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        衢枳殼總黃酮提取工藝的優(yōu)化及其抗氧化活性

        2020-08-04 12:30:56劉小娟方月娟夏道宗王思為
        中成藥 2020年7期
        關(guān)鍵詞:枳殼清除率黃酮

        劉小娟,方月娟,夏道宗,王思為

        (1.衢州市婦幼保健院,浙江衢州 324000; 2.浙江中醫(yī)藥大學(xué),浙江杭州 310053; 3.衢州市人民醫(yī)院,浙江衢州 324000)

        常山胡柚是蕓香科柑橘屬植物柚與甜橙的雜交品種,主要產(chǎn)自浙江省衢州市常山縣,為我國特有品種[1],其干燥未成熟果實(shí)于2016 年8 月以“衢枳殼”之名被納入2015 年版《浙江省中藥炮制規(guī)范》,可以作為中藥使用[2],在2018 年3 月又被浙江省經(jīng)濟(jì)和信息化委員會列入“新浙八味”中藥材培育品種名單[3]。衢枳殼性微寒,味苦、辛、酸,具有寬胸理氣、止咳化痰、清熱解毒、抗氧化等功效,其主要成分是黃酮類、揮發(fā)性成分[4-6],但目前對其報(bào)道較少[7]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用正交試驗(yàn)優(yōu)化衢枳殼總黃酮提取工藝,并研究其抗氧化活性,以期為該藥材開發(fā)應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

        1 材料

        1.1 試劑與藥物 衢枳殼購于衢州南孔中藥有限公司,經(jīng)衢州市藥品食品檢驗(yàn)研究院宋劍鋒主任中藥師鑒定為正品。DPPH、ABTS 自由基購于美國Sigma-Aldrich 公司;蘆?。兌?5%) 對照品購于上海源葉生物科技有限公司;抗壞血酸購于廣東光華化學(xué)廠有限公司。冰醋酸、無水乙醇購于國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;95%乙醇購于上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;5% NaNO2、10% Al (NO)3、NaOH 等均為分析純。

        1.2 儀器 FA2004 型電子天平、752 型紫外分光光度計(jì)(上海菁海儀器有限公司);KQ-250DE 型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);Mill-Q 型去離子水制備系統(tǒng)(美國Millipore 公司)。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 總黃酮含有量測定 參考文獻(xiàn)[8]報(bào)道。精密稱取95% 蘆丁對照品15.0 mg,置于100 mL量瓶中,乙醇溶解定容至0.15 mg/mL,精密吸取0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 mL 至另一量瓶中,30% 乙醇定容至5 mL,加入5% NaNO2溶液0.50 mL,振搖后靜置5 min,加入10%Al (NO3)3溶液0.30 mL,振搖后放置6 min,加入1.0 mol/mL NaOH 溶液2.0 mL,30%乙醇定容至10 mL,混合均勻,15 min 后在510 nm 波長處測定吸光度。以蘆丁含有量為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo)(A)進(jìn)行回歸,得方程為A=0.000 8X-0.008 1(R2=0.999 1),在0~600 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        取衢枳殼適量,60 ℃下烘干后粉碎,過40 目篩,精密稱取10.00 g,加入一定體積分?jǐn)?shù)乙醇混合均勻后在適當(dāng)溫度下提取一段時(shí)間,靜置冷卻,濾過,置于50 mL 量瓶中,乙醇定容,得到供試品溶液,取1 mL,在510 nm 波長處測定吸光度,計(jì)算提取率,公式為提取率=m1/M×100% (m1為總黃酮質(zhì)量,M為藥材質(zhì)量),其中m1=供試液中總黃酮含有量×供試液體積×稀釋倍數(shù)。

        2.2 單因素試驗(yàn)

        2.2.1 乙醇體積分?jǐn)?shù) 取5 g 衢枳殼,固定料液比為1∶20,在80 ℃下加入60%、65%、70%、75%、80%乙醇提取2 h,結(jié)果見圖1。由此可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)在60%~75%范圍內(nèi)時(shí)總黃酮提取率隨著其升高而增加,在75% 時(shí)最高,為5.68%,但進(jìn)一步升高時(shí)提取率反而逐漸降低。因此,選擇70%、75%、80%進(jìn)行試驗(yàn)。

        圖1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對總黃酮提取率的影響Fig.1 Effect of ethanol concentration on the extraction rate of total flavonoids

        2.2.2 提取時(shí)間 取5 g 衢枳殼,加入60%乙醇,固定料液比為1∶20,在80 ℃下提取1、1.5、2、2.5、3 h,結(jié)果見圖2。由此可知,提取1~2 h 時(shí)總黃酮提取率升高不明顯;2 h 后提取率升高程度較快,在2.5 h 時(shí)最高,為4.74%;進(jìn)一步延長時(shí)提取率升高程度緩慢,甚至有下降趨勢,可能與溶劑對總黃酮的溶解達(dá)到飽和所致。因此,選擇2、2.5、3 h 進(jìn)行試驗(yàn)。

        圖2 提取時(shí)間對總黃酮提取率的影響Fig.2 Effect of extraction time on the extraction rate of total flavonoids

        2.2.3 料液比 取5 g 衢枳殼,加入60% 乙醇,在80 ℃下按料液比1∶15、1∶20、1∶25、1∶30提取2 h,結(jié)果見圖3。由此可知,料液比在1∶10~1∶20 范圍內(nèi)時(shí)總黃酮提取率升高程度緩慢;增加至1∶25 時(shí)提取率最高,為4.61%;大于1∶25 時(shí)提取率略有上升,但程度不明顯。因此,選擇1∶20、1∶25、1∶30 進(jìn)行試驗(yàn)。

        圖3 料液比對總黃酮提取率的影響Fig.3 Effect of solid-liquid ratio on the extraction rate of total flavonoids

        2.2.4 提取溫度 取5 g 衢枳殼,加入60%乙醇,固定料液比為1∶20,在60、65、70、75、80、85 ℃下提取2 h,結(jié)果見圖4。由此可知,初期隨著提取溫度增加,總黃酮提取率不斷升高,在75 ℃時(shí)最高;繼續(xù)增加時(shí)提取率不升反降,其原因可能是溫度過高導(dǎo)致總黃酮部分被破壞。因此,選擇70、75、80 ℃進(jìn)行試驗(yàn)。

        圖4 提取溫度對總黃酮提取率的影響Fig.4 Effect of extraction temperature on the extraction rate of total flavonoids

        2.3 正交試驗(yàn) 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)(A)、提取時(shí)間(B)、料液比(C)、提取溫度(D) 作為影響因素,總黃酮提取率(Y)作為評價(jià)指標(biāo)[8],采用L9(34) 正交表設(shè)計(jì)試驗(yàn)。因素水平見表1,結(jié)果見表2,方差分析見表3。

        表1 因素水平Tab.1 Factors and levels

        由此可知,各因素影響程度依次為料液比(C) >提取溫度(D) >乙醇體積分?jǐn)?shù)(A) >提取時(shí)間(B),因素C對總黃酮提取率有顯著影響(P<0.05),而其他3 種因素影響不顯著(P>0.05)。結(jié)合表2 可知理論最佳組合為A3B1C3D3,但提取溫度對提取率無明顯影響,而且其過高會對總黃酮造成一定破壞,故選擇其為80 ℃ (D2)。最終確定,最優(yōu)工藝為料液比1∶30,提取溫度80 ℃,乙醇體積分?jǐn)?shù)80%,提取時(shí)間2 h,總黃酮提取率為6.2%。

        表2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Tab.2 Design and results of tests

        表3 方差分析Tab.3 Analysis of variance

        2.4 驗(yàn)證試驗(yàn) 稱取2 g 衢枳殼,按“2.3”項(xiàng)下優(yōu)化工藝提取3 次,測得總黃酮提取率分別為6.19%、6.20%、6.23%,平均6.21%,與預(yù)測值6.2%接近,表明工藝穩(wěn)定可靠,重復(fù)性好。

        2.5 體外抗氧化活性研究

        2.5.1 清除DPPH 自由基 參考文獻(xiàn)[9-11]報(bào)道,并略作調(diào)整。精密稱取DPPH 自由基20 mg,250 mL 無水乙醇定容至2×10-4mol/L。取不同質(zhì)量濃度總黃酮溶液各2 mL,在同一具塞管中加入上述DPPH 溶液,振搖混勻,室溫避光條件下靜置30 min,以無水乙醇為對照,在517 nm 波長處測定其吸光度Aa;取上述DPPH 溶液與等體積(2 mL)無水乙醇的混合液,以及不同質(zhì)量濃度總黃酮溶液與等體積(2 mL) 無水乙醇的混合液,在517 nm 波長處分別測定吸光度Ac、Ab,計(jì)算清除率,公式為清除率= { [1-(Aa-Ab)]/Ac} ×100%,并求得IC50,通過Graphpad Prism6 軟件進(jìn)行處理,結(jié)果見圖5。由此可知,隨著總黃酮溶液質(zhì)量濃度升高,其清除DPPH 自由基的能力逐漸增強(qiáng),在5~1 000 μg/mL 范圍內(nèi)的清除率由7.58%升至88.537%。

        圖5 總黃酮對DPPH 自由基的清除能力Fig.5 Scavenging capacity of total flavonoids on DPPH free radical

        2.5.2 清除ABTS 自由基 參考文獻(xiàn)[12]報(bào)道。將ABTS 自由基事先配成0.087 5 mmol/L 溶液,以0.4 mL 70%乙醇為對照品;取不同質(zhì)量濃度總黃酮溶液0.4 mL,移入3.6 mL 上述溶液中,渦旋混合后置于避光處,10 min 后在734 nm 波長處測定吸光度A734,計(jì)算清除率,公式為清除率= (1-樣品管A734/對照管A734) ×100%,并求得IC50,通過Graphpad Prism6 軟件進(jìn)行處理,結(jié)果見圖6。由此可知,總黃酮溶液質(zhì)量濃度在5~1 000 μg/mL 范圍內(nèi)時(shí),對ABTS 自由基的清除率由6.236%升至99.054%,并且從250 μg/mL 開始與維生素C相當(dāng)。

        圖6 總黃酮對ABTS 自由基的清除能力Fig.6 Scavenging capacity of total flavonoids on ABTS free radical

        3 討論與結(jié)論

        本實(shí)驗(yàn)在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,通過正交試驗(yàn)優(yōu)化衢枳殼總黃酮提取工藝,得到最佳參數(shù)為乙醇體積分?jǐn)?shù)80%,料液比1∶30,提取時(shí)間2.0 h,提取溫度80 ℃,總黃酮提取率達(dá)6.21%,而且該方法簡便快速,無污染,可避免浸出更多無效成分,有利于進(jìn)一步分離純化。優(yōu)化后,衢枳殼總黃酮提取液對ABTS 自由基的清除能力與維生素C 相當(dāng),而對DPPH 自由基的清除率達(dá)88.537%,表明其體外抗氧化活性顯著,并呈量效依賴關(guān)系。

        自從2015 年衢枳殼作為中藥被納入《浙江省中藥炮制規(guī)范》 以來,關(guān)于其有效成分及藥理作用的文獻(xiàn)有所增加[13-15],但還是偏少,而相關(guān)研究可對該藥材種植、采栽、炮制方法的確定起到推動(dòng)作用,促進(jìn)浙江道地藥材資源的保護(hù)與開發(fā),并能不斷鞏固和提高浙江中藥品牌的影響力。同時(shí),該藥材的抗氧化活性能作為潛在抗氧劑應(yīng)用于食品和藥品中,從而為其綜合利用奠定理論基礎(chǔ)。

        今后,課題組將進(jìn)一步研究衢枳殼總黃酮與抗氧化有關(guān)的藥理活性及其作用機(jī)制,如改善呼吸道炎癥反應(yīng)、哮喘等,以期將其開發(fā)成安全性高、療效確切的相關(guān)藥物。

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