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        錫蘭鉤蟲谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶基因的克隆表達(dá)與免疫原性分析

        2020-07-21 12:18:20杭建雄顏欣欣劉云秋冉榮坤劉菊枚李國清
        中國獸醫(yī)學(xué)報 2020年7期
        關(guān)鍵詞:小鼠

        杭建雄,黃 岳,顏欣欣,劉云秋,趙 琪,何 龍,冉榮坤,李 秀,劉菊枚,李國清

        (華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 獸醫(yī)學(xué)院,廣東 廣州 510640)

        鉤蟲病是一類被忽視的重要人畜共患寄生蟲病,錫蘭鉤蟲是唯一一種可在人體內(nèi)發(fā)育為成蟲并能引起人的腹瀉、貧血等癥狀的動物源性鉤蟲[1]。定期服用驅(qū)蟲藥是目前治療鉤蟲病的主要方法,但由于鉤蟲的反復(fù)感染以及長期用藥后對藥物產(chǎn)生的抗藥性,導(dǎo)致藥物防治未能取得良好效果[2]。因此,迫切需要探索控制鉤蟲感染的新方法。

        谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(glutathione-S-transferase,GSTs)是與細(xì)胞解毒與抗氧化有關(guān)的一種多功能酶,也是蠕蟲主要解毒酶之一。GSTs 不僅對內(nèi)源性或宿主產(chǎn)生的有毒產(chǎn)物發(fā)揮重要的解毒作用,而且還可作為抗寄生蟲感染的疫苗候選分子或藥物靶標(biāo)[3-4]。據(jù)報道,美洲板口線蟲GSTs可參與吸血過程中血紅素的解毒,用GSTs重組蛋白免疫金黃倉鼠可對鉤蟲的攻擊感染產(chǎn)生保護(hù)性免疫,其中Na-GST-1已被遴選為抗人類鉤蟲感染的候選疫苗[5]。目前,在錫蘭鉤蟲成蟲腸道轉(zhuǎn)錄組中共鑒定出13種GSTs,其中編號為ANCCEY-00737的GST與Na-GST-1的相似性最高[6],具有較高的研究價值,但近幾年國內(nèi)外卻鮮有相關(guān)的報道。本研究旨在對該蛋白編碼基因進(jìn)行克隆表達(dá)與序列分析,并研究其對昆明小鼠的免疫原性,以便了解錫蘭鉤蟲GST分子的致病作用和免疫學(xué)特性,為該病疫苗候選分子或藥物靶標(biāo)的篩選奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 蟲體及菌株蟲體采自廣州華南農(nóng)業(yè)大學(xué)外科實(shí)驗(yàn)室的實(shí)驗(yàn)犬,根據(jù)FU等[7]的方法鑒定蟲種后置于RNA樣品保存液中-20℃保存。大腸桿菌DH5α和克隆載體pMD18-T購自大連TaKaRa公司;大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞購自上海Sangon生物工程公司;表達(dá)載體pET-32a由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)寄生蟲教研室保存。

        1.2 主要試劑限制性核酸內(nèi)切酶EcoRⅠ、BamHⅠ為大連TaKaRa公司產(chǎn)品;弗氏佐劑為上海Sangon生物工程公司產(chǎn)品;犢牛血清、刀豆蛋白、RPMI 1640培養(yǎng)基、細(xì)胞篩均購自廣州市凱閣生物科技有限公司。

        1.3 引物設(shè)計(jì)根據(jù)GenBank上錫蘭鉤蟲GST基因序列(ANCCEY_00737)設(shè)計(jì)1對特異性引物,GST-AF(5′-GGATCCATGAGTAA GCGACATCAAGC-3′)和GST-AR(5′-GAATTCTCAGAAGGT GGAGCTCGGT-3′),下劃線部分分別為BamHⅠ與EcoRⅠ酶切位點(diǎn)。

        1.4 錫蘭鉤蟲GST基因擴(kuò)增與重組表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建采用Omega microElute Total RNA Kit試劑盒提取錫蘭鉤蟲成蟲總RNA,用反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成GST cDNA第1鏈。以GST-AF/GST-AR為引物,RT-PCR擴(kuò)增錫蘭鉤蟲GST基因。將PCR產(chǎn)物插入pET-32a表達(dá)載體,轉(zhuǎn)至E.coliDH5α中,涂布于含有氨芐青霉素(50 mg/L)的LB平板上,37℃培養(yǎng)過夜,按照質(zhì)粒抽提試劑盒抽提重組質(zhì)粒,雙酶切鑒定,陽性克隆送至武漢天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司測序。

        1.5 錫蘭鉤蟲GST基因的序列分析利用DNAMAN6.0.3.99軟件翻譯錫蘭鉤蟲Ace-GST基因的氨基酸序列;利用MegAlign7.1.0軟件將Ace-GST與其他GST氨基酸序列進(jìn)行同源性比對;利用MEGA5.05將Ace-GST氨基酸序列與從NCBI下載的13個GST氨基酸序列(圖2)采用鄰接法(neighbor-joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

        1.6 重組蛋白的表達(dá)與純化將重組表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)入E.coliBL21中于37℃振搖培養(yǎng)至D600為0.6~0.8,加IPTG(1.0 mmoL/L)培養(yǎng)6 h。菌液經(jīng)超聲破碎,分別收集上清與沉淀,用SDS-PAGE分析重組蛋白在菌體中的分布。收集超聲破碎上清,采用鎳柱純化法純化重組蛋白。

        1.7 抗GST多克隆抗體的制備30只6周齡昆明小鼠隨機(jī)均分為重組蛋白組(A組)和佐劑對照組(B組)。A組注射重組蛋白Ace-GST,抗原與佐劑乳化后,腹腔多點(diǎn)注射,每次免疫劑量為100 μg/只,間隔2周1次,共3次。B組以PBS代替免疫抗原,同法免疫小鼠。小鼠于免疫前、每次免疫后2周、4周眼緣靜脈采血,每組5只,血樣 37°C放置 1 h 后,轉(zhuǎn)移 4°C冰箱過夜靜置析出血清,5 000 r/min 離心 10 min,收集血清,-70℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.8 重組蛋白的Western blot分析取10 μg重組蛋白進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳;電泳后分別用His-Tag小鼠單克隆抗體(1∶5 000)、免疫鼠血清(1∶1 000)進(jìn)行Western blot分析。并使用二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色。

        1.9 免疫鼠脾淋巴細(xì)胞增殖試驗(yàn)(MTT法)末次采血后,小鼠脫頸處死,無菌取脾,制備脾淋巴細(xì)胞懸液。參照文獻(xiàn)[8]的方法進(jìn)行MTT試驗(yàn),計(jì)算淋巴細(xì)胞刺激指數(shù)(試驗(yàn)孔D490值/對照孔D490值),采用SAS 9.0統(tǒng)計(jì)軟件分析實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。

        2 結(jié)果

        2.1 GST基因的擴(kuò)增及重組表達(dá)質(zhì)粒的鑒定RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果顯示,在468 bp左右呈現(xiàn)1條特異性條帶(圖1),與預(yù)期片段大小相符。重組表達(dá)質(zhì)粒pET32a-Ace-GST的雙酶切鑒定結(jié)果顯示,在468 bp處有目的條帶(圖2),與預(yù)期片段大小一致。

        圖1 Ace-GST基因的擴(kuò)增圖 M.DL2000 Marker;1.目的基因

        圖2 重組表達(dá)質(zhì)粒雙酶切鑒定 M.DL2000 Marker;1.重組質(zhì)粒

        2.2 Ace-GST基因序列分析錫蘭鉤蟲Ace-GST基因全長為468 bp,編碼155個氨基酸。犬源錫蘭鉤蟲Ace-GST基因所編碼的氨基酸序列與錫蘭鉤蟲 ANCCEY_00737(EPB80182.1)的同源性為100%。進(jìn)化樹顯示,犬源錫蘭鉤蟲Ace-GST與ν類GSTs聚為同一分支,其他不同亞家族的GSTs各自聚成不同類群(圖3)。

        圖3 不同物種GST以NJ法構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹 ●為目的蛋白

        2.3 重組蛋白的表達(dá)產(chǎn)物與免疫原性分析重組蛋白的表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)SDS-PAGE檢測的結(jié)果見圖3。結(jié)果顯示在約36 000(pET32a載體蛋白大小約為20 000)處可見明顯條帶,與預(yù)期蛋白分子質(zhì)量一致;可溶性分析結(jié)果顯示,該蛋白主要存在于裂解物的沉淀中。250 mmol/L咪唑溶液洗脫時,在36 000 左右處獲得了大量重組蛋白,蛋白濃度為0.521 g/L。Western blot結(jié)果顯示,該重組蛋白抗原均能被His-Tag 鼠單克隆抗體和抗重組蛋白免疫血清所識別(圖4)。經(jīng)ELISA檢測,免疫后小鼠IgG抗體效價高達(dá)1∶204 800。

        圖4 重組蛋白的SDS-PAGE M.蛋白分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1.誘導(dǎo)重組菌pET32a-Ace-GST表達(dá)產(chǎn)物;2.誘導(dǎo)重組菌pET32a-Ace-GST上清;3.誘導(dǎo)重組菌pET32a-Ace-GST沉淀;4.純化的pET32a-Ace-GST蛋白

        2.4 昆明鼠淋巴細(xì)胞增殖試驗(yàn)(MTT)免疫小鼠淋巴細(xì)胞增殖試驗(yàn)結(jié)果見表1。結(jié)果顯示,免疫組平均刺激指數(shù)2.60±0.06明顯高于PBS對照組1.05±0.03(P<0.05),表明該重組蛋白顯著刺激免疫小鼠脾淋巴細(xì)胞的增殖。

        圖5 Western blot分析 M.蛋白分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1.與His-Tag鼠單克隆抗體反應(yīng);2.與抗重組蛋白免疫血清反應(yīng)

        表1 免疫小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖試驗(yàn)結(jié)果(D490 nm)

        3 討論

        谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GST)是由多個基因編碼、具有多種功能的同工酶,廣泛分布于各種生物體內(nèi)[3]。GSTs不僅可以作為酶類催化一系列有毒分子與谷胱甘肽反應(yīng),參與白細(xì)胞三烯的轉(zhuǎn)化、H2O2降解、Michael(邁克爾)加成反應(yīng),還可作為配體結(jié)合蛋白俘獲有毒物質(zhì)[9-10]。游離血紅素是吸血寄生蟲血紅蛋白消化過程的終末產(chǎn)物,對其蟲體具有潛在毒性。鉤蟲與其他吸血寄生蟲(如瘧原蟲)類似,也已進(jìn)化出對游離血紅素的解毒機(jī)制,即通過表達(dá)線蟲特有的ν類GSTs,使其對過氧化氫酶的親和力相對于其他種類的GSTs降低,但結(jié)合游離血紅素的能力提高[11]。本研究首次克隆表達(dá)錫蘭鉤蟲Ace-GST基因,序列分析表明Ace-GST與Na-GST-1和Ac-GST-1類似,同屬于ν類GSTs。

        研究表明,美洲板口線蟲Na-GST-1與佐劑Alhydrogel配伍的疫苗具有一定的免疫保護(hù)效果[ 12 ]。其作用機(jī)制可能是誘導(dǎo)產(chǎn)生的IgG可阻斷鉤蟲GST的解毒作用,從而導(dǎo)致游離血紅素的積累而損害蟲體。當(dāng)用重組GSTs免疫時,宿主產(chǎn)生相應(yīng)的中和抗體,干擾蟲體GSTs對血紅素的解毒,導(dǎo)致蟲體死亡或降低其繁殖能力。據(jù)報道,用犬鉤蟲Ac-GST-1免疫犬可產(chǎn)生明顯的免疫保護(hù)作用,腸道寄生的蟲體及糞便中蟲卵數(shù)量均顯著減少[13]。此外,Na-GST-1還可誘導(dǎo)金黃倉鼠產(chǎn)生抗鉤蟲感染的保護(hù)性免疫,其減蟲率可達(dá)40%[5]。本研究用弗氏佐劑乳化的Ace-GST免疫昆明小鼠,對免疫鼠獲得的抗血清進(jìn)行ELISA測定,結(jié)果顯示抗血清效價高達(dá)1∶204 800,IgG水平明顯升高,表明該重組蛋白抗原可誘導(dǎo)小鼠產(chǎn)生特異性抗體,具有較好的免疫原性。淋巴細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)( MTT) 是反映細(xì)胞免疫功能的傳統(tǒng)方法,其刺激指數(shù)大于1.5時,判定為有效刺激;數(shù)值越大,說明所免疫細(xì)胞群體的反應(yīng)能力和免疫功能越強(qiáng)。在本研究中,免疫組昆明小鼠淋巴細(xì)胞刺激指數(shù)均大于1.5(2.6左右),且明顯高于對照組(P<0.05),表明該重組蛋白能夠促進(jìn)免疫小鼠脾淋巴細(xì)胞的增殖。上述結(jié)果表明,Ace-GST可誘導(dǎo)昆明小鼠產(chǎn)生特異性抗體和致敏淋巴細(xì)胞,提示Ace-GST蛋白可能是一種具有抗鉤蟲疫苗潛力的候選分子。

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