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        熒光定量檢測試紙檢測飼料中黃曲霉毒素B1

        2020-07-21 15:15:30
        飼料博覽 2020年5期
        關(guān)鍵詞:檢測

        王 虎

        (遼寧省農(nóng)業(yè)發(fā)展服務中心,沈陽 110032)

        黃曲霉毒素B1(AFB1)是二氫呋喃氧雜萘鄰酮的衍生物,含有一個雙呋喃環(huán)和一個氧雜萘鄰酮(香豆素)。AFB1是已知的化學物質(zhì)中致癌性最強的一種。AFB1對包括人和若干動物具有強烈的毒性,其毒性作用主要是對肝臟的損害[1-4]。目前,可用液相色譜法檢測黃曲霉毒素B1,但需要大型的儀器設備,價格昂貴,操過過程復雜、時間長,且無法在現(xiàn)場和基礎小型實驗室使用[5-7]。也有采用黃曲霉毒素B1酶聯(lián)免疫試劑盒用于大量樣品的篩查,檢測快速,但操作復雜[8-9]。因此,急需一種既簡單快速,又能準確定量的檢測方法,熒光定量免疫層析技術(shù)正好可以滿足需求[10]。本試驗擬建立一種飼料中黃曲霉毒素B1熒光定量檢測方法。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        1.1.1 儀器

        熒光免疫分析儀(蘇州和邁精密儀器有限公司),XH-C 渦旋混合器(新寶儀器有限公司),稱量天平(DIGITAL SCALE)。

        1.1.2 主要試劑和耗材

        黃曲霉毒素B1單克隆抗體和黃曲霉毒素B1半抗原-牛血清白蛋白偶聯(lián)物,購自武漢優(yōu)博生物技術(shù)有限公司;MES,購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;EDC,購自國藥集團;試劑牛血清白蛋白,購自上海生工生物工程有限公司;時間分辨熒光微球,購自上海輝質(zhì)生物科技有限公司;黃曲霉毒素B1及其他真菌毒素的標準品,購自Sigma公司;硝酸纖維素膜,購自MDI。

        1.2 溶液的配制

        0.1 M 磷酸氫二鈉:Na2HPO4·12H2O 35.85 g·L-1,純化水溶解。微球洗滌液:MES 1.95 g·L-1,純化水溶解,1 mol·L-1NaOH 調(diào)節(jié)pH 至6.0。微球活化劑:EDC 76.68 g·L-1,純化水溶解,置于4 ℃保存。0.05 mol·L-1BB 9.0:十水合硼砂3.814 g·L-1,硼酸0.619 g·L-1,純化水定容至1 L 即可。微球封閉液1:牛血清白蛋白100 g·L-1,純化水溶解后置于4 ℃保存。微球封閉液2:甘氨酸75.07 g·L-1,溶解后置于4 ℃保存。標記復溶液:蔗糖100 g·L-1,海藻糖100 g·L-1,牛血清白蛋白20 g·L-1,PEG20000 5 g·L-1,PVP-K30 5 g·L-1,Na2HPO4·12H2O 17 g·L-1,NaH2PO4·2H2O 0.414 g·L-1,溶解后加入PC300 3 mL,置于4 ℃保存。樣品墊處理液:Na2HPO4·12H2O 17 g·L-1,NaH2PO4·2H2O 0.414 g·L-1,蔗糖5 g·L-1,PEG20000 5 g·L-1,PVPk-30 5 g·L-1,檸檬酸三鈉3 g·L-1,PEG6000 1 g·L-1,casein 3 g·L-1,S9 1 g·L-1,S17 1 g·L-1,S21 1 g·L-1,Tween20 20 mL g·L-1。待以上試劑完全溶解,將玻璃纖維素膜浸濕,之后37 ℃干燥8~10 h 后,待用。樣品稀釋液:稱取NaCl 80 g、KCl 0.2 g、Na2HPO41.44 g 和KH2PO40.24 g溶于800 mL 蒸餾水中,用pH 計測得溶液的pH 為7.4±0.2,然后再加P-300 300 μL,最后加純化水定容至1 L。樣品提取液:稱取Na2HPO4·12H2O 2.035 g和Na2HPO4·2H2O 0.050 g,用50 mL 純 化 水 全 部溶解后,再加甲醇700 mL,最后用純化水定容至1 L。

        1.3 試驗方法

        1.3.1 樣本處理方法

        稱取研碎的樣本2.0±0.05 g 置于50 mL 離心管中,加入10 mL 樣本提取液,用振蕩器充分振蕩5 min,將振蕩后的樣本用定量分析濾紙過濾,用樣本稀釋液將濾液按1:7比例稀釋,取稀釋后液體進行檢測(稀釋系數(shù)40)。

        1.3.2 操作步驟

        打開熒光免疫分析儀,同時撕開檢測試紙鋁箔袋,取出檢測試紙,放于平整、潔凈的臺面上用配套吸管吸取待檢樣本,垂直而緩慢的滴加2~3滴(約60 μL)到加樣孔內(nèi)。靜置10 min,上機檢測。

        熒光免疫分析儀操作:輕按開機鍵開機——點擊“系統(tǒng)設置”——點擊“檢測項目管理”——選擇需檢測的項目(黃曲霉毒素B1)——將檢測試紙插入檢測孔內(nèi)——點擊“快速測試”,開始檢測檢測下一個樣本,點擊“新測試”——點擊“快速檢測”即可。當檢測結(jié)果>80 μg·kg-1時,可用樣本稀釋液將上述檢測液稀釋5倍后再進行檢測,所得讀數(shù)值乘以對應的稀釋倍數(shù)即為最終的檢驗結(jié)果。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 包被量的確定

        用0.1 mol·L-1Na2HPO4將包被抗原(7 mg·mL-1)按 照0.21、 0.28 mg·mL-1和 劃 膜0.35 mg·mL-1,37 ℃干燥待用,與結(jié)合墊、樣品墊進行配對。結(jié)果顯示,選用0.28 mg·mL-1包被時,梯度添加標準品,靈敏度最高,結(jié)果見表1。

        表1 不同包被量對檢測結(jié)果(T/C)的影響

        2.2 標記量的確定

        2.2.1 微球清洗

        50 μL 熒光微球加入1 mL 0.01 mol·L-1MES 緩沖液中,混勻,12 000 r·min-1離心15 min;棄上清,加入0.01 mol·L-1MES 緩沖液1 mL,混勻離心;重復上述步驟3 次,并用0.01 mol·L-1MES 緩沖液1 mL 復溶。

        2.2.2 微球活化

        向清洗后微球加入250 μL·mL-1EDC 緩沖液,混勻,室溫避光反應30 min;12 000 r·min-1離心15 min,棄 上 清,加 入0.01 mol·L-1MES 緩 沖 液1 mL,混勻,2 000 r·min-1離心15 min。

        2.2.3 微球標記

        棄上清,用0.05 mol·L-1PB9.0 4 mL 進行復溶,均分至4 管分別加入0.3、0.4、0.5 μL 標記抗體(4.7 mg·mL-1),室溫避光反應30 min。

        2.2.4 微球封閉

        各加入100 μL 1 mol·L-1甘氨酸溶液混勻,室溫避光反應15 min;再各加入100 μL 10%BSA 溶液混勻,室溫避光反應15 min;12 000 r·min-1離心15 min。

        2.2.5 微球復溶

        將離心后微球用復溶液復溶后,按照3 μL·cm-1噴量噴出。

        2.2.6 微球標記濃度檢測

        與包被膜、樣品墊組合檢測結(jié)果顯示,標記抗體濃度是0.4 μL·mL-1時,梯度添加標準品,靈敏度最高,結(jié)果見表2。由表2 可知,最佳標記量是0.4 μL·mL-1。

        表2 包被膜與標記抗體配對檢測結(jié)果

        2.3 檢測結(jié)果分析

        2.3.1 線性范圍與檢出限

        取6個無污染(陰性)精料樣品和6個無污染(陰性)玉米樣品,分別添加黃曲霉毒素B1標準品0、5.00、10.00、20.00、40.00、80.00 μg·kg-1,用黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條每個樣品檢測3次,以添加濃度為為縱坐標,以熒光定量檢測試紙條的檢測結(jié)果為橫坐標,擬合曲線并計算線性相關(guān)系數(shù),見圖1。

        計算得出糧食谷物的線性范圍:5~80 μg·kg-1,回歸方程:y=1.03x-0.15,相關(guān)系數(shù)r2=0.998。

        2.3.2 準確性和重復性分析

        在用GB/T 17480-2008 飼料中黃曲霉毒素B1的測定酶聯(lián)免疫吸附法測定為0的不同種類空白樣品中分別添加黃曲霉毒素B1濃度為0、5.00、10.00、20.00、40.00、80.00 μg·kg-1的標準品,然后按照黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條的檢測方法進行檢測。檢測結(jié)果見表3。

        圖1 黃曲霉毒素B1標準品添加與熒光定量試紙條檢測值的線性關(guān)系

        表3 不同樣本檢測的準確性和重復性

        從表1可以看出,黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條測試不同糧食谷物中黃曲霉毒素B1的添加回收率在92.7%~105%,3 次重復的變異系數(shù)<14.4%。

        2.3.3 與ELISA方法的對比試驗結(jié)果

        取玉米粉、高粱、棉籽、甜菜粕、青貯玉米受污染樣品各1 份,先采用ELISA 法進行測定,再使用黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條進行測定,檢測結(jié)果見表4。

        表4 黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙與ELISA檢測值對比

        由表4 可知,在不同的糧食谷物飼料中,黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙與ELISA 的符合率為99.66%~111.87%,3 次重復的變異系數(shù)在13.68%以內(nèi)。

        2.4 方法特異性

        選擇其他5 種常見的真菌毒素的標準品在陰性玉米中進行添加,添加的濃度為1 000 μg·kg-1,然后用黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條進行測試,每個樣品測3 次取平均值結(jié)果見表5。由表5 可知,與赭曲霉毒素A、伏馬菌素B1、嘔吐毒素、T-2 毒素、玉米赤霉烯酮毒素的交叉反應率均<5%。試驗結(jié)果表明,黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條對赭曲霉毒素A、伏馬菌素B1、嘔吐毒素、T-2毒素、玉米赤霉烯酮毒素幾乎無交叉反應,其方法特異性可以滿足檢測要求。

        表5 交叉反應率

        3 結(jié) 論

        本研究研發(fā)了一種黃曲霉毒素B1熒光定量檢測試紙條,通過對不同的糧食谷物飼料樣本進行測試,該產(chǎn)品的最低檢出限為5 μg·kg-1,線性范圍為5~80 μg·kg-1,線性范圍內(nèi)的添加回收率為92.7%~111.87%,變異系數(shù)<14.4%。與其他真菌毒素的交叉反應率均<5%。其準確性和可靠性可以滿足我國對黃曲霉毒素B1的分析標準的技術(shù)要求。該方法具有簡單快速、準確可靠、重復性好等特點,可用于不同糧食谷物飼料中黃曲霉毒素B1的快速定量檢測分析。

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