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        川芎嗪對膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎大鼠細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶通路的影響

        2020-11-27 10:36:28梁錦峰劉文華鄧少杰
        關(guān)鍵詞:血清模型

        梁錦峰,劉文華,鄢 宏,鄧少杰

        (1. 深圳市寶安區(qū)人民醫(yī)院骨科中心,深圳 518100;2. 深圳市第二人民醫(yī)院骨關(guān)節(jié)外科,深圳518000)

        類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種自身免疫性骨關(guān)節(jié)炎,主要病理改變?yōu)殛P(guān)節(jié)滑膜腔炎性浸潤以及患者運(yùn)動功能受損,臨床癥狀表現(xiàn)為關(guān)節(jié)腫痛、關(guān)節(jié)畸形和行動不便。目前,臨床上治療RA的主要方向是減輕患者關(guān)節(jié)炎癥、改善患者骨侵蝕程度,這需要通過抑制滑膜細(xì)胞增殖、血管翳形成而實(shí)現(xiàn)[1]。RA發(fā)病機(jī)制尚未完全明確,但已有研究[2]證實(shí)一些炎性因子如白細(xì)胞介素1β(IL-1β)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)等在RA發(fā)病過程中發(fā)揮重要作用。細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinase,ERK)作為參與細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的重要通路之一,具有促進(jìn)細(xì)胞增殖分化以及參與機(jī)體炎性反應(yīng)功能。研究[3]證實(shí),ERK通路也參與了RA的發(fā)生和發(fā)展過程,RA的關(guān)節(jié)炎性浸潤病理改變與ERK通路存在緊密聯(lián)系,因此ERK通路在RA中的作用逐漸引起高度重視。川芎嗪(tetramethylpyrazine)是目前臨床中醫(yī)治療RA的一種常用藥物,臨床試驗(yàn)證實(shí)其具有抗炎、消腫和鎮(zhèn)痛之功效,可以有效緩解RA患者關(guān)節(jié)炎臨床癥狀。同時(shí)川芎嗪還具有抑制血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖和新生血管生成的作用[4],但川芎嗪治療RA是否通過干預(yù)ERK通路起效仍需要進(jìn)一步研究證實(shí)。本研究通過建立膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎大鼠模型,觀察川芎嗪對關(guān)節(jié)炎模型大鼠病理學(xué)變化和體內(nèi)炎性因子水平的影響,探討和分析川芎嗪治療RA的起效機(jī)制以及對ERK通路的影響。

        1 材料與方法

        1.1 動物、試劑及儀器

        30只SPF級雄性SD大鼠,(10.23±2.15)周齡,體質(zhì)量300~350 g,購自深圳康泰生物制品股份有限公司[SCXK(粵)2018-0193]。動物飼養(yǎng)于康美華大基因技術(shù)有限公司[SYXK(粵)2019-0 2 0 5],動物實(shí)驗(yàn)倫理審批文號:醫(yī)科倫審-2018017。TNF-α、血管生成素1(Ang-1)、IL-1β和血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)抗體試劑盒均購自上海酶聯(lián)生物科技有限公司;磷酸川芎嗪片購自廣州康和藥業(yè)有限公司(規(guī)格50 mg,國藥準(zhǔn)字H 4 4 0 2 4 2 7 2);酶聯(lián)免疫吸附測定(E LI S A)試劑盒購自北京索萊寶科技有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒和總RNA提取試劑盒購自美國賽默飛公司。

        熒光定量PCR儀(型號 ABI 7500,美國賽默飛公司);高速冷凍離心機(jī)(型號Mikro220R,德國Hettich公司);電泳儀和電泳槽(型號分別為DYCZ、DYCP,中國北京六一儀器廠);分光光度計(jì)(型號UV-2000, 美國安捷倫科技公司);酶標(biāo)儀(型號E L3 0,美國B i o-T e k公司);ELISA分析軟件(ReaderFit,中國杭州艾米綠公司);96孔酶標(biāo)板(美國Costar公司)。

        1.2 方法

        將30只大鼠隨機(jī)分為對照組、模型組和川芎嗪組,每組各10只,采用文獻(xiàn)報(bào)道的膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎造模方法[5-6]:將20 mg雞Ⅱ型膠原充分溶解于10 mL濃度為0.1 mol/L的乙酸中,得到質(zhì)量濃度為2 g/L的雞Ⅱ型膠原,然后將等體積弗氏完全佐劑與該溶液混合并乳化完全得到乳化劑。造模成功后,川芎嗪組每日給予川芎嗪(0.1 g/kg)(其中磷酸川芎嗪片使用適量生理鹽水溶解,配制成灌胃混懸液),連續(xù)灌胃給藥28 d;模型組、正常組給予相同體積生理鹽水。每周測量3組大鼠后足體積變化情況,采取HE染色法觀察各組大鼠炎性細(xì)胞浸潤情況,采用ELISA法測定各組大鼠滑膜組織及血清中TNF-α、Ang-1、IL-1β、VEGF水平,另外采用蛋白質(zhì)印跡法檢測各組大鼠ERK1/2蛋白及磷酸化ERK1/2(p-ERK1/2)蛋白的表達(dá)水平。

        1.3 觀察指標(biāo)及評價(jià)標(biāo)準(zhǔn)

        1.3.1 各組大鼠關(guān)節(jié)腫脹度測定及比較 造模成功后,使用記號筆在大鼠足部踝骨關(guān)節(jié)突出位置作標(biāo)記,每周使用排水法[7]測量并記錄各組大鼠后足的體積大小,每只大鼠每次測定3次,取平均值。

        1.3.2 各組大鼠組織病理學(xué)變化比較 于實(shí)驗(yàn)28 d脊椎脫臼法處死大鼠后,使用體積分?jǐn)?shù)10%的多聚甲醛溶液浸泡大鼠雙后肢膝關(guān)節(jié)1 d,然后使用體積分?jǐn)?shù)5%的硝酸溶液浸泡膝關(guān)節(jié)組織2周,浸泡至組織脫鈣完全且能夠順暢切斷骨質(zhì)后,重新使用體積分?jǐn)?shù)10%的多聚甲醛溶液浸泡,然后進(jìn)行石蠟包埋、切片以及HE染色。

        1.3.3 各組大鼠滑膜組織及血清中炎性因子水平測定 于實(shí)驗(yàn)28 d脊椎脫臼法處死大鼠前采集大鼠動脈血4 mL,離心后分離得到上層血清。另外,手術(shù)切取大鼠膝關(guān)節(jié)滑膜組織,用ELISA試劑盒檢測所有樣本中TNF-α、IL-1β、Ang-1以及VEGF水平。嚴(yán)格按試劑盒操作說明檢測,使用酶標(biāo)儀進(jìn)行樣品檢測。

        1.3.4 滑膜組織各炎性因子mRNA表達(dá)測定 分別取各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織,用總RNA提取試劑盒提取組織中總RNA,使用紫外分光光度計(jì)測定總RNA濃度,樣品吸光度比值A(chǔ)260/A280≥1.80視為合格。采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,分別得到模板單鏈cDNA,然后使用PCR試劑盒對cDNA進(jìn)行PCR。 PCR反應(yīng)條件為95 ℃30 s,退火60 ℃ 40 s,延伸72 ℃ 30 s;連續(xù)循環(huán)30次。然后采用2-△△Ct計(jì)算血清mRNA相對表達(dá)量[8]。

        1.3.5 蛋白質(zhì)印跡法測定ERK1/2、p-ERK1/2蛋白表達(dá)水平 剪取各組小鼠滑膜組織并加入裂解緩沖液,當(dāng)組織得到充分勻漿后將其靜置一段時(shí)間,然后放入離心機(jī)以12 000 r/min離心20 min,取出上清液后采用BCA法對ERK1/2、p-ERK1/2蛋白進(jìn)行定量測定。使用10%SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳對蛋白樣品進(jìn)行分離后,將蛋白轉(zhuǎn)移到聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上,使用封閉液將樣品于室溫下封閉2 h。將膜轉(zhuǎn)入封閉液稀釋的一抗,4 ℃過夜后使用PBST沖洗液進(jìn)行洗滌,加二抗后繼續(xù)于室溫下孵育1 h,洗滌后采用電化學(xué)發(fā)光法檢測并進(jìn)行印跡成像。

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件分析不同組別各項(xiàng)指標(biāo)間差異,多組間采用方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗(yàn)。P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 大鼠關(guān)節(jié)腫脹度

        從第2周開始,模型組大鼠后足開始發(fā)生明顯腫脹,后足體積顯著大于川芎嗪組和對照組(P<0.0 5)(表1)。

        2.2 大鼠關(guān)節(jié)組織病理學(xué)觀察

        對照組大鼠關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)完整且關(guān)節(jié)面光滑,關(guān)節(jié)間隙大小正常,未顯示存在炎性浸潤和滑膜組織增生,關(guān)節(jié)兩端未發(fā)生骨侵蝕(圖1A);模型組大鼠關(guān)節(jié)腔間隙比對照組顯著變大,且間隙中填充有滑膜增生組織,存在炎性浸潤和骨侵蝕現(xiàn)象,關(guān)節(jié)面和關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)被破壞(圖1B)。川芎嗪組大鼠關(guān)節(jié)病理切片情況相比模型組有明顯好轉(zhuǎn),關(guān)節(jié)面較清晰,關(guān)節(jié)間隙輕微增大,存在輕微炎性浸潤情況,但未發(fā)生明顯骨侵蝕,骨關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)比較完整(圖1 C)。

        2.3 大鼠血清和滑膜組織中炎性因子水平

        模型組和川芎嗪組大鼠血清和滑膜組織中炎性因子TNF-α、Ang-1、IL-1β表達(dá)水平比對照組大鼠均顯著升高(P<0.05),同時(shí)川芎嗪組大鼠血清和滑膜組織中各炎性因子水平比模型組均降低(P<0.05)。各組大鼠血清中均未檢測到VEGF,但模型組和川芎嗪組大鼠滑膜組織中VEGF水平均升高(P<0.05),且川芎嗪組明顯低于模型組(P<0.0 5)(表2)。

        2.4 大鼠滑膜組織各炎性因子mRNA表達(dá)

        與對照組相比,模型組和川芎嗪組大鼠滑膜組織中各炎性因子mRNA表達(dá)水平均顯著升高(P<0.05);川芎嗪組大鼠各炎性因子mRNA水平與模型組相比均顯著降低(P<0.05)(表3)。

        表 1 各組大鼠關(guān)節(jié)腫脹度測定Table 1 Results of joints welling test in rats (-x± s)

        圖 1 大鼠關(guān)節(jié)組織病理學(xué)觀察 (HE染色)Figure 1 Pathological observation on joint tissues in rats (HE staining)

        2.5 大鼠滑膜組織ERK1/2、p-ERK1/2蛋白表達(dá)

        與對照組比較,模型組和川芎嗪組大鼠滑膜組織p-ERK1/2蛋白表達(dá)水平均升高(P<0.05),但川芎嗪組表達(dá)水平低于模型組(P<0.05);模型組和川芎嗪組大鼠ERK1/2蛋白表達(dá)水平與對照組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)(表4)。

        表 2 大鼠滑膜組織和血清中炎性因子水平Table 2 The levels of inflammatory factor levels in synovial tissue and serum of rats (-x ± s)

        表 3 大鼠滑膜組織各炎性因子mRNA表達(dá)Table 3 The mRNA expressions of inflammatory factors in synovial tissues of rats (-x ± s)

        表 4 大鼠滑膜組織ERK1/2、p-ERK1/2蛋白表達(dá)水平Table 4 The expressions of ERK1/2 and p-ERK1/2 proteins in synovial tissues of rats (-x ± s)

        3 討論

        膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎大鼠模型是一種慢性免疫炎性動物模型,已被學(xué)術(shù)界認(rèn)可作為研究RA發(fā)病機(jī)制的理想動物模型[9]。ERK作為與細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和炎性反應(yīng)密切相關(guān)的信號通路,與RA的新生血管生成、細(xì)胞增殖分化、炎性浸潤以及蛋白酶表達(dá)等過程密切關(guān)聯(lián),在RA整個(gè)發(fā)生和發(fā)展過程中活躍度很高[10]。TNF-α、IL-1β是促炎性Th1細(xì)胞分泌的一些重要炎性因子,其中IL-1β屬于炎性始動因子,高IL-1β水平會刺激軟骨細(xì)胞過度合成膠原酶以及致炎致痛物質(zhì)前列腺素E2,同時(shí)促進(jìn)嗜中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞聚集于關(guān)節(jié)滑膜,從而產(chǎn)生關(guān)節(jié)滑膜炎性反應(yīng),導(dǎo)致軟骨基質(zhì)發(fā)生降解[11]。TNF-α不僅可以誘導(dǎo)炎性反應(yīng),還能促進(jìn)成纖維細(xì)胞增生,以及導(dǎo)致軟骨受損[12]。在RA患者體內(nèi)Thl和Th2細(xì)胞處于失衡狀態(tài),其中Th1細(xì)胞及其分泌的促炎細(xì)胞因子占據(jù)絕對優(yōu)勢。本研究發(fā)現(xiàn)RA模型大鼠血清中TNF-α、IL-1β等Th1促炎因子相比正常組大鼠明顯升高(P<0.05)。有研究表明,VEGF、基質(zhì)金屬蛋白酶等一些與血管新生相關(guān)的細(xì)胞因子在RA患者血清和關(guān)節(jié)滑膜組織中也呈現(xiàn)明顯高表達(dá),且與患者RA疾病嚴(yán)重程度存在顯著正相關(guān)性[13]。以上研究結(jié)果說明上述細(xì)胞因子共同參與了RA疾病的進(jìn)展,促進(jìn)新生血管生成、炎性浸潤以及骨侵蝕過程。

        川芎嗪是從中藥材川芎中提取出來的一種活性成分,其藥理作用如抗新生血管生成、抑制細(xì)胞分化增殖和抑制炎性反應(yīng)等均已得到充分證實(shí),且大量臨床研究和基礎(chǔ)研究證實(shí)川芎嗪可以緩解RA患者臨床癥狀[14]。本研究結(jié)果顯示,造模后第2周開始,模型組大鼠后足體積以及炎性因子TNF-α、Ang-1、IL-1β水平顯著大于或者高于對照組和川芎嗪組(P<0.05);且病理觀察顯示,模型組大鼠關(guān)節(jié)腔間隙存在炎性浸潤、滑膜增生組織和骨侵蝕現(xiàn)象,關(guān)節(jié)面和關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)被破壞,而川芎嗪組大鼠關(guān)節(jié)間隙炎性損傷程度明顯低于模型組大鼠,未發(fā)生明顯骨侵蝕,骨關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)相對較完整,表明川芎嗪可降低炎性反應(yīng),減輕后足炎性損傷。謝平金等[15]研究發(fā)現(xiàn),使用川芎嗪對模型大鼠進(jìn)行干預(yù)后,大鼠血清IL-1β、TNF-α表達(dá)水平相對于模型組顯著降低(P<0.05),證實(shí)川芎嗪在治療RA中發(fā)揮顯著抗炎作用。另外,本研究結(jié)果表明,模型組和川芎嗪組大鼠p-ERK1/2蛋白表達(dá)水平相比對照組均顯著升高(P<0.05),但川芎嗪組相比模型組顯著降低(P<0.05),說明模型大鼠中p-ERK1/2蛋白存在過度表達(dá),而川芎嗪可以通過抑制ERK信號通路促進(jìn)ERK1/2磷酸化即增加p-ERK1/2蛋白表達(dá)水平。李巍等[16]研究表明,川芎嗪可以通過抑制滑膜組織ERK通路活化,有效降低膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎模型動物血清和滑膜組織中IL-1β、TNF-α和IL-12 炎性因子表達(dá)水平(P<0.05),與本研究結(jié)果一致。王春亮等[17]研究發(fā)現(xiàn),IL-l和TNF-α可以快速激活成纖維樣滑膜細(xì)胞中ERK、c-JUN氨基末端蛋白激酶和P38激酶活性,激活后的ERK和P38又會進(jìn)一步誘導(dǎo)IL-l和TNF-α等細(xì)胞因子表達(dá),進(jìn)而導(dǎo)致RA的發(fā)生發(fā)展。白菁安等[18]報(bào)道,川芎嗪治療RA的起效機(jī)制可能與抑制ERK通路活化過程存在密切聯(lián)系。結(jié)合本次研究結(jié)果,筆者認(rèn)為川芎嗪治療RA的起效機(jī)制可能是由于川芎嗪顯著減少炎性因子分泌,抑制機(jī)體淋巴細(xì)胞增殖,從而抑制ERK通路,降低ERK相關(guān)蛋白表達(dá)水平,最終有效改善大鼠關(guān)節(jié)腫脹癥狀,緩解關(guān)節(jié)組織的病理情況。

        本研究采用的是經(jīng)典RA大鼠造模方法,已有大量文獻(xiàn)報(bào)道驗(yàn)證,故研究中僅對造模組血清和滑膜組織炎性反應(yīng)進(jìn)行評估,就可以判斷造模成功。同時(shí)考慮到本研究主要目的是觀察川芎嗪對炎性因子和ERK通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響,因此著重關(guān)注川芎嗪組與模型組和空白對照組的比較,未設(shè)置陽性藥對照組,后續(xù)可進(jìn)一步完善。

        綜上所述,川芎嗪可能通過有效抑制ERK通路,調(diào)節(jié)膠原誘導(dǎo)型關(guān)節(jié)炎大鼠血清和滑膜組織中TNF-α、IL-1β等炎性因子水平,緩解關(guān)節(jié)腫脹癥狀。

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