趙振利, 張靖曼, 鄭秋莉, 楊海波, 范國強(qiáng)
(河南農(nóng)業(yè)大學(xué)泡桐研究所,河南 鄭州 450000)
泡桐是中國重要的速生用材、農(nóng)田防護(hù)和園林綠化樹種,在緩解木材短缺、保障糧食安全、改善生態(tài)環(huán)境等方面發(fā)揮重要作用[1-2]。然而,植原體侵染后可引起泡桐發(fā)生叢枝病,泡桐叢枝病(PaWB)是一種危害極大的泡桐病害,患病后導(dǎo)致泡桐幼樹死亡、大樹生長緩慢,嚴(yán)重影響泡桐產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。因此,研究PaWB的發(fā)生機(jī)制是解決泡桐這一病害的關(guān)鍵。表觀遺傳作為一種重要的修飾對基因表達(dá)進(jìn)行調(diào)控進(jìn)而影響植物的生長發(fā)育,而DNA甲基化是重要的表觀遺傳調(diào)控機(jī)制之一,其在調(diào)節(jié)植物生長發(fā)育、應(yīng)對生物或非生物脅迫、維持基因組穩(wěn)定等方面發(fā)揮著重要作用[3-5]。目前,關(guān)于DNA甲基化的研究大多在草本植物中進(jìn)行的,如在鐵皮石斛[6]、懷地黃[7]、四倍體長春花[8]等草本植物中探究DAN甲基化在植物體生長發(fā)育過程中的調(diào)控作用及對逆境響應(yīng)等方面的研究。但對木本植物DNA甲基化研究甚少,阻滯了木本植物表觀遺傳學(xué)研究的進(jìn)展。本研究利用全甲基化測序技術(shù)(WGBS)對白花泡桐健康苗(PF)和叢枝病苗(PFI)進(jìn)行高通量測序,系統(tǒng)分析PaWB發(fā)生過程中甲基化的變化情況,并通過DNA甲基化和轉(zhuǎn)錄組關(guān)聯(lián)分析,篩選出與PaWB發(fā)生相關(guān)的關(guān)鍵調(diào)控基因,以期為進(jìn)一步闡明PaWB發(fā)生分子機(jī)理提供科學(xué)依據(jù)。
試驗材料來自河南農(nóng)業(yè)大學(xué)泡桐研究所培養(yǎng)的PF和PFI。將植物材料放在1/2 MS培養(yǎng)基(蔗糖20 g·L-1,瓊脂粉4.0 g·L-1)中培養(yǎng),每種材料的外植體葉片培養(yǎng)20瓶,每瓶接種3個外植體,待幼苗長至高度為2 cm時轉(zhuǎn)入1/2 MS生根培養(yǎng)基(蔗糖20 g·L-1,瓊脂粉3.0 g·L-1)中,置于溫度(25±2) ℃、光照強(qiáng)度1 300 lx、光照時間16 h·d-1的條件下培養(yǎng)30 d后,剪取組培苗頂端2~4片嫩葉,用液氮冷凍后置于-80 ℃超低溫冰箱內(nèi)保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 DNA提取、建庫及測序 將上述生長發(fā)育狀態(tài)一致的葉片混合,10株為一個樣本,進(jìn)行葉片DNA提取,DNA的提取按照張延召等[9]的方法進(jìn)行。DNA樣品經(jīng)深圳華大基因公司質(zhì)檢合格后進(jìn)行亞硫酸氫鹽(BS)文庫構(gòu)建,文庫質(zhì)量檢測后通過Illumina HiSeq 2000(Illumina,San Diego,CA,USA)測序儀進(jìn)行雙末端測序,具體方法參照文獻(xiàn)[10]。
1.2.2 測序數(shù)據(jù)的過濾、比對分析 測序結(jié)果經(jīng)過識別堿基后轉(zhuǎn)化為原始測序序列(Raw Reads),然后除去Raw Reads中含接頭序列、低質(zhì)量、含N比例>10%的Reads后得到高質(zhì)量序列(Clean Reads)。通過軟件BSMAP (version bsmap-2.73) 將獲得的Clean Reads比對到泡桐參考基因組上(http://paulownia.genomics.cn/page/species/index.jsp),使用唯一比對數(shù)據(jù)得到全基因組C堿基甲基化信息并進(jìn)行后續(xù)分析。具體方法參照文獻(xiàn)[11]。
1.2.3 滑動窗口法鑒定DMR 采用滑動窗口法確定DMR[12]。具體方法如下:(1)DMR的識別標(biāo)準(zhǔn)選擇2組間測序深度≥4×(×表示測序read覆蓋基因組的深度)的CpG位點作為候選位點,并對每個位點的差異顯著甲基化進(jìn)行Fisher精確檢驗。(2)將第一個甲基化差異顯著的CpG(自動校正P值<0.05)作為DMR的初始位點,并將后續(xù)候選位點合并為候選DMR,其中候選位點滿足以下條件:① 相鄰2個候選位點之間的距離≦300 bp;② 候選DMR中的所有候選CpG位點保持相同的甲基化趨勢;③ 候選的DMR至少有5個CpG位點且其中至少3個CpG位點的Fisher精確檢驗P值<0.01。(3)對于上述候選DMR,依據(jù)平均甲基化水平再次進(jìn)行Fisher精確檢驗。(4)候選DMR的錯誤發(fā)現(xiàn)率根據(jù)P值進(jìn)行調(diào)整,最后鑒定出的Fisher檢驗錯誤發(fā)現(xiàn)率P值<0.05且2個樣本之間平均甲基化水平差異小于20%的區(qū)域即是DMR。
1.2.4 DNA甲基化與轉(zhuǎn)錄組關(guān)聯(lián)分析鑒定 DMG啟動子區(qū)域含有DMR的基因定義為DMG,將獲得的DMR與DONG等[13]前期研究的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進(jìn)行關(guān)聯(lián),找到甲基化和轉(zhuǎn)錄組共同差異表達(dá)的基因,并從中篩選出與泡桐叢枝病發(fā)生相關(guān)的基因,然后對這些共同差異表達(dá)基因進(jìn)行GO和KEGG功能分析。
使用Illumina HiSeq 2000測序平臺對樣品PF、PFI進(jìn)行測序,共得到71.63 G的Clean reads(表1)。使用軟件BSMAP(version bsmap-2.73)將PF、PFI樣品得到的Clean reads比對到白花泡桐基因組序列上,比對率分別為90.40%、80.72%,全基因組平均測序深度分別是53.15×和45.45×(表2)。質(zhì)控檢測結(jié)果顯示,測序結(jié)果可進(jìn)行后續(xù)分析。
表1 PF、PFI測序數(shù)據(jù)統(tǒng)計結(jié)果
表2 Clean reads比對到參考基因組結(jié)果統(tǒng)計Table 2 Statistics result of clean reads map to reference genome results
C位點的DNA甲基化主要有3種類型(mCG、mCHG和mCHH),這3種類型的數(shù)量及構(gòu)成比例反映了特定物種的全基因組甲基化的特征[14]。本研究發(fā)現(xiàn),PF和PFI中分別有37.65%和36.96%的C位點發(fā)生了甲基化,且DNA甲基化變化主要有mCG、mCHH和mCHG 3種類型,其中PF的C位點和CHH的甲基化比率均高于PFI,而CG和CHG的甲基化比率則均低于PFI(表3)。對DNA甲基化類型的研究結(jié)果表明,泡桐發(fā)病前后其mCG甲基化位點在染色體上出現(xiàn)的頻率最高(均達(dá)到71%以上),mCHG位點和mCHH位點出現(xiàn)頻率依次降低(圖1)。研究結(jié)果表明,白花泡桐被植原體侵染后,C位點發(fā)生甲基化呈現(xiàn)下降趨勢,不同類型的mC模式均發(fā)生了變化,這種變化趨勢體現(xiàn)了DNA甲基化水平變化保持相對穩(wěn)定。
表3 PF、PFI中C位點甲基化比例統(tǒng)計Table 3 Statistical analysis of methylation ratio at C site in PF,PFI
全基因組C位點DNA甲基化水平分析結(jié)果表明,白花泡桐在植原體侵染后其DNA甲基化水平由14.53%下降到12.47%。此外,白花泡桐發(fā)病后mCG、mCHG和mCHH水平也均呈現(xiàn)下降趨勢,分別由50.84%降至45.91%、由22.97%降至19.98%和由8.76%降至7.13%(表4)。研究結(jié)果表明,DNA甲基化主要發(fā)生在CG序列,CHH序列在mC中占比最低,從而說明PaWB的發(fā)生與mCG的類型變化關(guān)系更密切。
對白花泡桐發(fā)病前后基因不同區(qū)域上發(fā)生甲基化水平的分析發(fā)現(xiàn),在各基因區(qū)域上,CG甲基化水平最高,CHG甲基化水平次之,CHH甲基化水平最低(圖2)。由圖2可以看出,在白花泡桐感染植原體后許多基因區(qū)域的CG甲基化水平都有所下降,說明在侵染過程中存在多個位點的去甲基化過程。研究結(jié)果表明,白花泡桐發(fā)病過程中內(nèi)含子區(qū)域發(fā)生甲基化水平較高,這可能是因為內(nèi)含子參與基因表達(dá)調(diào)控及防止了內(nèi)含子序列的異常轉(zhuǎn)錄所導(dǎo)致的。
對樣品PF和PFI進(jìn)行甲基化區(qū)域的差異研究分析,共檢測到109 334個DMR(表5)。從表5可以看出,白花泡桐在感染植原體過程中hyper-DMR和hypo-DMR分別有37 408個和71 926個,且CG、CHG、CHH序列都發(fā)生低甲基化的比率更大,其中CHH序列發(fā)生低甲基化比率最大為83.4%,CHG序列發(fā)生低甲基化比率最小為52.7%。PF與PFI中DMR的比較結(jié)果表明,植原體感染后泡桐體內(nèi)甲基化水平普遍降低。
A:白花泡桐健康苗不同類型mC堿基的分布比例;B:叢枝病苗不同類型mC堿基的分布比例A:Distribution ratio of mC bases in different sequence types of PF;B:Distribution ratio of mC bases in different sequence types of PFI圖1 白花泡桐不同類型mC堿基的分布比例Fig.1 Distribution ratio of mC bases in different sequence types of Paulownia fortunei
表4 PF、PFI中C、CG、CHG 和 CHH 甲基化水平Table 4 Methylation levels of C, CG, CHG and CHH in PF,PFI %
DMR在基因不同區(qū)域的分布研究結(jié)果見圖3。從圖3可以看出,位于基因間區(qū)的CG-DMR最多,CHG-DMR和CHH-DMR傾向于發(fā)生在基因間區(qū)和轉(zhuǎn)錄終止區(qū)(TE)上,說明基因間區(qū)(intergenic)甲基化水平較高,并且TE可能參與CHG和CHH的甲基化調(diào)控過程。此外,在上游5k(upstream5k)區(qū)域,CHH-DMR的發(fā)生水平較高,這可能是CHH-DMR參與了調(diào)控基因表達(dá)造成的結(jié)果。
A:白花泡桐健康苗中不同基因區(qū)域上各類型C的甲基化水平;B:叢枝病苗中不同基因區(qū)域上各類型 C 的甲基化水平。A:Methylation levels of various types of C in different gene regions of PF; B:Methylation levels of different types of C in different gene regions of PFI.圖2 不同基因區(qū)域上各類型C的甲基化水平Fig.2 Methylation level of various types of C in different gene regions
通過對DNA甲基化和轉(zhuǎn)錄組的差異表達(dá)基因進(jìn)行關(guān)聯(lián)分析,共得到1 693個共同差異表達(dá)的基因(表6)。CAO等[15]研究表明,在植原體侵染泡桐后多個與脅迫應(yīng)答相關(guān)的基因的表達(dá)水平和甲基化水平呈負(fù)相關(guān)。在此研究結(jié)果基礎(chǔ)上,找到了6個與泡桐叢枝病發(fā)生相關(guān)的DMG,功能分別涉及到調(diào)節(jié)植物防御反應(yīng)、光合作用、防御反應(yīng)和ABA合成等方面(表7)。其中,PAU024721.1在啟動子區(qū)域其CG和CHH甲基化水平下降,基因表達(dá)量上調(diào);PAU026702.1存在多個位點的CHH、CHG甲基化水平下降,基因表達(dá)量上調(diào);PAU000493.1和PAU017490.2存在多個位點的CHH甲基化水平降低,基因表達(dá)水平上調(diào);PAU009265.1存在CG甲基化水平升高,基因表達(dá)量下調(diào);PAU009776.1存在CHG甲基化水平升高,基因表達(dá)量下調(diào)。
表5 DMR在PFvsPFI間的變化情況Table 5 Details of DMR during PFvsPFI
圖3 不同序列類型DMR在基因組區(qū)域中所占比例Fig.3 Proportion of DMR of different sequence types in the genome region
將得到的叢枝病發(fā)生相關(guān)的基因進(jìn)行GO注釋,共有45條GO條目被顯著富集(P<0.05)(圖4),分為分子功能(molecular function)、細(xì)胞組分(celluar component)、生物過程(biological process)3類?;虻腒EGG通路聚類分析(圖5),結(jié)果顯示,共有122條通路富集,其中主要富集在代謝通路、次生代謝產(chǎn)物生物合成、植物病原體互作、植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等生物學(xué)過程。上述研究結(jié)果表明,差異甲基化基因可能和植物激素、植物病原互作具有密切關(guān)聯(lián)。
表6 在PF、PTF中鑒定到的差異表達(dá)的DMG數(shù)目統(tǒng)計Table 6 Statistics of the number of differentially expressed DMGs identified in PF, TF
DNA甲基化作為一種重要的表觀遺傳修飾方式,它能導(dǎo)致基因表達(dá)發(fā)生可遺傳的變化,在植物的生長發(fā)育過程中起重要調(diào)控作用。DNA甲基化水平在不同植物種類中變化明顯,在同物種不同品種之間也有差異。本研究發(fā)現(xiàn),白花泡桐中3種不同類型CG、CHG和CHH的DNA甲基化水平分別為50.84%、22.97%和8.76%,與木本植物蘋果[16]、白樺[17]和毛果楊[18]的甲基化水平相近,而跟草本植物擬南芥[19]差別較大,其中,白花泡桐和蘋果的CG、CHH的甲基化水平接近,且都比白樺和毛果楊的高,白花泡桐的CHG的甲基化水平和白樺接近。本研究對PF和PFI 的DNA甲基化進(jìn)行比較發(fā)現(xiàn)PFI整體甲基化水平呈下降趨勢,獲得的109 334個DMR中CG、CHG、CHH都發(fā)生低甲基化現(xiàn)象,且主要發(fā)生在CG序列?;蚪M功能元件區(qū)域分析研究也發(fā)現(xiàn),CDS、內(nèi)含子等元件上的DNA甲基化水平在泡桐患病前后變化不大,但在泡桐感染植原體后,許多基因結(jié)構(gòu)的CG甲基化水平都有所下降,說明在侵染過程中存在多個位點的去甲基化過程,從而影響到基因的表達(dá)情況。
表7 PaWB發(fā)生相關(guān)差異甲基化基因Table 7 Differentially expressed methylated genes related to the occurrence of PaWB
圖4 PaWB發(fā)生相關(guān)基因GO分類圖Fig.4 Histogram of GO classifications of PaWB related genes
圖5 PaWB發(fā)生相關(guān)基因KEGG通路聚類圖
病原體入侵植物時,植物激素會通過相互連接的信號通路協(xié)同工作并誘導(dǎo)復(fù)雜的防御反應(yīng)[20-21]。脫落酸(ABA)是植物逆境反應(yīng)中的一種重要激素,它通過影響胼胝質(zhì)的沉積,阻礙病原菌在植物細(xì)胞中的運動從而對病原菌侵染有一定的抗性[22-23]。9-順式環(huán)氧類胡蘿卜素雙加氧酶(NCED)是合成ABA的關(guān)鍵酶,它催化9-順式葉黃素分解為ABA的前體黃素,然后通過脫落酸醛的兩個反應(yīng)將黃素轉(zhuǎn)化為ABA[24]。HAO 等[25]發(fā)現(xiàn),在干旱脅迫下,過度表達(dá)AtNCED3的植物具有更高的耐旱性,而抑制和破壞AtNCED3表達(dá)的植物則產(chǎn)生干旱表型。本研究發(fā)現(xiàn),編碼NCED的基因發(fā)生去甲基化且基因表達(dá)水平升高,從而導(dǎo)致ABA含量的升高,說明在植原體侵染過程中泡桐通過調(diào)控體內(nèi)ABA信號通路從而調(diào)控植原體的侵染。
ROS是參與防御反應(yīng)的調(diào)節(jié)因子之一,但高濃度的ROS會對植物造成一定傷害,因此去除ROS的抗氧化劑細(xì)胞色素 P450對保護(hù)植物起著重要作用[26-28]。HUBBARD 等[29]研究證實了細(xì)胞色素P450在植物防御狀態(tài)時含量升高的情況。本研究也發(fā)現(xiàn),白花泡桐患叢枝病過程中,編碼細(xì)胞色素P450基因甲基化水平降低致使基因表達(dá)量升高,這可能是由于在植原體侵染泡桐后,植物產(chǎn)生ROS參加防御反應(yīng),又激活編碼細(xì)胞色素P450基因的表達(dá)。WRKY轉(zhuǎn)錄因子33(WRKY33)屬于第I組WRKY蛋白家族,對植物體抵抗病原體的侵染發(fā)揮重要的作用[30]。ZHENG等[31]在擬南芥中發(fā)現(xiàn)編碼AtWRKY33 基因的過表達(dá)增強(qiáng)了對壞死性真菌病原體灰葡萄孢和鏈格孢菌的抗性。在本研究中,編碼WRKY33基因由于發(fā)生甲基化水平降低導(dǎo)致其基因表達(dá)量上調(diào),這種變化可能是為了抵抗植原體的侵染,DNA甲基化通過負(fù)調(diào)控相關(guān)基因從而提高WRKY33基因的表達(dá)以增強(qiáng)泡桐的抗性。
本研究利用WGBS技術(shù)對PaWB發(fā)生過程中全基因組DNA甲基化的變化進(jìn)行了研究,分析了DNA甲基化的水平和模式變化情況,并通過DNA甲基化和轉(zhuǎn)錄組的差異表達(dá)基因關(guān)聯(lián)分析,找到了與泡桐叢枝病發(fā)生相關(guān)的DMG,這些基因涉及植物防御反應(yīng)、光合作用、植物病原互作、植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等生物學(xué)過程。