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        同源血漿及血清中藍(lán)舌病病毒抗體ELISA 檢測結(jié)果比較

        2020-11-03 13:04:18
        中國動物檢疫 2020年11期
        關(guān)鍵詞:血漿血清檢測

        (云南省畜牧獸醫(yī)科學(xué)院,云南省熱帶亞熱帶動物病毒病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,云南昆明 650224)

        藍(lán)舌?。╞luetongue,BT)是發(fā)生于部分反芻動物的一種蟲媒傳播疫病,因病情嚴(yán)重動物的舌頭嚴(yán)重?fù)p傷并呈深藍(lán)色而得名。其病原體是藍(lán)舌病病毒(bluetongue virus,BTV),屬于呼腸孤病毒科環(huán)狀病毒屬[1]。BTV主要感染牛、羊、鹿等反芻動物,其中綿羊最易感。

        自19 世紀(jì)首次在南非發(fā)現(xiàn)BT 以來,除南極洲以外的各大洲均發(fā)生過大規(guī)模BT 疫情,對畜牧經(jīng)濟(jì)造成了重大損失[2-3]。目前已知的BTV 血清型共有27 種,其中在我國境內(nèi)發(fā)現(xiàn)的血清型共14 種[4]。雖然我國至今未發(fā)生大規(guī)模BT 疫情,但是自1979 年在云南省師宗縣發(fā)現(xiàn)國內(nèi)首例疫情以來,對BT 的監(jiān)控及防治研究成為國內(nèi)動物病防治的工作之一。

        酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immune sorbent assay,ELISA)、血清中和試驗(yàn)(serum neutralization test,SNT)、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)技術(shù)(polymerase chain reaction,PCR)及病毒分離技術(shù)是檢測診斷及分析動物病毒傳染病的主要方法。ELISA、PCR、病毒分離也是目前最常用的BT 監(jiān)測及流行病學(xué)調(diào)查方法。

        通常情況下,血清樣品可以用于上述各種檢測及試驗(yàn)。但BTV 具有吸附紅細(xì)胞特性[1,5],因此無論是PCR 檢測病毒核酸還是從血液中分離BTV,均需要全血樣品而非血清樣品[6-8]。因此,在調(diào)查動物BTV 感染情況時(shí),通常需要同時(shí)采集抗凝血樣品和血清樣品,前者用于PCR 檢測及病毒分離,后者用于ELISA 檢測病毒抗體或抗原。雖然ELISA 試驗(yàn)通常用于檢測血清樣品,但少數(shù)情況下也使用血漿樣品[9-13]。因此,本試驗(yàn)旨在對比BTV 易感動物同源血漿及血清的ELISA 檢測結(jié)果,以期分析血漿樣品替代血清樣品進(jìn)行ELISA檢測的可行性,從而減少樣品采集工作量及樣品數(shù)量,方便對養(yǎng)殖場牛、羊等動物的BTV 檢測工作。

        1 材料與方法

        1.1 主要試劑及材料

        1.1.1 主要試劑 BTV 的羊抗血清及兔抗血清:本實(shí)驗(yàn)室制備并保存[14];HRP 標(biāo)記的羊抗兔二抗:65-6120,Invitrogen 公 司;PBST:0.01 mol/L PBS(B040100-0005,上海生工)加入0.05%的Tween-20(A600560,BIO BASIC INC);封閉液:含5%特級馬血清(S9050,Solarbio)及0.01%硫柳汞(A600610,BIO BASIC INC)的PBST;抗體稀釋液:含1%脫脂奶粉(完達(dá)山)及0.01%硫柳汞的PBST;TMB:LZ0823B50102,BIO BASIC INC 公司;反應(yīng)終止液:0.625 mol/L H2SO4(7664-93-9,天津渤?;ぜ瘓F(tuán)供銷有限公司);Bovine BLU-VP7 Ab ELISA 試劑盒:BG27653,美國TSZ公司。

        1.1.2 試驗(yàn)動物 動物全血及血清于2019 年8 月7 日采自云南省德宏州芒市的一家肉牛養(yǎng)殖場。試驗(yàn)所用30 對全血-血清樣品隨機(jī)采自狀態(tài)良好的30 頭牛。

        1.2 動物血樣采集及制備

        每只動物采集2 管4~5 mL 的全血樣品。其中一支真空采血管含有EDTA 抗凝劑,收集全血樣品;另外一支采血管不含抗凝劑,所采血樣用于血清制備??鼓獦悠分苯屿o置存放于4 ℃冷庫,48 h 后各吸取約500 μL 上清液,即為血漿樣品。非抗凝血樣品在室溫靜置2 h 后離心(2 000 r/min,5 min),收集上清液,即為血清樣品(本研究所用血清均為清澈的淺黃色血清)。血漿和血清樣品均在4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3 ELISA 試驗(yàn)

        1.3.1 C-ELISA 檢測BTV 抗體 應(yīng)用本實(shí)驗(yàn)室制備的競爭ELISA(competitive ELISA,C-ELISA)檢測試劑盒[14]測定血漿及血清中的BTV 抗體,方法簡述如下:向高吸附ELISA 板加入50 μL/孔1:1 000 稀釋的BTV 多克隆羊抗血清(用pH9.6 碳酸緩沖液稀釋),4 ℃過夜;PBST 洗板后,加入50 μL/孔的BTV 抗原,37 ℃孵育1 h;洗板后加入200 μL/孔封閉液,37 ℃孵育1 h;甩去封閉液的ELISA 板在通風(fēng)柜吹干后(約2 h)用干凈包裝袋真空封裝,4 ℃保存。取兩塊抗原固定板,一塊用于檢測血漿樣品,另外一塊用于檢測血清樣品。每塊ELISA 板檢測待測樣品30 份、陰性對照樣品1 份、陽性對照樣品1 份,各3 孔重復(fù)。向ELISA板加入40 μL/孔的抗體稀釋液,再分別加入12 μL/孔的待檢樣品、陰性血清、陽性血清;隨后加入50 μL/孔一抗(即100 倍稀釋的抗BTV 的兔抗血清儲存液);37℃培養(yǎng)箱孵育1 h。用PBST 洗板3 次,加入50 μL/孔1 000 倍稀釋的酶標(biāo)二抗,37 ℃培養(yǎng)箱中孵育30 min。隨后用PBST 洗板5 次,拍干后加入50 μL/孔TMB 顯色劑,37 ℃避光孵育10 min。加50 μL/孔反應(yīng)終止液終止反應(yīng),用酶標(biāo)儀讀取450 nm 吸光度(OD)。OD 值結(jié)果換算為抑制率(present inhabitation,PI),PI=(陰性對照OD-樣品OD)/陰性對照平均OD;PI ≥40%判定為陽性[14]。受檢樣品的PI值取3個平行結(jié)果的平均值,當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)差(SD)≥2%時(shí)將偏差最大的PI 值去掉并重新計(jì)算平均值。ΔPI,即PIP-PIS,為血漿樣品(P)平均PI 值減去同源血清樣品(S)平均PI 值的結(jié)果。

        1.3.2 ELISA 試劑盒檢測BTV 的VP7 抗體 取2 塊預(yù)包被的ELISA 板,分別用于血漿樣品及血清樣品檢測。每板包括30 份待測樣品(3 孔重復(fù))、1 份陽性對照血清(因孔數(shù)限制,取2 孔重復(fù))、1 份陰性對照血清(3 孔重復(fù))及1 孔空白對照。試驗(yàn)按照試劑盒說明操作??瞻讓φ湛撞患訕悠芳癏RP 偶聯(lián)試劑,其余步驟同待測樣品。向待測孔加入40 μL/孔稀釋液后再分別加入10 μL/孔待測樣品,向陽性對照孔及陰性對照孔分別加入50 μL/孔試劑盒提供的陽性及陰性標(biāo)準(zhǔn)液,37 ℃孵育30 min;加入150 μL/孔洗液洗板,放置30 s 后甩干,共進(jìn)行5次;加入50 μL/孔HRP 偶聯(lián)試劑,37 ℃孵育30 min后洗板5 次,拍干ELISA 板;先后加入50 μL/孔試劑A 和50 μL/孔試劑B,37 ℃避光孵育15 min;加入50 μL/孔反應(yīng)終止液。使用酶標(biāo)儀讀取OD值。按照說明書標(biāo)準(zhǔn):當(dāng)陽性對照OD ≥1 及陰性對照OD ≤0.2 時(shí)結(jié)果有效;閾值=陰性對照平均OD+0.15;當(dāng)樣品平均OD ≥閾值即判定為VP7 抗體陽性,否則為陰性。受檢樣品的OD 值取3 孔重復(fù)讀數(shù)的平均值,當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)差(SD)≥0.05 時(shí)將偏差最大的一個讀數(shù)去掉并重新計(jì)算平均值。ODPODS為血漿樣品(P)平均OD 值減去同源血清樣品(S)平均OD 值的結(jié)果。

        2 結(jié)果

        2.1 C-ELISA 檢測同源血漿及血清BTV 抗體

        首先用實(shí)驗(yàn)室自制的C-ELISA 試劑盒檢測樣品中BTV 總抗體。30 份血漿及30 份同源血清各用1 塊ELISA 板檢測,每個樣設(shè)3 孔重復(fù)。第一次試驗(yàn)所得抑制率(PI)及抑制率差值(ΔPI)結(jié)果(表1、圖1)顯示:整體上看,血漿樣品的抑制率高于或等于同源血清樣品的抑制率;有6 對樣品的ΔPI 明顯過高(ΔPI ≥10%),另外9 對樣品的ΔPI 較大(ΔPI ≥5%),其余樣品沒有明顯差異。該結(jié)果表明,對于同源血漿及血清樣品的檢測,雖然陽性/陰性結(jié)果的判定100%一致,但是對于具體數(shù)據(jù)而言,有20%樣品存在顯著差異,另外30%樣品有較大差異。

        表1 15 對血漿-血清樣品的BTV C-ELISA 抑制率差值 %

        圖1 30 對同源血漿及血清樣品的抑制率差值(ΔPI)

        與清澈的淺黃色血清樣品相比,抗凝血樣品中有不同程度的溶血現(xiàn)象,因此可能造成血漿樣品的品質(zhì)差異,進(jìn)而造成試驗(yàn)誤差。但經(jīng)過審查發(fā)現(xiàn),血漿樣品的顏色深淺(即溶血程度)與ΔPI 沒有必然聯(lián)系(圖2),例如ΔPI >10%的3 號和14號樣品,其顏色與ΔPI <5%的4 號和5 號樣品相近。ΔPI 與血漿樣品的顏色深度沒有遞增或遞減關(guān)系。

        圖2 部分血漿樣品

        考慮到血漿中或多或少的細(xì)胞碎片成分可能影響檢測結(jié)果,對ΔPI ≥10% 的血漿樣品離心(1 500 r/min,1 min),收集上清液,再次進(jìn)行BTV C-ELISA 檢測。為盡量避免操作誤差,每加2 份(6 孔)血漿樣品后即刻加入2 份(6 孔)同源的血清樣品。結(jié)果(圖3)顯示:21 號樣品的ΔPI 依舊很高,但是其他樣品的ΔPI 明顯縮小。綜合兩次C-ELISA 檢測結(jié)果,在30 對樣品中,有1 對樣品(占比3.3%)PI 差值明顯,3 對樣品(占比10%)PI 差值較大,其余樣品(占比87%)無明顯差異(ΔPI 在±5%以內(nèi))。

        圖3 15 對同源血漿及血清樣品復(fù)檢結(jié)果的抑制率差值(ΔPI)

        2.2 ELISA 檢測同源血漿及血清BTV VP7 抗體

        參照第二次C-ELISA 的加樣方法,用ELISA試劑盒檢測上述樣品的BTV VP7 抗體。結(jié)果(表2 及圖4)顯示:13 號及27 號樣品的ΔOD 偏差明顯(|ΔOD|>0.1),8 號及12 號樣品ΔOD 偏差較大(|ΔOD|≥0.05),其余樣品ΔOD 不明顯;即同源血漿及血清樣品的OD 值一致率為87%(26/30)。按照試劑盒陽性判定標(biāo)準(zhǔn),27 號血漿及13 號血清為VP7 抗體陽性,其他均為陰性,結(jié)果一致率為93%(28/30)。

        表2 4 對血漿-血清樣品的BTV VP7 ELISA 讀數(shù)差值

        圖4 ELISA 檢測同源血漿及血清樣品BTV VP7 抗體的OD 差值(ΔOD)

        3 討論

        在檢測血液樣品中特定成分時(shí),因檢測項(xiàng)目不同而需要不同的血液樣品,即全血、血漿、血清[9]。各種ELISA 檢測中,血清是最常用的受檢樣品,少數(shù)情況也使用血漿樣品[9,11,15]。血漿與血清成分的主要差異在于血漿中含有纖維蛋白原、凝血因子、血紅蛋白(溶血時(shí)釋放到血漿中)及人工添加的抗凝劑(本研究中的抗凝劑為EDTA-K2)[9]。血漿中成分較為復(fù)雜,尤其是粗制血漿還可能含有血細(xì)胞或血細(xì)胞碎片,其中某些成分可能干擾ELISA檢測;而血清在制備過程中要經(jīng)歷凝血,有可能造成抗體的損失。

        基于簡化BTV 檢測工作的目的,本研究對牛同源血漿和血清的ELISA 檢測結(jié)果進(jìn)行了比較分析。綜合結(jié)果說明:(1)C-ELISA 檢測BTV 總抗體的陽性判定一致率為100%,數(shù)值高度一致(|ΔPI|<5%)的比率為87%;(2)ELISA 試劑盒檢測BTV VP7 抗體的陽性判定一致率為93%,數(shù)值高度一致(|ΔOD|<0.05)的比率為87%;(3)溶血對檢測結(jié)果的差異沒有必然聯(lián)系,而離心去除血漿中的沉淀物及嚴(yán)格的實(shí)驗(yàn)操作可以明顯降低檢測誤差。

        本研究中的牛同源血漿及血清的抗體水平相當(dāng),即C-ELISA 檢測BTV 總抗體的|ΔPI|<5%,ELISA 試劑盒檢 測VP7 抗體的|ΔOD| <0.05;結(jié)果的差異程度與ELISA 檢測的板間和平行孔間的實(shí)驗(yàn)誤差相當(dāng)。與之一致的是,賈波等[11]對人同源血漿及血清4 種病原體的抗體或抗原指標(biāo)進(jìn)行ELISA 檢測,說明血漿的抗體水平略低于血清樣品,但這主要?dú)w因于抗凝劑對血漿的稀釋作用(全血中含1/5 體積的抗凝劑)。在BTV 總抗體檢測中,出現(xiàn)1 對反差明顯的樣品(21 號樣品),可能是同源血漿與血清偶然出現(xiàn)的差異,也可能是樣品采集失誤或罕見的實(shí)驗(yàn)誤差造成,因?yàn)樵诘诙蜟-ELISA 檢測中,21 號血漿樣品有2 個偏高結(jié)果(87.77%、85.58%)和1 個偏低結(jié)果(65.60%),如果被判定為異常數(shù)據(jù)的那個數(shù)據(jù)(65.60%)才是真實(shí)結(jié)果的話,那么ΔPI 的結(jié)果將為-0.38%(21號血清PI=65.98%)。在BTV VP7 抗體檢測中,差異特別明顯的兩對樣品為13 號(血漿陰性、血清陽性)和27 號(血漿陽性、血清陰性),也存在類似于21 號樣品的數(shù)據(jù)選擇問題;而且同一個陰性對照樣品(NC)在2 塊ELISA 板上的ΔOD也達(dá)到了0.052 3,說明板間本身存在較大的試驗(yàn)誤差。

        綜上所述,對于ELISA 檢測動物血樣BTV 抗體的試驗(yàn),血漿樣品可替代血清樣品,溶血程度即血漿顏色不影響檢測結(jié)果,但是粗制血漿中的不可溶雜質(zhì)可能影響檢測結(jié)果,因此需要使用離心除雜后的血漿樣品。此外,當(dāng)樣品檢測結(jié)果介于陽性和陰性的臨界點(diǎn)時(shí)可能出現(xiàn)不同結(jié)果;然而即使是血清樣品,試驗(yàn)操作本身的誤差也可能造成臨界點(diǎn)樣品的誤判。而對于同樣具有紅細(xì)胞吸附特性的其他病毒——流行性鹿出血熱病毒(epizootic hemorrhagic disease virus,EHDV)[1,16]的研究,所涉及的血液樣本采集也可省略血清制備。此外,在野外采集動物血樣用于疫病檢測不方便及時(shí)制備血清的情況下,亦可采集抗凝全血代替血清,隨后在實(shí)驗(yàn)室離心全血后收集血漿用于ELISA 檢測。

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