羅立宇，吳宏偉，趙海譽(yù)，高文遠(yuǎn)

基于在體單向腸灌流模型的紅車軸草異黃酮類成分滲透性研究

羅立宇1，吳宏偉2，趙海譽(yù)2，高文遠(yuǎn)1

1.天津大學(xué)藥物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，天津 300072；2.中國中醫(yī)科學(xué)院中藥研究所，北京 100700

研究紅車軸草水提物的異黃酮類腸吸收成分及其腸滲透性，探討其相應(yīng)機(jī)制。采用超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法（UPLC-MS/MS），建立紅車軸草水提物腸灌流液中異黃酮類成分大豆苷元、大豆苷、染料木苷、毛蕊異黃酮葡萄糖苷、芒柄花素、芒柄花苷的定量分析方法。基于大鼠在體單向腸灌流模型，研究紅車軸草水提物中6種異黃酮類成分在不同小腸段（十二指腸、空腸、回腸）的腸滲透性，并對(duì)不同濃度的芒柄花素、芒柄花苷單體成分腸滲透特征進(jìn)行研究。建立了紅車軸草水提物腸灌流液中6種異黃酮類成分的UPLC-MS/MS定量分析方法，符合方法學(xué)要求。紅車軸草水提物灌流液各成分的有效滲透系數(shù)（P）均大于5×10-5cm/s，最大者為芒柄花素（P＝3.20，十二指腸），其次為染料木苷（P＝2.19，空腸）；對(duì)于不同腸段，各成分P和吸收速率常數(shù)（Ka）均存在一定差異，大豆苷元、芒柄花素的十二指腸P最大，其余4種成分的空腸P最大，表明紅車軸草水提物中異黃酮的最佳吸收窗口為十二指腸和空腸；不同濃度芒柄花素、芒柄花苷單體灌流的P、Ka差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（＞0.05），吸收曲線近似線性，其吸收機(jī)制符合被動(dòng)擴(kuò)散的特征。本研究初步明確了紅車軸草水提物中異黃酮類成分的腸滲透性及吸收機(jī)制，可為質(zhì)控成分篩選、制劑開發(fā)及臨床合理用藥提供參考。

在體單向腸灌流；滲透性；紅車軸草；異黃酮；芒柄花素；芒柄花苷

紅車軸草為豆科車軸草屬植物紅車軸草L.的花序及帶花枝葉，廣泛分布于世界各地，我國各地均有栽培或野生。該植物主要含黃酮、異黃酮、香豆素、有機(jī)酸等化學(xué)成分[1]，其中異黃酮類成分為紅車軸草的主要藥效成分，如芒柄花素、毛蕊異黃酮葡萄糖苷、染料木苷等，該類成分具有雌激素樣作用[2-3]，可預(yù)防癌癥[4]、抗骨質(zhì)疏松[5]、改善女性圍絕經(jīng)期綜合征[6-7]等。

口服給藥是中藥臨床常用途徑，胃腸道吸收是影響口服藥生物利用度和變異性的重要因素，了解藥物的胃腸道吸收機(jī)制、吸收部位及腸滲透性，對(duì)于確定藥物的劑型、揭示中藥功效物質(zhì)基礎(chǔ)及其相互作用、指導(dǎo)臨床用藥具有重要意義[8]。目前，預(yù)測(cè)藥物小腸吸收的方法主要分為體外法、離體法、在體法3種[9]，其中在體單向腸灌流模型能夠維持血液供應(yīng)，較好地模擬體內(nèi)環(huán)境，不損傷研究部位的循環(huán)系統(tǒng)和生理環(huán)境，并可精確獲取不同腸段的吸收特征，與人體試驗(yàn)結(jié)果更具有一致性[10-11]。

目前關(guān)于紅車軸草中異黃酮類成分的研究主要集中在成分定性、定量及藥理活性，其腸吸收成分及吸收規(guī)律研究迄今尚未見報(bào)道。因此，本研究基于大鼠在體單灌流模型，首先采用超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法（UPLC-MS/MS）分析紅車軸草腸灌流液中主要有效成分，建立其中主要異黃酮類成分芒柄花素、大豆苷元、大豆苷、芒柄花苷、染料木苷、毛蕊異黃酮葡萄糖苷的定量分析方法，在此基礎(chǔ)上對(duì)紅車軸草水提物的腸吸收特征進(jìn)行研究，揭示其在不同小腸段（十二指腸、空腸、回腸）的滲透和吸收動(dòng)力學(xué)特征，并以芒柄花素、芒柄花苷為代表，對(duì)其吸收機(jī)制進(jìn)行探索，為辨識(shí)紅車軸草質(zhì)控成分、揭示紅車軸草異黃酮類有效成分在體內(nèi)的吸收機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

1 儀器、試藥與動(dòng)物

Acquity UPLC I-Class型超高效液相色譜儀，美國沃特世公司；Xevo TQ-S micro三重四級(jí)桿質(zhì)譜串聯(lián)（配備MassLynx數(shù)據(jù)采集軟件），美國沃特世公司；BSA2202S、BSA124S分析天平，德國賽多利斯公司；KQ5200E超聲波清洗器，昆山市超聲儀器有限公司；Sigma 1-15PK高速離心機(jī)，德國希格瑪公司；LSP02-1B注射泵，保定蘭格恒流泵有限公司；Milli-Q超純水制備系統(tǒng)，美國密理博公司。

紅車軸草采自陜西省寧強(qiáng)漢源鎮(zhèn)，經(jīng)北京中醫(yī)藥大學(xué)王晶娟副教授鑒定為豆科車軸草屬植物紅車軸草L.的花序及帶花枝葉；對(duì)照品芒柄花素（上海詩丹德標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)服務(wù)有限公司，純度＞98%，批號(hào)1559/15005）、大豆苷元（四川省維克奇生物科技有限公司，純度＞98%，批號(hào)110794）、大豆苷（成都曼斯特生物科技有限公司，純度＞98%，批號(hào)MUST-11121201）、芒柄花苷（成都普菲德生物技術(shù)有限公司，純度＞98%，批號(hào)130507）、染料木苷（上海源葉生物科技有限公司，純度＞98%，批號(hào)P09M8F31018）、毛蕊異黃酮葡萄糖苷（成都普菲德生物技術(shù)有限公司，純度＞98%，批號(hào)140326）、金絲桃苷（上海源葉生物科技有限公司，純度＞98%，批號(hào)Y04A9X62302），芒柄花素、芒柄花苷原料藥（南京普怡生物科技有限公司，純度＞98%，批號(hào)140189、141112）；質(zhì)譜級(jí)乙腈、甲酸，美國飛世爾科學(xué)世界公司；分析級(jí)磷酸、氯化鎂、氯化鈉、磷酸二氫鈉、氯化鉀、氯化鈣、碳酸氫鈉、葡萄糖，北京化工廠。

SD大鼠，雄性，體質(zhì)量250～280 g，斯貝福（北京）實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科技有限公司提供，動(dòng)物許可證號(hào)SCXK（京）2019-0010。飼養(yǎng)于SPF級(jí)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室，環(huán)境溫度（23±2）℃，濕度（55±10）%，12 h/12 h光照黑暗循環(huán)，自由攝食飲水。

2 方法與結(jié)果

2.1 溶液制備

2.1.1 對(duì)照品溶液

精密稱取各對(duì)照品適量，置于50 mL容量瓶中，加甲醇溶解并稀釋至刻度，搖勻，得單一成分對(duì)照品貯備液。精密量取各單一成分對(duì)照品貯備液適量于同一50 mL容量瓶中，加甲醇稀釋至刻度，搖勻，得濃度約為15 μg/mL的混合對(duì)照品貯備液，取混合對(duì)照品貯備液繼續(xù)稀釋，得系列不同濃度的混合對(duì)照品溶液，用于分析方法的建立。

2.1.2 Krebs-Ringer’s溶液

分別稱取葡萄糖1.4 g、氯化鈣0.37 g，分別單獨(dú)溶解。稱取氯化鎂0.02 g、磷酸二氫鈉0.32 g、氯化鉀0.35 g、碳酸氫鈉1.37 g、氯化鈉7.8 g，加水溶解，緩慢加入葡萄糖溶液和氯化鈣溶液，加水稀釋并定容至1000 mL，即得Krebs-Ringer’s溶液（K-R溶液）。

2.1.3 酚紅溶液

取酚紅20 mg，精密稱定，溶于1 L K-R溶液中，混勻，即得濃度20 μg/mL的酚紅貯備液。精密移取酚紅貯備液適量至量瓶中，以K-R溶液稀釋成酚紅濃度分別為5～20 μg/mL的系列溶液，以吸光度對(duì)酚紅濃度進(jìn)行線性回歸，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。精密移取灌流液0.5 mL，置10 mL試管中定容，搖勻，0.45 μm微孔濾膜過濾，取續(xù)濾液，用紫外-可見分光光度計(jì)在波長555 nm處測(cè)定吸光度，以標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算酚紅含量，用于藥物濃度校正。

2.1.4 紅車軸草水提物及單體成分灌流液

稱取100 g紅車軸草，剪斷，加適量水浸泡30 min，加熱煎煮45 min，紗布過濾，得濾液，藥渣繼續(xù)加水煎煮45 min，過濾，合并2次濾液，加熱濃縮為含原藥材1 g/mL的紅車軸草水提液。精密移取紅車軸草水提液2 mL于50 mL容量瓶中，用酚紅貯備液定容，即得腸灌流實(shí)驗(yàn)所用紅車軸草水提物灌流液。

分別稱取適量芒柄花素、芒柄花苷對(duì)照品，加甲醇溶解，配制成所需濃度貯備液，4 ℃貯存。取單體成分貯備液1 mL，用酚紅貯備液稀釋至不同濃度，即得單體成分腸灌流液。

取SD大鼠，禁食不禁水12～18 h，腹腔注射10%水合氯醛麻醉。沿腹中線打開腹腔，選取所需3個(gè)腸段：自幽門下2 cm處向下10 cm為十二指腸段，自幽門下15 cm處向下10 cm 為空腸段，自盲腸上端2 cm處向上10 cm為回腸段。于腸段兩端切口，用37 ℃生理鹽水沖洗至無內(nèi)容物流出，再用空氣將生理鹽水排空，插管并結(jié)扎，接恒流泵。注射泵與腸段入口端相連，設(shè)置灌流速度為0.2 mL/min，用腸灌流液（預(yù)熱至37 ℃）持續(xù)灌流約30 min吸收達(dá)到穩(wěn)定后重新計(jì)時(shí)，每隔15 min用已知質(zhì)量的EP管在腸段出口端收集流出灌流液[12-13]。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后剪下被灌流的腸段并處死大鼠，測(cè)量腸段長度及內(nèi)徑，計(jì)算EP管內(nèi)灌流液的質(zhì)量。所得灌流液經(jīng)處理后，分別測(cè)定各時(shí)間點(diǎn)樣品中指標(biāo)成分含量及相應(yīng)的酚紅濃度。

2.2 分析方法的建立

2.2.1 色譜條件

采用ACQUITY UPLC BEH Shield RP18色譜柱（2.1 mm×100 mm，1.7 μm），流速0.3 mL/min，柱溫40 ℃，流動(dòng)相A為0.1%甲酸水、B為乙腈，進(jìn)樣量2 μL。梯度洗脫程序：0～1.0 min，90%～80%A；1～5.5 min，80%～60%A；5.5～6 min，60%～20%A；6～8 min，20%～5%A；8～8.5 min，5%A；8.5～9 min，5%～90%A；9～10 min，90%～90%A。

2.2.2 質(zhì)譜條件

采用電噴霧離子源（ESI），正、負(fù)離子掃描，多反應(yīng)監(jiān)測(cè)（MRM）方式。毛細(xì)管電壓0.5 kV，脫溶劑氣流N2，流速1000 L/h，脫溶劑溫度500 ℃，離子源溫度150 ℃。定性、定量離子對(duì)及碰撞能量等質(zhì)譜參數(shù)見表1。

表1 6種化合物質(zhì)譜參數(shù)

化合物 名稱ESI 模式保留時(shí)間/min母離子（m/z）定量離子（m/z）錐孔電壓/V碰撞能量/eV 大豆苷+2.42417.08255.034812 染料木苷+3.30433.07271.092416 芒柄花苷+3.78431.09269.125014 大豆苷元+5.18255.06 91.018234 芒柄花素-6.72267.04251.995816 毛蕊異黃酮 葡萄糖苷+2.55447.09285.115216

2.2.3 供試品溶液制備

取大鼠腸灌流液，加甲醇稀釋10倍，用0.22 μm微孔濾膜過濾，進(jìn)行UPLC-MS/MS分析。

2.2.4 測(cè)定法

分別取空白灌流液、混合對(duì)照品溶液（50 ng/mL）及供試品溶液，按上述方法進(jìn)行UPLC-MS/MS分析，結(jié)果見圖1。在上述色譜及質(zhì)譜條件下，紅車軸草灌流液中6種目標(biāo)成分能實(shí)現(xiàn)良好分離，并具有較好的響應(yīng)值，且無其他成分干擾目標(biāo)成分的檢測(cè)。

2.2.5 方法學(xué)考察

2.2.5.1 線性關(guān)系與定量限

取“2.1.1”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液，用甲醇稀釋為濃度1～300 ng/mL的系列對(duì)照品溶液（＝6），進(jìn)行UPLC-MS/MS分析，以各自定量離子的峰面積為縱坐標(biāo)、對(duì)照品濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，得各成分線性方程和相關(guān)系數(shù)。結(jié)果表明，各成分在測(cè)定范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品混合溶液，逐級(jí)稀釋并測(cè)定，至信噪比（S/N）＝10，得定量限。結(jié)果表明各成分的定量限符合測(cè)定要求，方法靈敏度良好。

注：DDG.大豆苷；MRYHTPTTG.毛蕊異黃酮葡萄糖苷；RLMG.染料木苷；MBHG.芒柄花苷；DDGY.大豆苷元；MBHS.芒柄花素

2.2.5.2 精密度試驗(yàn)

取“2.1.1”項(xiàng)下混合對(duì)照品貯備液適量，加甲醇稀釋至濃度50 ng/mL的混合對(duì)照品溶液，連續(xù)進(jìn)樣6次，記錄峰面積并計(jì)算RSD。結(jié)果各成分RSD均小于3%，表明儀器精密度良好。

2.2.5.3 重復(fù)性試驗(yàn)

取“2.1.4”項(xiàng)下同一灌流液，按“2.2.3”項(xiàng)下方法平行制備6份供試品溶液，進(jìn)行UPLC-MS/MS分析，記錄峰面積并計(jì)算RSD。結(jié)果各成分RSD均小于3%，表明方法重復(fù)性良好。

2.2.5.4 穩(wěn)定性試驗(yàn)

取“2.1.4”項(xiàng)下同一灌流液，按“2.2.3”項(xiàng)下方法制備，分別于0、2、4、10、20、24 h進(jìn)行UPLC-MS/MS分析，記錄峰面積并計(jì)算RSD。結(jié)果各成分峰面積RSD為1.2%～3.9%，表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定。

2.2.5.5 加樣回收率試驗(yàn)

取目標(biāo)成分濃度已知的紅車軸草灌流液，按低（50%）、中（100%）、高（200%）濃度分別加入對(duì)照品，各濃度平行制備3份，進(jìn)行UPLC-MS/MS分析，記錄峰面積并計(jì)算加樣回收率。結(jié)果表明各成分的回收率良好，RSD均小于5%，方法的準(zhǔn)確度符合要求。

2.2.5.6 方法學(xué)考察結(jié)果

紅車軸草灌流液中6種方法學(xué)考察結(jié)果見表2。

表2 紅車軸草灌流液中6種成分方法學(xué)考察結(jié)果

化合物線性范圍/ （ng/mL）相關(guān)系數(shù) （R2）定量限/ （ng/mL）精密度 RSD/%重復(fù)性 RSD/%穩(wěn)定性 RSD/%平均回收率/% 低濃度中濃度高濃度 大豆苷1.45～2890.999 50.0142.22.53.7 96.5105.2 97.8 毛蕊異黃酮葡萄糖苷1.28～2550.999 90.0131.32.81.5 96.6103.5103.5 染料木苷1.20～2390.999 70.2402.02.83.9 97.8101.4 97.3 芒柄花苷1.66～1660.999 80.0171.21.52.3100.4104.1 97.6 大豆苷元1.51～1510.999 20.3002.10.53.7103.7104.1100.9 芒柄花素1.17～2330.999 70.5002.61.21.2102.5 95.4 97.5

2.3 腸滲透性分析

按“2.1.4”項(xiàng)下方法，收集不同腸段、不同時(shí)間點(diǎn)的腸灌流液，按上述方法進(jìn)行檢測(cè)，計(jì)算主要成分濃度；并測(cè)量相應(yīng)腸段長度、內(nèi)徑及灌流液質(zhì)量，按以下公式計(jì)算有效滲透系數(shù)（P）和吸收速率常數(shù)（Ka）[13]。

式中，Q為灌流液流速（mL/min）；C為灌流液未經(jīng)腸吸收時(shí)各成分的濃度（μg/mL）；C為灌流收集液中各成分濃度（μg/mL）；C（cor）為校正后的灌流收集液中各成分濃度（μg/mL）；L為灌流腸段長度（cm）；為灌流腸段半徑（cm）；＝2πrL，為灌流腸段體積（mL）；M、M分別為腸腔進(jìn)、出口端灌流液中酚紅濃度。

大鼠腸灌流實(shí)驗(yàn)獲得的P值與人體腸吸收實(shí)驗(yàn)獲得的P值有較好的一致性，并與口服生物利用度具有較好的相關(guān)性，根據(jù)Zakeri-Milani[14]規(guī)則判定， P＜5×10-5cm/s為低滲透性，P＞5×10-5cm/s為高滲透性。Ka用于評(píng)價(jià)藥物吸收快慢。

紅車軸草水提物的腸滲透性分析結(jié)果見表3?？梢钥闯?，各成分P均大于5×10-5cm/s，表明紅車軸草水提物中6種異黃酮類成分滲透性良好，其中P最大者為芒柄花素（P＝3.20±0.94，十二指腸），其次為染料木苷（P＝2.19±0.7，空腸）。對(duì)于不同腸段，各成分P和Ka均存在一定差異：P差異最大的成分為染料木苷（＜0.05），空腸（P＝2.19）為回腸（P＝0.34）的6.4倍；其次為大豆苷（＜0.05），空腸（P＝0.93）為回腸（P＝0.18）的5.2倍。各成分的最大P及Ka均出現(xiàn)在十二指腸或空腸段，表明各成分在小腸的主要吸收部位為十二指腸和空腸。另外，對(duì)于各腸段（十二指腸、空腸、回腸），苷元（大豆苷元、芒柄花素）的P和Ka均顯著大于其相應(yīng)的苷（大豆苷、芒柄花苷），差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（＜0.05），表明在溶液狀態(tài)下，苷元較苷更易于透過腸壁而被吸收。

表3 紅車軸草6種異黃酮類成分不同腸段Peff、Ka（±s，n＝3）

2.4 芒柄花素、芒柄花苷腸吸收機(jī)制

為進(jìn)一步探索紅車軸草異黃酮類成分的腸吸收機(jī)制，基于主要吸收部位（空腸），選取芒柄花素、芒柄花苷為代表，考察多濃度的吸收特征，探討其吸收機(jī)制。累積吸收曲線見圖2、圖3?？梢?，累積吸收量隨灌流液中成分濃度升高而增大，吸收曲線近似于線性，提示腸道對(duì)芒柄花素、芒柄花苷的吸收無濃度抑制，其吸收機(jī)制以被動(dòng)擴(kuò)散為主。由表4、表5可見，芒柄花素P、Ka分別為（1.00～1.20）×10-4cm/s、（9.62～10.98）×10-4/s，芒柄花苷P、Ka分別為（0.54～0.66）×10-4cm/s、（6.05～7.69）×10-4/s，提示濃度對(duì)芒柄花素、芒柄花苷的P和Ka沒有影響（＞0.05），進(jìn)一步表明芒柄花素、芒柄花苷的吸收機(jī)制以被動(dòng)擴(kuò)散為主。

圖2 芒柄花素空腸累積吸收曲線

圖3 芒柄花苷空腸累積吸收曲線

表4 不同濃度芒柄花素的空腸Peff、Ka（±s，n＝3）

表5 不同濃度芒柄花苷的空腸Peff、Ka（±s，n＝3）

3 討論

本試驗(yàn)對(duì)色譜條件、質(zhì)譜條件及樣品前處理方法進(jìn)行了系統(tǒng)考察。色譜方面，比較了甲醇-水和乙腈-水洗脫系統(tǒng)，以及不同品牌色譜柱，結(jié)果發(fā)現(xiàn)采用ACQUITY UPLC BEH Shield RP18色譜柱，流動(dòng)相為乙腈-0.1%甲酸水時(shí)，可得到良好的MRM色譜峰形；質(zhì)譜方面，主要對(duì)各成分的碰撞誘導(dǎo)解離電壓進(jìn)行了優(yōu)化，以便獲得最大響應(yīng)值；在樣品前處理上，除采用甲醇直接稀釋外，還考察了固相萃取的前處理法，雖然固相萃取能夠更好地去除樣品的中無機(jī)鹽、濃縮樣品，但綜合分析效果及分析通量，最終決定采用灌流液直接加甲醇稀釋的方法，該方法快速、準(zhǔn)確，目前尚未見相關(guān)報(bào)道。

紅車軸草主要異黃酮類成分除以上6種外，含量較高的還有染料木素、鷹嘴豆芽素A[1]等，因此前期擬對(duì)其進(jìn)行定量研究。但預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，紅車軸草水提液未能檢出染料木素與鷹嘴豆芽素A，在50%甲醇水超聲提取液中才能檢測(cè)到染料木素與鷹嘴豆芽素A，這是由于染料木素與鷹嘴豆芽素A的極性較小，難溶于水?？紤]到紅車軸草在臨床使用中主要以水作為提取溶劑，為保持與臨床用法的一致性，本研究采用水作為提取溶劑，研究紅車軸草水提液中多種異黃酮類成分的滲透性。同時(shí)，本研究確定的6種異黃酮類成分也可為基于水煎液的紅車軸草中藥復(fù)方的質(zhì)量控制標(biāo)志物的篩選提供參考。

紅車軸草水提液6種異黃酮類成分的P均大于5×10-5cm/s，表明紅車軸草水提液異黃酮類成分滲透性良好。由于特定的溶解性、滲透性或物理化學(xué)性質(zhì)，一些藥物只在特定的腸段吸收，稱為吸收窗口[15-16]。不同腸段存在酶活性、黏膜層厚度、膜成分等生理差異，導(dǎo)致對(duì)不同化學(xué)成分的吸收存在顯著差異[17-19]。本研究中紅車軸草水提液6種異黃酮類成分在不同腸段的吸收均存在一定差異，大豆苷元、芒柄花素在十二指腸的P最大，其余4種成分在空腸的P最大，提示紅車軸草水提物異黃酮類成分的最佳吸收窗口為十二指腸和空腸。

不同濃度芒柄花素和芒柄花苷的空腸段吸收實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，在試驗(yàn)濃度范圍內(nèi)，藥物濃度不影響其吸收特征，表明芒柄花素、芒柄花苷腸吸的吸收機(jī)制以被動(dòng)擴(kuò)散為主。其他成分的吸收機(jī)制尚待進(jìn)一步確認(rèn)。

與芒柄花素、芒柄花苷單體形式給藥相比，紅車軸草水提取物中芒柄花素、芒柄花苷在相應(yīng)腸段（空腸）的P顯著提高（＜0.05），表明紅車軸草水提物多成分的綜合效應(yīng)促進(jìn)了芒柄花素、芒柄花苷的滲透吸收。

另外，在葛根芩連片有效成分滲透性研究中，基于與本研究相同的實(shí)驗(yàn)方法，得到葛根芩連片中大豆苷元與大豆苷在大鼠空腸段的P分別為0.41×10-4、0.64×10-4cm/s[20]，本研究結(jié)果得到紅車軸草水提液中大豆苷元與大豆苷在大鼠空腸段的P分別為1.08×10-4、0.93×10-4cm/s，較其在葛根芩連片中的P值顯著提高，表明中藥不同復(fù)方配伍導(dǎo)致的化學(xué)環(huán)境變化對(duì)有效成分的滲透吸收會(huì)產(chǎn)生影響。

綜上，本研究通過對(duì)紅車軸草水提物異黃酮類成分的腸滲透性研究，揭示了其主要吸收成分、各成分的吸收特征，以及芒柄花素、芒柄花苷的吸收機(jī)制，可為紅車軸草質(zhì)控成分的篩選、制劑的開發(fā)及臨床合理用藥提供參考和支持。

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Study on Intestinal Permeability of Isoflavones inL. Based onSingle Pass Intestinal Perfusion Model

LUO Liyu1, WU Hongwei2, ZHAO Haiyu2, GAO Wenyuan1

To study the isoflavone intestinal absorption components and intestinal permeability of water extracts ofL.; To explore the corresponding mechanism.An ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS) method was adopted. A quantitative analysis method for the isoflavone components of isoflavoues daidzein, daidzin, genistein, mullein isoflavone glucoside, formononetin, ononin in the intestinal perfusate of water extracts ofL. was established. In situ single-pass intestinal perfusion model was used to study the intestinal permeability of the six isoflavones in the water extracts ofL. in different small intestine segments (duodenum, jejunum, and ileum). The intestinal penetration characteristics of formononetin and ononin at different concentrations were studied.The UPLC-MS/MS quantitative analysis method of 6 isoflavones in intestinal perfusate ofL. was established, which met the methodological requirements.The effective permeability coefficient (P) of the components from the water extracts were all greater than 5×10-5cm/s. Of the six isoflavones, the maximum value ofPwas formononetin (P=3.20, duodenum), followed with genistein (P=2.19, jejunum). For the different intestinal segments, thePand absorption rate constant (Ka) of the components were different. Daidzein and formononetin had the maximumPat the duodenum. The other four components had the maximumPat the jejunum. The results indicated that the best effective absorption locations for the isoflavones in the water extracts were the duodenum and jejunum. There was no statistical significance inPand Ka (>0.05) for formononetin and ononin in different concentrations, and the absorption curve was approximately linear. Therefore, the absorption mechanisms of formononetin and ononin were both passive diffusion.This study has preliminarily clarified the intestinal permeability and absorption mechanism of isoflavones in the water extracts ofL. The results could provide a contribution for quality control component screening, formulation development and clinical rational medication.

single-pass intestinal perfusion model; permeability;L.; isoflavones; formononetin; ononin

R284.1；R285.5

A

1005-5304(2020)11-0089-07

10.19879/j.cnki.1005-5304.202003739

高文遠(yuǎn)，E-mail：pharmgao@tju.edu.cn

（2020-03-28）

（2020-05-19；編輯：陳靜）