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        不同價態(tài)的陰離子在DNA凝聚效應(yīng)中的抑制作用

        2020-10-30 05:03:26李聰聰楊光參王艷偉
        山東科學(xué) 2020年5期
        關(guān)鍵詞:原子力價態(tài)陰離子

        李聰聰,楊光參,王艷偉

        (溫州大學(xué) 數(shù)理學(xué)院,浙江 溫州 325035)

        DNA是一種攜帶大量負電荷的長鏈有機聚合物,在極性溶液中,DNA分子會水解,其堿基對帶負電,當溶液中有陽離子時,DNA周圍會匯聚很多帶正電的抗衡離子,即陽離子與DNA表面負電荷相結(jié)合,此時DNA表面的負電荷會被中和,當DNA表面電荷被中和達到89%時,DNA凝聚就會發(fā)生[1-2]。DNA的許多凝聚劑,如金屬陽離子[3-4]、堿性蛋白質(zhì)[5-6]、多胺類[7-8]以及一些中性聚合物[9-10]和金屬混合物[11]都能使DNA產(chǎn)生凝聚或者縮合。

        目前關(guān)于陽離子導(dǎo)致DNA凝聚的研究非常多,為科研乃至基因治療領(lǐng)域提供了極佳的理論基礎(chǔ)。在細胞中,帶負電的DNA被限制在一個很小的空間中,這個空間包含的很多陽離子和陰離子維持了這個小系統(tǒng)的平衡。細胞中的三磷酸腺苷和二磷酸腺苷都為攜帶負電荷的陰離子,其對DNA的作用還未可知。在研究陽離子對DNA凝聚的過程中也會引入陰離子,因此陰離子對DNA的作用顯得不可忽略。Saito等[12],Yoshikawa等[13-14]用熒光顯微鏡對DNA的單分子觀察發(fā)現(xiàn),單個DNA鏈在凝聚中經(jīng)歷了一個大的離散型轉(zhuǎn)變,具有高價態(tài)的陰離子會使DNA變成線圈態(tài)而不是凝聚態(tài)。將這種轉(zhuǎn)變歸因于DNA表面離子對的形成,在多價態(tài)陰離子存在時,由于其大的帶電量,導(dǎo)致溶液中更多的陽離子與其形成離子對而不能結(jié)合在DNA表面繼而影響DNA凝聚過程。Duc等[15]用Monte Carlo模擬方法證明在有陰離子的情況下,DNA 凝聚層表面的負電荷濃度略高導(dǎo)致了DNA過度充電的顯著減少。龔紅玲[16]利用等溫滴定量熱法定量研究DNA凝聚過程中溫度效應(yīng)及離子濃度效應(yīng),用NaCl,NaF,Na2SO4,Na3PO4作用于精胺導(dǎo)致的DNA凝聚,結(jié)果發(fā)現(xiàn)精胺與DNA的結(jié)合常數(shù)從左到右依次逐漸減小,這表明陰離子對陽離子介導(dǎo)DNA 凝聚有抑制作用,而且抑制凝聚能力由大到小依次為PO43-,SO42-,F(xiàn)-,Cl-。蔣楊偉[17]依托分子動力學(xué)方法研究了粗?;P拖码p鏈DNA與帶正電樹枝狀分子復(fù)合物的相變行為,證明高價態(tài)陰離子的加入改變了DNA樹枝狀分子周圍的電荷空間分布,削弱了雙鏈DNA與樹枝狀分子的靜電相互作用,樹枝狀分子表層的電荷反轉(zhuǎn)引發(fā)了DNA與樹枝狀分子的吸附/解吸轉(zhuǎn)變。

        雖然前人已經(jīng)做了大量關(guān)于陰離子對DNA凝聚影響的研究,但大都依賴于計算機模擬,并沒有通過實驗直觀地反映出陰離子作用的DNA的形貌的變化以及DNA表面電荷的中和情況。本文通過動態(tài)光散射(dynamic light scattering,DLS)和原子力顯微鏡(atomic force microscope,AFM)技術(shù),定量地研究了不同價態(tài)陰離子對陽離子中和DNA表面電荷的影響和對陽離子介導(dǎo)的DNA凝聚形貌的影響。結(jié)果表明,陰離子可以抑制DNA的凝聚,而且價態(tài)越高,抑制作用越強。

        1 實驗儀器與材料

        1.1 實驗儀器

        Zetasizer nano ZS90 動態(tài)光散射裝置(英國Malvern Instrument Ltd);Malvern DTS1070樣品池(英國Malvern Instrument Ltd.);NanoWizard Ⅲ原子力顯微鏡(德國 JPK instrument AG公司);NCHR-50原子力探針(瑞士Nano World公司)。實驗清洗儀器和配置藥品的超純水從Milli-Q純水機(Millipore,Billerica,MA,USA)獲得。

        1.2 實驗材料

        雙鏈λ-DNA(英國New England Biolabs);TRIS (hydhoxymethy) aminomethane,氯化精胺(C10H24N4Cl4),氯化鈉(NaCl),六水合氯化鎂(MgCl2·6H2O)購自美國Sigma-aldrich公司,純度>99%,無需進一步純化即可使用。無水硫酸鈉(Na2SO4)、檸檬酸鈉(Na3C6H5O7·2H2O)、無水硫酸鎂(MgSO4)、檸檬酸鎂(C12H10Mg3O14)購自上海麥克林生化有限公司,純度> 99%。濃度為10 mmol/L的TRIS緩沖液用作配置藥品的原液和DNA的緩沖液。所有測量至少重復(fù)兩次以獲得一致的結(jié)果。在實驗中所用到的材料還有載玻片、離心管、注射器、槍頭、云母、培養(yǎng)皿等。

        2 實驗原理與方法

        2.1 動態(tài)光散射裝置

        DLS通過樣品池可測量樣品的電泳遷移率,所謂的電泳意味著聚電解質(zhì)在施加電場的情況下沿著與正電荷相反的方向轉(zhuǎn)移,同介質(zhì)中的平衡離子作相對運動的現(xiàn)象。動態(tài)光散射是通過測量物質(zhì)被光照后出現(xiàn)的散射光的各項參數(shù)變化來研究粒子的大小和帶電情況的[18],具有測量有效率高、可重復(fù)性好、準確度高等優(yōu)點。動態(tài)光散射測量裝置如圖1所示。

        圖1 動態(tài)光散射裝置結(jié)構(gòu)示意圖Fig.1 Diagram of dynamic light scattering

        其相關(guān)測量原理如下:

        (1)

        其中f(κr)是κr的函數(shù), 稱為Henry函數(shù),r是粒子半徑,1/κ是德拜長度;η為介質(zhì)的黏度系數(shù);ζ是Zeta電勢,ε是介質(zhì)的介電常數(shù)。利用DLS技術(shù),被測粒子的Zeta電位將直接被測得,通過式(1)就能算得被測粒子的電泳遷移率。DLS技術(shù)廣泛地應(yīng)用于研究DNA與平衡離子之間的相互作用。

        2.2 原子力顯微鏡

        本實驗使用的AFM其內(nèi)部設(shè)有自動機器人和一架控制裝置,還有一個BioScience溫控系統(tǒng)和NanoScience系統(tǒng)(圖2)。AFM的組成部分有檢測系統(tǒng)、光電檢測器、掃描系統(tǒng)、探針、反饋控制系統(tǒng)?;境上衲J接薪佑|成像模式、非接觸成像模式、輕敲模式。原子力顯微鏡成像是通過一個非常尖銳的尖端掃描樣品表面,而尖端和樣品之間相互作用的力則是通過皮牛級力的靈敏度來監(jiān)測的。樣品被安裝在壓電掃描器上,該掃描器可確保高分辨率的三維定位,并且通過使用光學(xué)方法(激光、光電二極管)測量懸臂梁撓度來監(jiān)測尖端和表面之間的力[19]。

        圖2 激光檢測原子力顯微鏡探針工作示意圖Fig.2 Laser detection of the AFM probe

        2.3 樣品制備

        2.3.1 動態(tài)光散射實驗樣品制備

        用TRIS緩沖液將待測藥品分別稀釋為不同濃度比例,然后各取1000 μL到不同的離心管中,再依次向溶液中加2 μL-DNA,放在微型旋轉(zhuǎn)儀上等待20~30 min后,將其注入Zeta樣品池中,放入DLS中進行實驗。每次測試完后,將樣品池中溶液倒掉,更換不同濃度的溶液前,用注射器抽取去離子水沖洗至少3次,以免影響實驗結(jié)果精度。

        2.3.2 原子力顯微鏡實驗樣品制作

        用雙面膠將邊長約1 cm的小正方形云母片貼在載玻片的中心,之后使用磨砂膠帶貼在云母片上逐層撕去直到得到表面平整的樣品。取20 μL待測混合溶液滴在云母片上,靜置3~5 min后用移液器緩緩從一角吸走余液,然后取30 μL去離子水清洗殘留藥品,如此清洗10~12次,最后用氮氣吹干并將樣品放入干凈的培養(yǎng)皿中。實驗樣品詳細制備步驟如圖3所示。

        圖3 原子力顯微鏡樣品制備步驟示意圖Fig.3 Procedure of sample preparation for AFM

        3 實驗結(jié)果

        3.1 不同價態(tài)陰離子對DNA表面電荷中和的影響

        為了研究不同價態(tài)陰離子對陽離子中和DNA表面電荷過程的影響,在DLS實驗中用Cl-,SO42-,C6H5O73-作為陰離子,同時也有Na+或Mg2+存在溶液中,由于一價陽離子和二價陽離子都不能使DNA電荷逆轉(zhuǎn),所以我們給每組溶液中加入了0.05 mmol/L含四價陽離子的氯化精胺(C10H24N4Cl4)作為DNA凝聚劑,查看DNA在不同價態(tài)陰離子下的電泳遷移率(圖4)。圖4中NaCl濃度從左至右依次為3,6,9,12,15,18 mmol/L,Na2SO4濃度從左至右依次為1.5,3,4.5,6,7.5,9 mmol/L,Na3C6H5O7濃度從左至右依次為1,2,3,4,5,6 mmol/L。由圖4可以看出,NaCl的電泳遷移率總是大于Na2SO4,而Na3C6H5O7在各點都是處于最小值。圖5是將溶液中的單價鈉鹽改為二價鎂鹽所得的各種混合溶液的DNA電泳遷移率。其中每組溶液仍加入0.05 mmol/L C10H24N4Cl4作為DNA凝聚劑,圖5中MgCl2濃度從左至右依次為1.5,3,4.5,6,7.5,9 mmol/L,MgSO4濃度從左至右依次為1.5,3,4.5,6,7.5,9 mmol/L,Mg3(C6H5O7)2濃度從左至右依次為0.5,1,1.5,2,2.5,3 mmol/L。在圖中看到相同陽離子濃度下,MgCl2的電泳遷移率總是大于MgSO4,而Mg3(C6H5O7)2在各點都是處于最小值。圖4、圖5均表明價態(tài)越高的陰離子對DNA表面電荷的中和作用抑制越強,可以看出隨著單價鹽和二價鹽濃度的增加,混合物溶液的電泳遷移率都在緩慢升高,但是始終沒有使DNA電荷逆轉(zhuǎn)。

        圖4 0.05 mmol/L C10H24N4Cl4與含有不同價態(tài)陰離子的單價鹽溶液對DNA電泳遷移率的影響Fig.4 Effects of 0.05 mmol/L C10H24N4Cl4 and monovalent salt solution containing anions of different valencies on DNA electrophoretic mobility

        圖5 0.05 mmol/L C10H24N4Cl4與含有不同價態(tài)陰離子的二價鹽溶液對DNA電泳遷移率的影響Fig.5 Effects of 0.05 mmol/L C10H24N4Cl4 and divalent salt solution containing anions of different valencies on DNA electrophoretic mobility

        3.2 在不同價態(tài)陰離子存在下,陽離子與DNA復(fù)合物形態(tài)的AFM成像

        由3.1節(jié)可見,陰離子可以使氯化精胺導(dǎo)致的DNA的電泳遷移率變小,對DNA的電荷中和有抑制作用,而且陰離子價態(tài)越高,對電泳遷移率的抑制作用越強。實驗中改變陽離子種類但控制相同的陽離子濃度,發(fā)現(xiàn)陰離子對DNA的電荷中和有同樣的抑制作用,而且也是有相同的趨勢。為了進一步分析陰離子對DNA凝聚作用的影響,通過AFM觀察了在不同價態(tài)陰離子下DNA凝聚體的形貌圖。同樣地,用氯化精胺作為DNA凝聚劑,引入Cl-,SO42-,C6H5O73-作不同價態(tài)的陰離子,同時引入了Na+或者Mg2+。不同價態(tài)陰離子在單價鹽溶液中對DNA- C10H24N4Cl4作用后的形態(tài)如圖6(b)~6(d)所示,圖6(a)作為對照只加入了0.01 mmol/L C10H24N4Cl4。圖6(b)~6(d)中對應(yīng)的溶液分別為60 mmol/L NaCl,30 mmol/L Na2SO4,20 mmol/L Na3C6H5O,都加入0.01 mmol/L C10H24N4Cl4。從圖6(a)可以看出,當只加入0.01 mmol/L C10H24N4Cl4時,DNA開始縮合呈現(xiàn)為即將凝聚的狀態(tài)。而在圖6(b)中DNA的凝聚形態(tài)變化也不是很大,可見60 mmol/L NaCl對DNA的凝聚形態(tài)影響很??;當在圖6(a)的基礎(chǔ)上加入30 mmol/L Na2SO4時,AFM形態(tài)如圖6(c)所示,盡管DNA已經(jīng)凝聚,但凝聚程度沒有圖6(a)強;圖6(d)顯示結(jié)果為DNA凝聚現(xiàn)象更弱??梢娫谙嗤琋a+濃度下,高價陰離子相對低價陰離子,對DNA凝聚的抑制作用更強,使DNA的凝聚形態(tài)變得更加松散,進一步證實了有陰離子存在下,陽離子導(dǎo)致的DNA凝聚效果會減弱。

        圖6 不同陰離子存在下C10H24N4Cl4和 Na+ 導(dǎo)致的DNA凝聚AFM圖像Fig.6 AFM images of DNA condensation induced by C10H24N4 Cl4 and Mg2+ in the present of different co-ions

        同樣,將帶有不同價態(tài)陰離子的二價鹽加入0.01 mmol/L C10H24N4Cl4-DNA中,AFM測得的DNA形態(tài)如圖7所示,圖7(a)~7(c)中對應(yīng)的化合物濃度分別為27 mmol/L MgCl2,27 mmol/L MgSO4,9 mmol/L C12H10Mg3O14,然后在每種溶液中都加入0.01 mmol/L C10H24N4Cl4。圖7(a)與圖6(a)相比,DNA從花狀結(jié)構(gòu)變成了網(wǎng)狀形態(tài),說明DNA- C10H24N4CL4復(fù)合物在加入Mg2+后會促進凝聚,凝聚效果更明顯,主要原因是二價陽離子存在后,可作為云母連接DNA的橋梁,從而使多價陽離子更好地起到凝聚的效果;相對于圖7(a),圖7(b)DNA凝聚作用有稍微減弱;圖7(c)相對于圖7(b)的DNA凝聚作用變得更弱,說明在陰離子存在下,濃度相同的二價陽離子與精氨離子共同作用的DNA凝聚程度會降低,并且陰離子價態(tài)越高,對DNA凝聚程度的抑制作用越大。

        圖7 不同陰離子存在下C10H24N4Cl4和Mg2+ 導(dǎo)致的DNA凝聚AFM圖像Fig.7 AFM images of DNA condensation induced by C10H24N4 Cl4 and Mg2+ in the present of different co-ions

        4 結(jié)論

        本文通過動態(tài)光散射和原子力顯微鏡實驗研究了DNA的電泳遷移率變化和DNA形貌的變化,較為系統(tǒng)地證明了在單價或者二價陽離子與C10H24N4Cl4存在下陰離子對DNA凝聚作用的影響。結(jié)果表明,陰離子阻礙了陽離子中和DNA表面電荷的過程,并且抑制了DNA的凝聚。原因是溶液中的陰離子會結(jié)合陽離子形成離子對,與低價的陰離子相比,高價的陰離子在DNA表面結(jié)合更多的陽離子形成了離子對,阻止了溶液中的陽離子結(jié)合DNA表面的負電荷,繼而抑制了DNA的電荷中和與凝聚過程。通過陰離子作用的DNA表面電荷的變化和DNA形貌圖的觀察,本研究可以為進一步研究陰離子對DNA凝聚過程的影響提供一些理論指導(dǎo),同時,陰離子對DNA的抑制凝聚作用在基因治療領(lǐng)域也成為了一個不可忽略的因素。

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