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        松露多糖的提取、分離純化和結(jié)構(gòu)鑒定

        2020-09-03 02:04:18李美鳳袁明昊鄒仕赟郭力
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2020年16期
        關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)

        李美鳳,袁明昊,鄒仕赟,郭力*

        1(成都中醫(yī)藥大學(xué) 藥學(xué)院,四川 成都, 611137)2(成都中醫(yī)藥大學(xué) 公共衛(wèi)生學(xué)院,四川 成都, 611137)

        松露(Truffle)屬子囊菌門西洋塊菌科西洋塊菌屬,是非常珍貴和稀有的食用菌[1-2]。松露營養(yǎng)豐富,富含蛋白質(zhì)、多種氨基酸、維生素和礦物質(zhì)等[3-4]。多糖是松露中最重要的成分之一,松露多糖有較高的抗氧化活性,可作為天然的抗氧化劑用于功能食品,松露多糖還有免疫調(diào)節(jié)活性、抗腫瘤活性和抗癌作用[5-6]。目前,國內(nèi)關(guān)于松露的研究大都集中在對真松露和假松露從外形、氣味、孢子形態(tài)進(jìn)行鑒別以及對松露的揮發(fā)性物質(zhì)的探索方面,對松露多糖的研究不多。本實(shí)驗(yàn)以四川會東松露為原料,優(yōu)化松露多糖的提取工藝,過DEAE-52纖維素柱對多糖進(jìn)行分級分離,利用1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)法對其抗氧化性進(jìn)行測定,并通過紅外光譜對松露多糖的結(jié)構(gòu)進(jìn)行初步鑒定,旨在為松露多糖資源的綜合利用提供一定參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        松露:四川會東縣嘎吉鄉(xiāng),收集時(shí)間為2019年12月10日,經(jīng)鑒定為中華塊菌;各種單糖標(biāo)準(zhǔn)品,DEAE-Sepharose 52,Solarbio;NaCl、H2SO4、DPPH、苯酚,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        101-2AB恒溫干燥箱,北京中興偉業(yè)儀器有限公司;多模式微孔板檢測儀(酶標(biāo)儀),美國Bio-Tek;GC-MS-QP2010 SE,日本島津。

        1.3 方法

        1.3.1 松露多糖的提取及測定

        1.3.1.1 多糖含量的測定

        采用苯酚-硫酸法測定粗多糖含量,參考文獻(xiàn)[7],葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=6.828 6x-0.009,R2=0.999。

        1.3.1.2 松露提取工藝優(yōu)化

        新鮮松露洗凈,切片后,放置于60 ℃烘箱中烘干,打粉過40目篩,備用。稱取松露干粉,按比例加入蒸餾水,在加熱過程中不斷攪拌,收集上清液;醇沉(乙醇體積分?jǐn)?shù)為80%),4 ℃過夜沉淀;離心收集沉淀,冷凍干燥后得松露粗多糖。

        單因素試驗(yàn):選取提取時(shí)間(0.5、1.0、1.5、2.0和2.5 h)、提取溫度(60、70、80、90、100 ℃)和料液比(1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50, g∶mL),探究松露多糖在不同條件下的提取率。

        正交優(yōu)化試驗(yàn):以多糖提取量為參考,綜合上述單因素試驗(yàn)結(jié)果,設(shè)計(jì)3因素3水平正交試驗(yàn),見表1。

        表1 正交試驗(yàn)因素與水平

        1.3.2 脫蛋白方法和蛋白質(zhì)含量得測定

        蛋白質(zhì)含量采取考馬斯亮藍(lán)的方法,具體操作步驟見參考文獻(xiàn)[8],標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.166 8x+0.676 8,R2=0.998,x代表蛋白質(zhì)量濃度(μg/mL);Sevag法脫除蛋白,其中正丁醇-氯仿混合液體積比1∶4,重復(fù)5次,測蛋白質(zhì)含量[9]。

        1.3.3 松露多糖的分級分離

        準(zhǔn)確稱取400 mg 松露多糖溶于6 mL去離子水中,過膜后加入纖維素層析柱(2.6 cm×50 cm),用去離子水、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mol/L NaCl溶液進(jìn)行梯度洗脫。流速為 1 mL/min,5 min/管,各個(gè)濃度收集20管。在490 nm下測吸光度值,繪制曲線。由圖2可以看出,松露多糖的洗脫峰有2個(gè),出現(xiàn)在0.2 mol/L 和0.3 mol/L NaCl溶液洗脫液中,分別命名為TPS-A和 TPS-B,適當(dāng)濃縮后裝入3 000 kDa透析袋中透析,封好口后,置于4 ℃超純水中透析48 h,除去氯化鈉,6~8 h更換1次超純水,凍干[12]。

        1.3.4 松露粗多糖抗氧化性的測定

        DPPH自由基(DPPH·)清除能力:對純化后得到的TPS-A松露多糖參照參考文獻(xiàn)[11]的方法進(jìn)行測定,DPPH·清除率按公式(1)計(jì)算:

        (1)

        式中:A0為無TPS-A多糖的混合液的吸光度;A為有TPS-A多糖混合液的吸光度;Ab為無DPPH樣品的吸光度。

        1.3.5 單糖組成的測定

        取2 mg多糖,1 mL的2 mol/L三氟乙酸在120 ℃條件下水解90 min,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸干。殘基加入2 mL雙蒸水,100 mg硼氫化鈉還原,加入冰醋酸中和,旋蒸,110 ℃烘箱烘干,然后加入1 mL乙酸酐乙?;?00 ℃反應(yīng)1 h,冷卻,然后加入3 mL甲苯,減壓濃縮蒸干,重復(fù)4~5次,以除去多余的醋酐。將乙?;蟮漠a(chǎn)物用3 mL氯仿溶解后轉(zhuǎn)移至分液漏斗,加入少量蒸餾水充分震蕩后,除去上層水溶液,如此重復(fù)5次。氯仿層以適量的無水硫酸鈉干燥,定容10 mL,分析采用Shimadzu GCMS-QP 2010氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀測定乙?;a(chǎn)物樣品[13]。

        GC-MS條件:RXI-5 SIL MS色譜柱30 mm×0.25 mm×0.25 mm;程序升溫條件為:起始溫度120 ℃,以3 ℃/min升溫至250 ℃/min;保持5 min;進(jìn)樣口溫度為250 ℃,檢測器溫度為250 ℃/min,載氣為氦氣,流速為1 mL/min。其中標(biāo)準(zhǔn)品順序?yàn)椋菏罄钐?、巖藻糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖。

        1.3.6 傅里葉紅外光譜分析(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)TIR)

        將多糖與KBr研磨均勻后,壓片,在4 000~400 cm-1范圍內(nèi)進(jìn)行掃描[14]。

        1.3.7 TPS-A的掃描電鏡(scanning electron microscope, SEM)分析

        將TPS-A與樣品載物臺緊密貼合,使其均勻分布于表面,隨后噴金,用掃描電鏡進(jìn)行觀察,具體操作步驟參考文獻(xiàn)[15]。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        本實(shí)驗(yàn)應(yīng)用Origin 2018和Excel 2010進(jìn)行圖形繪制和數(shù)據(jù)分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 松露多糖提取工藝優(yōu)化結(jié)果

        2.1.1 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        由圖1-a可知,多糖提取率隨提取時(shí)間的延長而逐漸增加,至2 h時(shí)達(dá)到最大,超過2 h,多糖提取率降低,原因是隨著加熱時(shí)間的增加,不溶物及黏性物質(zhì)等溶出,雜質(zhì)和黏度增加,且有助于其他水溶性物質(zhì)如色素、蛋白等溶出,從而影響了松露多糖的提取率[16];由圖1-b可知,在90 ℃時(shí)多糖提取率最大,多糖提取率為9.28%,超過90 ℃后,提取率降低,可能是溫度高,水分蒸發(fā),溶液變黏稠,多糖溶解難度增加;溫度低,小分子之間的活動(dòng)不劇烈,多糖得率下降[17];由圖1-c可以看出,多糖提取率在料液比為130(g∶mL)時(shí)達(dá)到最大,超過1∶30(g∶mL)后,多糖提取率下降。所以,選擇料液比1∶30~1∶50(g∶mL)、加熱時(shí)間1.0~2.0 h、提取溫度80~100 ℃進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。

        a-提取時(shí)間;b-提取溫度;c-料液比圖1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        2.1.2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        由表2可知,3個(gè)因素對松露粗多糖得率的影響大小排序?yàn)锽>A>C,即提取溫度對粗多糖得率的影響>提取時(shí)間>料液比。由k值得到最優(yōu)水平為A3B1C2,最佳提取工藝組合為提取時(shí)間為2 h,提取溫度為80℃,料液比為1∶40(g∶mL)。

        表2 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析

        2.2 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

        最優(yōu)提取條件A3B1C2并未在正交試驗(yàn)中出現(xiàn),需要補(bǔ)充實(shí)驗(yàn)對比L9(33)中A3B1C3和A3B1C2的多糖提取率,實(shí)驗(yàn)結(jié)果為:A3B1C3為(9.83±0.04)%,A3B1C2為(9.74±0.06)%。根據(jù)提取率的高低,確定最優(yōu)提取條件為A3B1C2,即提取時(shí)間為2 h,提取溫度為80 ℃,料液比為1∶40(g∶mL),松露粗多糖的提取率為9.83%,高于李明華等[18]對江蘇等地金針菇中多糖的提取率(6.85%)和張麗娟等[19]對武夷山產(chǎn)長根菇多糖的提取率(5.85%),低于叢媛媛等[20]對新疆阿魏菇中的多糖提取率(14.69%);從提取方法來看,與孔慶龍[21]的松露多糖的得率接近(10.75%),但孔慶龍[21]的提取時(shí)間長(3.7 h),料液比大(1∶59,g∶mL),延長了后續(xù)的濃縮、乙醇沉淀和冷凍干燥的實(shí)驗(yàn)周期,且增加了溶劑(乙醇、正丁醇和氯仿)的使用量;賴婷[10]研究發(fā)現(xiàn)提取次數(shù)的增加能提高松露多糖的得率,但同時(shí)延長了實(shí)驗(yàn)周期,賴婷將提取次數(shù)調(diào)整為3次,多糖提取率從5%增加到10%左右,但提取時(shí)間增加到6 h,是本文提取時(shí)間的3倍。綜上所述,適當(dāng)縮短提取時(shí)間將有助于縮短實(shí)驗(yàn)周期,減少能耗,降低生產(chǎn)成本,符合工業(yè)生產(chǎn)要求,同時(shí)料液比1∶40(g∶mL),減少后續(xù)脫蛋白的正丁醇和氯仿的使用量,既能減少溶劑的浪費(fèi)也能使工藝更簡單易操作,故此工藝可行且環(huán)保。

        2.3 多糖的分級結(jié)果

        前期實(shí)驗(yàn)對NaCl濃度梯度的分離效果進(jìn)行了預(yù)實(shí)驗(yàn),適當(dāng)?shù)恼{(diào)整了濃度梯度,由圖2可以看出,0、0.1~0.5 mol/L的NaCl對多糖的分離效果明顯,松露多糖經(jīng)DEAE-52纖維素柱層析分離后出現(xiàn)2個(gè)峰,分別為TPS-A、TPS-B,收集第41~53管為TPS-A,第75~83管為TPS-B,過柱后TPS-B含量較少,故后續(xù)僅對TPS-A進(jìn)行研究,經(jīng)檢測TPS-A的總糖含量為75.26%,蛋白質(zhì)含量占總質(zhì)量的1.32%。

        圖2 多糖DEAE-52纖維素柱洗脫曲線

        2.4 松露多糖的抗氧化結(jié)果

        由圖3可知,TPS-A和VC對DPPH·清除率效果較好。低濃度(0.125 mg/mL)VC的DPPH·清除率也能保持在80%;松露多糖的DPPH·清除率隨著多糖濃度的增加緩慢升高。TPS-A對DPPH·的IC50為0.98 mg/mL;和劉宇琪等[22]實(shí)驗(yàn)中靈芝多糖的清除率接近(IC50為1 mg/mL),鄧加聰?shù)萚23]通過超聲水溶液提取牛肝菌多糖的DPPH·的IC50為1.03 mg/mL;DPPH·的IC50的多糖濃度越低,清除效率越好,因此,松露多糖TPS-A具有較高的抗氧化活性。

        圖3 松露多糖對DPPH·的清除作用

        2.5 單糖的組成

        由圖4可知,TPS-A的組成主要為鼠李糖、甘露糖和葡萄糖,按照出峰時(shí)間的先后順序分別對應(yīng)圖4-b中的1、5和6,所占比例分別為2%、3%和95%。松露多糖 TPS-A 的單糖組成與王小花[26]研究的松露多糖的單糖組成結(jié)果類似,葡萄糖含量占90%以上,另有少量甘露糖和半乳糖;孔慶龍[21]發(fā)現(xiàn)純化后的松露多糖主要是由葡萄糖組成的多糖,這也證實(shí)松露多糖 TPS-A 中葡萄糖的含量較高檢測準(zhǔn)確。

        圖4 標(biāo)準(zhǔn)單糖、TPS-A水解衍生化產(chǎn)物的GC圖

        2.6 松露多糖TPS-A 的FTIR掃描結(jié)果

        圖5 TPS-A的傅里葉紅外光譜圖

        2.7 TPS-A掃描電鏡結(jié)果

        圖6-a、圖6-b、圖6-c分別為TPS-A在100、30、5 μm放大倍數(shù)下的電鏡掃描圖像,可知冷凍干燥和提取工藝并未對多糖的結(jié)構(gòu)造成破壞。由圖6-a可知,TPS-A主要由長桿狀、圓形顆粒和大塊的片狀組成,其中長桿狀的數(shù)量多且呈網(wǎng)狀排列,在長桿狀的周圍零星分布著圓形顆粒,顆粒大小接近于長桿的橫截面,片狀結(jié)構(gòu)體積大,但數(shù)量少,表面光滑;由圖6-b可更清晰的觀察到長桿狀相互纏繞,并和圓形顆粒相互重疊,內(nèi)部空間結(jié)構(gòu)疏松,故多糖的吸水效果好;由圖6-c中可以看出,圓形顆粒表面光滑,顆粒外形完整,數(shù)量多。

        圖6 TPS-A不同放大倍數(shù)掃描電鏡圖

        3 結(jié)論

        本文對松露粗多糖的水提醇沉工藝進(jìn)行了優(yōu)化,通過正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化松露多糖提取工藝為:提取時(shí)間2 h、料液比1∶40(g∶mL)和提取溫度80 ℃,此條件下的多糖提取量為9.83%;后采用DEAE-52纖維素柱層析分離得到2個(gè)不同的組分,分別為TPS-A和TPS-B,其中TPS-B量少,后續(xù)僅對TPS-A進(jìn)行結(jié)構(gòu)鑒定和抗氧化實(shí)驗(yàn)。TPS-A對DPPH·的IC50值為0.98 mg/mL,同時(shí)測得松露多糖TPS-A是由甘露糖、葡萄糖和鼠李糖組成,且葡萄糖含量高達(dá)95%,經(jīng)紅外檢測分析發(fā)現(xiàn)TPS-A是一種含有β糖苷鍵的吡喃型多糖。松露多糖在抗氧化活性方面表現(xiàn)優(yōu)異,作為一種天然的食品成分,可用于醫(yī)學(xué)美容、保健品和食品添加劑方面,這為四川會東松露多糖的綜合開發(fā)提供思路。

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