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        醬油渣中免疫活性肽水解用酶的篩選

        2020-11-05 03:09:02于志成劉步青陳茂龍葉崔鄒飛雪藏慶佳程云輝
        中國(guó)糧油學(xué)報(bào) 2020年10期
        關(guān)鍵詞:解物分子量醬油

        于志成 劉步青 許 宙 陳茂龍 焦 葉崔 波 鄒飛雪 藏慶佳 程云輝,

        (長(zhǎng)沙理工大學(xué)化學(xué)與食品工程學(xué)院1,長(zhǎng)沙 410114)(齊魯工業(yè)大學(xué)(山東省科學(xué)院)食品科學(xué)與工程學(xué)院;生物基材料與綠色造紙國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2, 濟(jì)南 250353)(煙臺(tái)雙塔食品股份有限公司3,煙臺(tái) 265404)

        醬油發(fā)酵后經(jīng)壓榨或抽油產(chǎn)生的剩余殘?jiān)礊獒u油渣[1]。據(jù)中國(guó)調(diào)味品協(xié)會(huì)統(tǒng)計(jì),2017 年我國(guó)醬油生產(chǎn)總量已達(dá)860萬(wàn) t[2],按照每生產(chǎn)1 t醬油產(chǎn)生0.67 t醬油渣計(jì)算[3],醬油渣年產(chǎn)量可達(dá)580萬(wàn) t。醬油渣中含有粗蛋白、碳水化合物和粗脂肪等營(yíng)養(yǎng)成分[4,5],不失為一種廉價(jià)的生物資源,特別是其中的大豆分離蛋白營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高、氨基酸含量豐富,被譽(yù)為“植物肉”[6]。目前醬油渣再利用的主要途徑是生產(chǎn)飼料[7],但存在含鹽量較高、適口性較差及不易貯存等缺點(diǎn)[8],在一定程度上限制了醬油渣的應(yīng)用價(jià)值。利用合適的水解酶從醬油渣蛋白中制備免疫活性肽,可使醬油渣資源得到更高值化利用[9]。

        免疫活性肽是指對(duì)機(jī)體免疫系統(tǒng)具有調(diào)節(jié)作用的一類生物活性肽,其免疫調(diào)節(jié)作用包括免疫促進(jìn)和免疫抑制[10,11]。免疫活性肽雖本身不具有免疫原性,但能通過(guò)被腸道吸收或在腸道與受體結(jié)合而發(fā)揮免疫作用[12]。近年來(lái),人們對(duì)食源性蛋白中免疫活性肽的研究日益增多,食物蛋白來(lái)源包括牛奶、魚類、貝類、大米、大豆等[13]。國(guó)內(nèi)外制備活性肽的方法主要有酶解法[14]、化學(xué)合成法[15]、基因重組法[16]及微生物發(fā)酵[17]等,其中使用商業(yè)蛋白酶進(jìn)行體外水解是最常用的方法,肽鍵的裂解能夠釋放具有免疫調(diào)節(jié)活性的肽段。由于酶的不同切割特異性,選擇合適的蛋白水解酶成為關(guān)鍵技術(shù)因素。評(píng)價(jià)蛋白水解產(chǎn)物免疫調(diào)節(jié)作用的常用研究方法包括細(xì)胞實(shí)驗(yàn)和動(dòng)物喂養(yǎng)實(shí)驗(yàn)[13]。由于巨噬細(xì)胞是體液免疫的重要防線,所以巨噬細(xì)胞增殖能力的強(qiáng)弱與體液免疫能力有著重要關(guān)系[18],采用MTT法檢測(cè)巨噬細(xì)胞活性已被較廣泛運(yùn)用于評(píng)價(jià)生物活性肽的免疫調(diào)節(jié)作用。同時(shí),由一氧化氮合酶催化L-精氨酸產(chǎn)生的NO,能作為一種重要的細(xì)胞分泌物在炎癥和休克等生理過(guò)程中擔(dān)任信號(hào)分子的作用,通??捎肗O的釋放量來(lái)衡量巨噬細(xì)胞中的炎癥作用[19]。

        因此,本研究以小鼠巨噬細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)的SI值和脂多糖炎癥模型細(xì)胞內(nèi)NO釋放量作為免疫活性肽的篩選指標(biāo),擬利用Acalase、Papain、Pepsin、Trypsin與Protamex 5種蛋白酶對(duì)醬油渣蛋白進(jìn)行酶解,進(jìn)而對(duì)5種酶解物的免疫活性、多肽含量、可溶性氮回收率和相對(duì)分子質(zhì)量進(jìn)行分析,篩選出最佳的醬油渣免疫活性肽水解用酶,為醬油渣資源高值化利用提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        醬油渣、小鼠巨噬細(xì)胞(RAW264.7)、石油醚、Folin酚、L-酪氨酸;Acalase、Papain、Pepsin、Trypsin及Protamex;D201-C大孔吸附樹脂。

        1.2 儀器與設(shè)備

        FE28 pH計(jì),JJ-T電動(dòng)攪拌器,TDL-5-A離心機(jī),SHZ-D循環(huán)水式真空泵,EV 311旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,F(xiàn)D-1真空冷凍干燥機(jī),HH CP-01二氧化碳細(xì)胞培養(yǎng)箱,MLS-3750滅菌鍋,SW-OJ-1FD超凈工作臺(tái), 96孔培養(yǎng)板;血球計(jì)數(shù)板,DNM-9602酶標(biāo)分析儀。

        1.3 方法

        1.3.1 醬油渣蛋白粉的制備方法[20]

        1 kg脫脂醬渣粉溶于10 L蒸餾水中,用2 mol/L氫氧化鈉調(diào)溶液pH至10→攪拌2 h→離心(3 500r/min,30 min)→取上清→用2 mol/L鹽酸滴定至pH 4.0→離心(3 500 r/min,10 min)→水洗3次(3 500 r/min,10 min)→取沉淀→冷凍干燥。

        1.3.2 醬油渣蛋白酶解物制備方法[20]

        5種蛋白酶的酶解條件見表1。5%醬渣蛋白懸浮液→50 ℃恒溫溶解30 min→調(diào)至各酶最適溫度→調(diào)至各酶最適pH→加酶酶解3 h(6 000 U/g)→滅酶(15 min,90 ℃)→離心取上清→真空濃縮→大孔吸附樹脂脫鹽→冷凍干燥。

        表1 5種蛋白酶的酶解條件

        1.4 分析方法

        1.4.1 基本成分分析方法

        水分含量的測(cè)定參考GB/T 5009.3—2016中的直接干燥法;蛋白含量的測(cè)定參考GB/T 5009.5—2010中的凱氏定氮法;脂肪含量的測(cè)定參考GB/T 5009.6—2016中的索氏提取法;總糖含量的測(cè)定用苯酚硫酸法[21];鹽分的測(cè)定參考GB 5009.44—2016中的電位滴定法。

        1.4.2 蛋白酶活力的測(cè)定方法

        參考GB/T 23527—2009《蛋白酶制劑》。

        1.4.3 多肽含量的測(cè)定方法

        參考GB/T 22492—2008《大豆肽粉》[22]。

        1.4.4 相對(duì)分子量測(cè)定方法

        相對(duì)分子量采用液相色譜[23]法測(cè)定:

        1)色譜條件:色譜柱為TSKgel 2000 SWXL 300 mm×7.8 mm。流動(dòng)相使用水/乙腈/三氟乙酸,90/10/0.1;經(jīng)0.45 μm濾膜過(guò)濾后再經(jīng)超聲進(jìn)行脫氣。洗脫流速0.5 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)220 nm,柱溫30 ℃,上樣量10 μL。

        2)樣品的制備:用流動(dòng)相將樣品配成濃度為1 mg/mL的樣液,超聲混勻,用微孔濾膜過(guò)濾后待測(cè)。

        3)分子量校正曲線所用標(biāo)準(zhǔn)品:甘氨酸-酪氨酸(MW239.2);纈氨酸-酪氨酸-纈氨酸(MW379.5);蛋氨酸腦啡肽(MW573.23);亮氨酸腦啡肽(MW555.63-569.65);血管緊張素Ⅱ(MW1 269);細(xì)胞色素C(MW12 900)。

        1.4.5 小鼠巨噬細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)方法

        MTT法測(cè)定小鼠巨噬細(xì)胞的增殖活性。用移液槍取對(duì)數(shù)期的小鼠巨噬細(xì)胞,細(xì)胞濃度7×105個(gè)/mL、每孔100 μL接種于96孔板中,在5% CO2的培養(yǎng)箱中37 ℃恒溫孵育4 h后,以6復(fù)孔為一組,每孔加入醬油渣蛋白酶解物20 μL(6.25 μg/mL),空白對(duì)照組加無(wú)菌水20 μL,繼續(xù)在培養(yǎng)箱中恒溫孵育20 h;在終止孵育前4 h加入20 μL MTT(5 mg/L);棄去每孔中的液體,向每孔中加入150 μL二甲基亞砜,避光條件下?lián)u床中輕振10 min[24],490 nm下酶標(biāo)儀測(cè)吸光度(OD值),SI值計(jì)算公式:

        1.4.6 酶解物對(duì)脂多糖炎癥模型細(xì)胞內(nèi)NO釋放的影響

        當(dāng)培養(yǎng)皿中的小鼠巨噬細(xì)胞生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)期時(shí),棄掉細(xì)胞培養(yǎng)基上清,用移液槍吸取2 mL培養(yǎng)基將細(xì)胞輕輕吹下,12 000轉(zhuǎn)離心收集細(xì)胞,96孔培養(yǎng)板中接種3×104個(gè)/孔的細(xì)胞,每孔200 μL細(xì)胞液,在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過(guò)夜,待細(xì)胞貼壁后,以6復(fù)孔為一組,分為陰性對(duì)照組、LPS炎癥模型組、陽(yáng)性對(duì)照組和醬油渣蛋白酶解物預(yù)處理組[25]:

        1) 陰性對(duì)照組:加入含10% FBS的DMEM培養(yǎng)基;

        2) 炎癥模型組:加入含10% FBS的DMEM培養(yǎng)基,培養(yǎng)12 h,再加入用DMEM培養(yǎng)基稀釋的LPS溶液20 μL,培養(yǎng)24 h;

        3) 陽(yáng)性對(duì)照組:加入含10% FBS的DMEM培養(yǎng)基,培養(yǎng)12 h,再加入用無(wú)菌水稀釋的IgG 20 μL,培養(yǎng)24 h;

        4) 樣品預(yù)處理組:加入無(wú)菌水溶解的樣品溶液,使樣品的終濃度為6.25 μg/mL,培養(yǎng)12 h,加入用DΜEM培養(yǎng)基稀釋的LPS溶液,培養(yǎng)24 h。

        收集細(xì)胞培養(yǎng)基上清,于4 ℃、12 000 轉(zhuǎn)低溫離心5 min以去除細(xì)胞雜質(zhì)等。根據(jù)GRIESS法測(cè)定上清液中NO含量。NO抑制率公式:

        NO抑制率=

        1.5 可溶性氮回收率的測(cè)定方法

        采用福林酚法測(cè)定上清液蛋白質(zhì)含量[26]:使用0.05 mol/L (pH8.0) NaHPO4-NaH2PO4緩沖液將上清液稀釋一定倍數(shù)至測(cè)定范圍,取2.5 mL稀釋樣品于10 mL玻璃試管,加入2.5 mL堿性銅試劑,振蕩混勻,室溫放置10 min,再加入0.25 mLFolin-酚試劑,立即振蕩混勻,室溫放置30 min后于500 nm下測(cè)定吸光度。配制0~0.5 mg/mL的牛血清白蛋白(BSA)標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算上清液蛋白質(zhì)含量。

        上清液蛋白質(zhì)量(g)=上清液蛋白含量×上清液體積

        醬油渣蛋白質(zhì)量(g)=醬油渣蛋白含量×醬油渣質(zhì)量

        醬油渣蛋白可溶性氮回收率=

        1.6 數(shù)據(jù)處理

        實(shí)驗(yàn)均設(shè)置3次平行,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用excel進(jìn)行分析,每組間差異用Student’s t-test平均值的成對(duì)二樣本進(jìn)行分析,P<0.01表示有極顯著性差異,P<0.05表示有顯著性差異,P>0.05表示沒有顯著性差異。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 醬油渣和醬油渣蛋白基本成分分析

        對(duì)醬油渣原料干基及所提取的醬油渣蛋白的主要成分進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果見表2。脫脂后提取的醬油渣蛋白脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)降為1.23%;鹽分和水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別降為0.91%和2.42%;而總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)從10.31%提高至37.52%,張興茂[20]通過(guò)Sevag試劑法來(lái)驗(yàn)證糖蛋白,推測(cè)醬油渣蛋白中含有大量的糖蛋白,據(jù)此可認(rèn)為醬油渣蛋白中總糖含量的提高與提取過(guò)程中糖蛋白的富集有關(guān)。

        表2 原料醬油渣(干基)及醬油渣蛋白的主要化學(xué)成分

        2.2 不同蛋白酶酶解物可溶性氮回收率的比較

        2.2.1 蛋白酶選擇及酶活測(cè)定

        目前蛋白酶主要來(lái)源于動(dòng)物、植物和微生物,Pepsin和Trypsin是動(dòng)物來(lái)源的蛋白酶,Pepsin的酶切位點(diǎn)是Phe和Leu等疏水性氨基酸,Trypsin的酶切位點(diǎn)為賴氨酸(Lys)和精氨酸(Arg)等堿性氨基酸[27];Papain是一種植物來(lái)源的蛋白酶,其酶切位點(diǎn)是Arg、Lys、Phe,其中Arg和Lys是堿性氨基酸,而Phe是疏水性氨基酸[27];Protamex和Acalase是微生物來(lái)源的蛋白酶,復(fù)合蛋白酶兼具內(nèi)、外切酶的活性,能較徹底地酶解蛋白質(zhì),Acalase的酶切位點(diǎn)是Ala、Leu、Val等疏水性氨基酸,酶切位點(diǎn)廣泛,水解效果好[28]。本研究擬在同等酶活下考察5種酶的酶解產(chǎn)物在免疫活性、分子量分布及可溶性氮回收率方面的差異,因此參照GB/T 23527—2009《蛋白酶制劑》測(cè)定了所選定5種蛋白酶的酶活,結(jié)果如表4所示。由表3可知,Acalase酶活最高,可達(dá)276 229.6 U/g。

        表3 實(shí)驗(yàn)所用5種蛋白酶的酶活

        2.2.2 不同蛋白酶酶解物可溶性氮回收率的分析

        注:*與對(duì)照組相比,P<0.05;**與對(duì)照組相比,P<0.01。圖1 5種蛋白酶酶解物可溶性氮回收率的比較

        本研究比較了5 種醬油渣蛋白酶酶解物的可溶性氮回收率,結(jié)果如圖1所示。5種蛋白酶酶解物中Protamex酶解物可溶性氮回收率最低,與Protamex酶解物(對(duì)照組)可溶性氮回收率相比,Papain酶解物差異不顯著,Pepsin酶解物差異顯著(P<0.05),Acalase和Trypsin酶解物差異極顯著(P<0.01),且Acalase酶解物可溶性氮回收率最高為89.43%。在工業(yè)化生產(chǎn)中,提高酶解物的可溶性氮回收率,具有降低生產(chǎn)成本、提高原料利用效率等優(yōu)點(diǎn)。

        2.3 醬油渣蛋白不同蛋白酶酶解物的多肽含量分析

        對(duì)醬油渣蛋白不同蛋白酶酶解物的多肽含量進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果見表4。5種蛋白酶酶解物中多肽含量最高的是堿性蛋白酶酶解物,占比51.47%;而在可溶性氮回收率的測(cè)定結(jié)果中堿性蛋白酶酶解物的可溶性氮回收率也最高,二者結(jié)果一致。

        表4 5種蛋白酶酶解物的多肽含量

        2.4 不同蛋白酶酶解物的性質(zhì)研究

        2.4.1 不同蛋白酶酶解物免疫活性研究

        分別以小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7 MTT增殖實(shí)驗(yàn)SI值和脂多糖(LPS)炎癥模型細(xì)胞內(nèi)NO釋放量作為考察指標(biāo),考察了不同蛋白酶酶解物的免疫活性,結(jié)果如圖2和圖3所示。

        注:*與對(duì)照相比,P<0.05;**與對(duì)照相比,P<0.01。圖2 5種蛋白酶解物對(duì)RAW264.7細(xì)胞增殖活性的影響

        由圖2可知,除Acalase酶解物外,其他4種蛋白酶酶解物在濃度6.25 μg/mL時(shí)對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7皆具有顯著增殖作用(P<0.05),但Trypsin和Protamex酶解物增殖作用高于陽(yáng)性對(duì)照IgG,Pepsin和Papain酶解物增殖作用低于陽(yáng)性對(duì)照IgG。Acalase酶解物在6.25 μg/mL時(shí)對(duì)RAW264.7細(xì)胞的增殖作用存在極顯著差異(P<0.01),其SI值最高為1.09且比陽(yáng)性對(duì)照IgG的增殖效果好。

        注:##:與陰性對(duì)照組比有極顯著差異P<0.01;*:與炎癥模型組比有顯著差異P<0.05;**:與炎癥模型組比有極顯著差異P<0.01。圖3 5種蛋白酶解物對(duì)LPS內(nèi)誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞內(nèi)NO釋放量的影響

        由圖3可知,在6.25 μg/mL的濃度下,不同酶解物對(duì)NO的抑制效果有顯著差異,這可能跟其酶切位點(diǎn)及特異性不同相關(guān)。與炎癥模型組相比,Pepsin酶解物、Trypsin酶解物和Protamex酶解物對(duì)細(xì)胞內(nèi)NO釋放量都存在一定抑制作用,但抑制率相對(duì)較低;Papain酶解物對(duì)細(xì)胞內(nèi)NO釋放量存在顯著(P<0.05)抑制作用,抑制率為7.81%;Acalase酶解物對(duì)細(xì)胞內(nèi)NO釋放量存在極顯著(P<0.01)抑制作用,抑制率為10.80%,Acalase酶解物對(duì)細(xì)胞內(nèi)NO釋放量的抑制作用最強(qiáng)。

        MTT增殖實(shí)驗(yàn)和脂多糖(LPS)炎癥模型實(shí)驗(yàn)表明堿性蛋白酶酶解物對(duì)RAW264.7細(xì)胞增殖效果及細(xì)胞內(nèi)NO釋放抑制作用皆為最強(qiáng)。這可能跟Acalase 的酶切位點(diǎn)有關(guān),有研究表明,多肽的免疫活性可能與其所含疏水性氨基酸的比例相關(guān)[29]。Acalase的酶切位點(diǎn)為Ala、Leu、Val,采用該酶水解食源性蛋白可能獲得更多富含疏水性氨基酸的酶解物。Lee等[30]采用堿性蛋白酶酶解短頸蛤蛋白,得到的肽序列Gln-Cys-Gln-Gln-Ala-Val-Gln-Ser-Ala-Val能在LPS刺激的RAW 264.7巨噬細(xì)胞中顯示出NO抑制活性,其中含有疏水性氨基酸。He等[31]從波紋巴非蛤肉蛋白堿性蛋白酶解物中得到的免疫活性肽Pro-His-Thr-Cys,Val-Gly-Try-Thr,Glu-Phe,Leu-Phe等能夠顯著增強(qiáng)小鼠淋巴細(xì)胞增殖能力,其中疏水性氨基酸比例較高。

        2.4.2 不同蛋白酶酶解物分子量分布的分析

        采用液相色譜對(duì)不同蛋白酶酶解物的分子量分布進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如表5所示。5種蛋白酶酶解物的分子量分布范圍主要在2 000 u以下,免疫活性較好的Acalase和Papain酶解物中2 000 u以下的組分分別占98.21%、97.74%,其中分子量在180 u以下的比例分別為5.92%和6.13%,因此可推斷酶解物中游離氨基酸的含量較低;分子量分布在3 000 u以上的比例分別僅為0.11%和0.12%,說(shuō)明酶解物中的大分子量肽段很少。肽的免疫活性與其分子量大小密切相關(guān),大量研究結(jié)果表明小分子量肽段的免疫活性較好[13]。據(jù)此可推測(cè)5種蛋白酶酶解物中分子量范圍為180~1 000 u的肽段可能具有較強(qiáng)的免疫活性。Acalase酶解物和Papain酶解物中180~1 000 u的肽段比例較高,分別為81.33%和78.03%,這可能也是兩種酶解物具有較強(qiáng)免疫活性的原因之一。

        表5 5種蛋白酶酶解物的分子量分布

        3 結(jié)論

        通過(guò)考察5種醬油渣蛋白酶酶解物對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞增殖指數(shù)SI值、脂多糖(LPS)炎癥模型中細(xì)胞內(nèi)NO釋放量的抑制作用、相對(duì)分子量分布、多肽含量及可溶性氮回收率,本研究認(rèn)為Acalase是制備醬油渣免疫活性肽的最佳水解酶,其SI值、NO釋放量抑制率、分子量180~1 000 u的組分占比、多肽含量及可溶性氮回收率分別為1.09、10.80%、81.33%、51.47% 和89.43%。其酶解物不僅免疫活性較好,而且多肽含量和可溶性氮回收率較高,工業(yè)推廣方面應(yīng)用前景廣闊。

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