔多克隆抗GAPDH(杭州賢至生物有限公司,杭州),正常山羊血清和熒光(Cy3)標(biāo)記羊抗兔IgG(博士德生物工程有限公司,武漢),細(xì)胞培養(yǎng)基(Gibco公司,美國(guó))。

        1.3 髓核細(xì)胞的分離及培養(yǎng)

        獲取的髓核組織清洗,將髓核組織剪成小碎塊,用0.1%Ⅱ型膠原酶消化6~8 h,離心后收集沉淀、過濾,收集懸液后再次1 000 rpm×5 min離心。以含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng),置于含5%CO2的培養(yǎng)箱中,7 d后首次更換培養(yǎng)液,以后每周更換培養(yǎng)液2次。在倒置相差顯微鏡下觀察原代髓核細(xì)胞形態(tài),當(dāng)細(xì)胞融合90%時(shí)傳代培養(yǎng)。取P=1代進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)[7]。

        1.4 髓核細(xì)胞的分組處理

        此實(shí)驗(yàn)分為兩部分,第一部分分為4組:取生長(zhǎng)情況良好的正常髓核細(xì)胞分為兩組,將兩組細(xì)胞放入適宜溫度和CO2濃度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,后將第1組細(xì)胞放入壓力設(shè)置為0 MPa的培養(yǎng)箱中(正??瞻捉M),第2組細(xì)胞放入壓力為1 MPa、其余條件相同的培養(yǎng)箱中(正常壓力組);同樣的方法選取退變的髓核細(xì)胞分為兩組:第3組為0 MPa壓力環(huán)境(退變空白組),第4組為1 MPa壓力環(huán)境(退變壓力組),兩組其余培養(yǎng)條件都相同。24 h后對(duì)4組髓核細(xì)胞分別進(jìn)行RT-PCR、Western Blot和細(xì)胞活力等檢測(cè)。第二部分分為3組:取生長(zhǎng)情況良好的正常髓核細(xì)胞分為3組,將3組放入適宜溫度和CO2濃度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。后將第1組細(xì)胞放入壓力為0 MPa的培養(yǎng)箱中(空白組);第2組細(xì)胞放入壓力為1 MPa、其余條件相同的培養(yǎng)箱中(壓力組);第3組細(xì)胞放入壓力為1 MPa、其余條件相同的培養(yǎng)箱中,加入10 mol/L濃度5-氮雜胞苷處理(5-氮雜胞苷組)。24 h后,再次進(jìn)行上述相關(guān)檢測(cè)。具體流程見圖1。

        圖1 Ang-2表觀遺傳學(xué)修飾在壓力介導(dǎo)的椎間盤退變中的作用機(jī)制

        1.5 RT-PCR

        用Trizol試劑(Ambion)分解髓核細(xì)胞后分離提取總RNA,計(jì)算RNA濃度,隨后用DL2000 DNA Marker(TIANGEN)將提取的RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,最后用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)4組細(xì)胞中Ang-2、Tie-2、Aggrecan、CollagenⅡ和SOX-9表達(dá)量。繪制上述各靶基因轉(zhuǎn)錄RNA的溶解曲線圖,以2-△△Ct進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,各引物序列表見表1。

        表1 引物序列表

        1.6 Western Blot檢測(cè)

        獲取各組髓核細(xì)胞的總蛋白后測(cè)定其濃度,然后將提取的蛋白放入100℃沸水浴中變性。制備好電泳膠,取40 g蛋白,進(jìn)行電泳分離。1 h后將蛋白轉(zhuǎn)膜、浸泡,在25℃室溫條件下?lián)u床封閉2 h。用封閉液稀釋相應(yīng)的一抗:GAPDH(1∶1 000);SOX-9(1∶1 000);Aggrecan(1∶600);Ang-2(1∶1000);CollagenII(1∶1000);Tie-2(1∶500),浸泡12h。洗膜后加入辣根過氧化物酶標(biāo)識(shí)的山羊抗兔的二抗,孵育2 h后暗室曝光,最后采用BandScan法分析膠片灰度值。

        1.7 免疫熒光實(shí)驗(yàn)

        將各組髓核細(xì)胞爬片良好的玻片用PBS浸泡清洗,收集髓核細(xì)胞。用4%的多聚甲醛固定爬片。0.5%Triton X-100(PBS配制)(碧云天,上海)室溫通透。加入正常血清后封閉,吸掉封閉液后滴加一抗Collagen II(1∶50稀釋)、Aggrecan(1∶50稀釋),放入濕盒,4℃孵育過夜。爬片使用PBS溶液浸洗后加入熒光二抗熒光(Cy3)標(biāo)記羊抗兔IgG(1∶100稀釋比例),在37℃溫度條件下的濕盒中孵育1 h。加入40,6-二氨基-2-苯基吲哚DAPI(碧云天,中國(guó)上海)避光孵育,對(duì)髓核細(xì)胞進(jìn)行染核,染核后封片,最后通過熒光顯微鏡來收集細(xì)胞圖像。

        1.8 MTT法檢測(cè)

        取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的細(xì)胞,培養(yǎng)置DMEM/F12培養(yǎng)基(Gibco公司,美國(guó))中,當(dāng)達(dá)到1×105/mL密度后以100 L/孔的密度將混液加入96孔培養(yǎng)板中,在含有細(xì)胞孔附近的孔中滴入等量的PBS溶液,放入36℃過夜,當(dāng)達(dá)到培養(yǎng)所需時(shí)間后,每孔滴入10 L MTT(BIOSHARP,武漢),37℃溫度條件下培養(yǎng)3~4 h。采用酶標(biāo)儀568 nm檢測(cè)各個(gè)培養(yǎng)孔的吸光值。

        1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        所有數(shù)據(jù)都采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差的形式表示。本研究使用Graphpad Prism8.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。本研究采用單因素方差分析和兩兩比較分析方法<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 壓力刺激對(duì)髓核細(xì)胞Ang-2/Tie-2信號(hào)通路及細(xì)胞外基質(zhì)的影響

        筆者分別將正常和退變兩種髓核細(xì)胞中的各1組放置于1 MPa壓力的環(huán)境中,培育24 h后,分別檢測(cè)4組髓核細(xì)胞中Ang-2的表達(dá)情況。結(jié)果表明,壓力刺激使髓核細(xì)胞中Ang-2的表達(dá)增加,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(<0.05)(見圖2A、圖2F)。另外用RT-PCR和WesternBlot檢測(cè)4組細(xì)胞中Tie-2、CollagenⅡ、SOX-9和Aggrecan的轉(zhuǎn)錄和翻譯。結(jié)果表明,壓力刺激的髓核細(xì)胞中Tie-2的轉(zhuǎn)錄和翻譯明顯增加(見圖2B、圖2G),CollagenⅡ、SOX-9和Aggrecan的轉(zhuǎn)錄和翻譯明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(見圖2C-E、圖2H-J)。隨后對(duì)上述4組細(xì)胞中的CollagenⅡ和Aggrecan進(jìn)行免疫熒光檢測(cè),結(jié)果表明壓力刺激抑制兩者的表達(dá)(見圖2K、圖2L)。

        2.2 DNA甲基化抑制劑對(duì)Ang-2/Tie-2信號(hào)通路的影響

        將空白組、壓力組及5-氮雜胞苷組3組髓核細(xì)胞的RNA和蛋白質(zhì)進(jìn)行RT-PCR和Western Blot檢測(cè)。結(jié)果表明,DNA甲基化抑制劑減少了壓力誘導(dǎo)的髓核細(xì)胞中Ang-2和Tie-2的轉(zhuǎn)錄和翻譯,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(<0.05,見圖3)。

        2.3 DNA甲基化抑制劑對(duì)髓核細(xì)胞活力及細(xì)胞外基質(zhì)的影響

        用MTT法檢測(cè)上述3組髓核細(xì)胞的活力及免疫熒光法測(cè)定CollagenⅡ、Aggrecan的表達(dá)情況。結(jié)果表明,壓力的刺激使髓核細(xì)胞活力下降,細(xì)胞外基質(zhì)(CollagenⅡ、Aggrecan)表達(dá)量減少;而DNA甲基化抑制劑可提高髓核細(xì)胞的活力及抑制壓力誘導(dǎo)的細(xì)胞外基質(zhì)表達(dá)減少,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(<0.05,見圖4)。

        圖2 A-E.4組細(xì)胞Ang-2、Tie-2、CollagenⅡ、SOX-9、Aggrecan mRNA相對(duì)表達(dá)量;F-J.4組細(xì)胞Ang-2、Tie-2、CollagenⅡ、SOX-9、Aggrecan蛋白的Western Blot蛋白條帶圖及蛋白印跡灰度值與內(nèi)參蛋白GAPDH的比值;K.4組細(xì)胞CollagenⅡ表達(dá)熒光圖及相對(duì)熒光強(qiáng)度柱狀圖;L.4組細(xì)胞Aggrecan表達(dá)熒光圖及相對(duì)熒光強(qiáng)度柱狀圖

        圖3 A.3組細(xì)胞Ang-2 mRNA相對(duì)表達(dá)量;B.3組細(xì)胞Tie-2 mRNA相對(duì)表達(dá)量;C.3組細(xì)胞Ang-2蛋白的Western Blot蛋白條帶圖及蛋白印跡灰度值與內(nèi)參蛋白GAPDH的比值;D.3組細(xì)胞Tie-2蛋白的Western Blot蛋白條帶圖及蛋白印跡灰度值與內(nèi)參蛋白GAPDH的比值

        圖4 A.3組細(xì)胞CollagenⅡ表達(dá)熒光圖及相對(duì)熒光強(qiáng)度柱狀圖;B.3組細(xì)胞Aggrecan表達(dá)熒光圖及相對(duì)熒光強(qiáng)度柱狀圖;C.3組細(xì)胞OD值

        3 討論

        椎間盤退變(IDD)是一種以髓核細(xì)胞發(fā)生退變表型和細(xì)胞外基質(zhì)降解為特征的退行性疾病。IDD的病因主要包括過度壓力、心血管疾病、感染等一系列環(huán)境和基因因素[8]。研究發(fā)現(xiàn),適度壓力對(duì)椎間盤具有保護(hù)作用,但是過度壓力則會(huì)使髓核細(xì)胞數(shù)量和細(xì)胞外基質(zhì)基因表達(dá)減少,進(jìn)而加劇椎間盤細(xì)胞死亡[9]。本研究結(jié)果表明,壓力刺激調(diào)控髓核細(xì)胞外基質(zhì)相關(guān)靶基因(CollagenⅡ、SOX-9和Aggrecan)的表達(dá),抑制髓核細(xì)胞活性。因此,過度壓力在IDD發(fā)展過程中扮演重要角色,延緩過度壓力對(duì)髓核細(xì)胞的影響在IDD的防治中具有重要意義。

        Ang-2是一種作用于血管內(nèi)皮細(xì)胞的分泌型細(xì)胞調(diào)節(jié)因子,能識(shí)別并抑制其特異性酪氨酸激酶受體(Tie-2)激活,在血管發(fā)育、重構(gòu)過程起重要作用[10-11]。前期研究表明,退變髓核細(xì)胞中Ang-2表達(dá)和釋放增加,通過介導(dǎo)髓核細(xì)胞凋亡和細(xì)胞外基質(zhì)降解推動(dòng)IDD進(jìn)程[12-13]。然而,調(diào)控Ang-2表達(dá)的因素,以及減少Ang-2的表達(dá)對(duì)過度壓力導(dǎo)致的IDD的影響需進(jìn)一步研究。

        表觀遺傳學(xué)調(diào)控是指不改變基因的核苷酸序列的前提下使基因功能發(fā)生改變,對(duì)個(gè)體的生長(zhǎng)發(fā)育疾病等過程產(chǎn)生影響[5-6]。DNA甲基化抑制劑通過影響環(huán)境因素,從而在不損害基因組完整性的前提下,對(duì)基因組信息作出適當(dāng)修飾,以適應(yīng)環(huán)境變化[14]。已有學(xué)者研究表明,基因啟動(dòng)子區(qū)甲基化狀態(tài)改變可以顯著影響Ang-2基因表達(dá)程度,在一系列惡性腫瘤和退行性疾病的發(fā)生發(fā)展中起著十分重要的作用,甚至能成為疾病程度和預(yù)后的判斷指標(biāo)[15]。然而,Ang-2表觀遺傳修飾狀態(tài)的改變?cè)贗DD進(jìn)程中的作用仍未見報(bào)道。本研究結(jié)果首次表明壓力刺激明顯增加了Ang-2和Tie-2的表達(dá),然而DNA甲基化抑制劑通過抑制Ang-2、Tie-2的表達(dá)延緩壓力誘導(dǎo)的CollagenⅡ、Aggrecan減少及髓核細(xì)胞活性下降。因此,以過度壓力為特征的髓核細(xì)胞外環(huán)境發(fā)生改變,導(dǎo)致了Ang-2基因表觀遺傳修飾狀態(tài)改變,進(jìn)而發(fā)生過度表達(dá),Ang-2/Tie-2信號(hào)通路過度激活使髓核細(xì)胞的活力降低以及細(xì)胞外基質(zhì)的降解,最終導(dǎo)致IDD。本實(shí)驗(yàn)在前人研究基礎(chǔ)上首次探討調(diào)控Ang-2表觀遺傳修飾對(duì)IDD進(jìn)程的影響,可為IDD的臨床治療和疾病預(yù)防提供新的思路及理論實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

        本實(shí)驗(yàn)研究只是初步探討了DNA甲基化抑制劑對(duì)Ang-2/Tie-2信號(hào)通路的影響,未進(jìn)行靶向干預(yù)研究。后續(xù)實(shí)驗(yàn)可靶向調(diào)控Ang-2/Tie-2信號(hào)通路,進(jìn)一步研究表觀遺傳修飾對(duì)壓力誘導(dǎo)椎間盤退變的影響。

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