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        腦栓通膠囊對急性腦梗死模型大鼠炎癥因子、MMP-9和TIMP-1表達(dá)及氧化應(yīng)激指標(biāo)的影響?

        2020-07-03 02:22:34鄭玉蘭李如珊林創(chuàng)明馬盛琴劉云松
        中國中醫(yī)急癥 2020年6期
        關(guān)鍵詞:氧化應(yīng)激神經(jīng)功能腦梗死

        鄭玉蘭 徐 貞 李如珊 林創(chuàng)明 馬盛琴 劉云松

        (廣東祈福醫(yī)院,廣東 廣州 511495)

        急性腦梗死是因血栓導(dǎo)致腦動脈閉塞進(jìn)而引起腦組織局部血液供應(yīng)障礙,可導(dǎo)致不可逆局灶性腦損傷,其發(fā)病率高、致殘率高以及死亡率高[1]。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),急性腦梗死患者在發(fā)生和發(fā)展中多伴有炎癥反應(yīng),氧化應(yīng)激被認(rèn)為是導(dǎo)致神經(jīng)功能缺損的主要因素。近年研究發(fā)現(xiàn),MMP-9/TIMP-1系統(tǒng)與腦梗死患者中血腦屏障損傷和修復(fù)密切相關(guān)[2],可為缺血性腦血管病的治療提供新思路。急性腦梗死屬于中醫(yī)“中風(fēng)”范疇,氣虛、瘀阻、血瘀是公認(rèn)的中風(fēng)病病因[3]。腦栓通膠囊具有活血通絡(luò)、祛風(fēng)化痰之功效。本研究通過建立急性腦梗死大鼠模型,以探討腦栓通膠囊對急性腦梗死大鼠炎癥因子、MMP-9和TIMP-1表達(dá)及氧化應(yīng)激指標(biāo)的影響,旨在為探討腦栓通膠囊作用機(jī)制提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗動物

        60只SD大鼠,體質(zhì)量(200±20)g,雌雄各半,購于上海邦耀生物科技有限公司。大鼠置于(23±2)℃室溫中,12 h/12 h晝夜節(jié)律,自由飲水進(jìn)食,適應(yīng)環(huán)境7 d后于9∶00~17∶00進(jìn)行實(shí)驗。

        1.2 試藥與儀器

        腦栓通膠囊(主要成分:蒲黃、赤芍、郁金、天麻、漏蘆等;廣東華南藥業(yè)集團(tuán)有限公司,國藥準(zhǔn)字Z20040093),給藥劑量參照《藥理實(shí)驗方法學(xué)》[4]中人和動物體表面積折算的等效劑量比值表計算;尼莫地平片(拜耳醫(yī)藥保健公司,生產(chǎn)批號:L01984)。Anti-MMP9(Sigma公司),TIMP-1抗體(ab81282)(Abcam公司),β-Actin(SANTACRUZ公司),超敏ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒(碧云天公司),Trizol試劑盒(武漢博士德生物工程公司);丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH)以及過氧化氫酶(CAT)檢測試劑盒均由南京建成生物工程研究所提供。腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白介素-1β(IL-1β)以及白介素-6(IL-6)ELISA試劑盒和DAB顯色試劑盒購于武漢博士德生物工程有限公司;C反應(yīng)蛋白(CRP)試劑盒購于上海金穗生物科技有限公司,PBS緩沖液和二抗由碧云天生物技術(shù)研究所提供;其他試劑均為分析純購于天津市廣成化學(xué)試劑有限公司;氯化鈉注射液(批號:181203)由山東康寧藥業(yè)有限公司提供,實(shí)驗用水為超純水。TD5A-WS/TD5AWS型低速離心機(jī)(湖南湘儀離心機(jī)有限公司),164-5050型電泳儀(美國Bio-Rad公司),BX61型顯微鏡(日本OLYMPUS公司),Im?age-Pro Plus 6.0圖像分析系統(tǒng)(麥克奧迪實(shí)業(yè)集團(tuán)有限公司),pH計(北京屹源電子科技有限公司),超低溫冰箱[冠森生物科技(上海)有限公司],電子天平(上海良平儀器有限公司),控溫水浴箱GKC(上海蘇達(dá)實(shí)驗儀器有限公司)。

        1.3 造模與分組

        參考文獻(xiàn)[5]制備急性腦缺血大鼠模型,將模型組及用藥組(陽性組和實(shí)驗組)大鼠水合氯醛麻醉,俯臥固定于手術(shù)臺,采用改良線栓法制作腦缺血大鼠模型,即分離并充分暴露大鼠的頸總動脈、頸內(nèi)動脈以及頸外動脈,對頸總動脈近端和頸外動脈進(jìn)行結(jié)扎,用血管夾夾閉頸內(nèi)動脈,在頸總動脈剪一切口,將線栓經(jīng)頸總動脈送至頸內(nèi)動脈至大腦中動脈起始處,阻斷血流2 h后將線栓取出恢復(fù)灌注。參照Zea Longa[6]法評分標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行神經(jīng)功能評分,1~3分表明造模成功。分組分籠飼養(yǎng),不禁食水。假手術(shù)組大鼠僅用玻璃分針游離出雙側(cè)頸總動脈不做結(jié)扎處理。

        1.4 給藥方法

        造模成功后,假手術(shù)組自由飲水進(jìn)食,模型組開始灌服純凈水,實(shí)驗組開始灌服腦栓通膠囊,劑量120 mg/kg,陽性組開始以10 mg/kg的劑量灌服尼莫地平。各組每天灌胃1次,連續(xù)7 d。

        1.5 標(biāo)本采集與檢測

        1.5.1 神經(jīng)功能評分 采用Bederson評分分級法,于術(shù)后7 d對各組大鼠進(jìn)行神經(jīng)行為學(xué)評分并記錄結(jié)果。采用改良NSS評分標(biāo)準(zhǔn)對各組大鼠神經(jīng)功能進(jìn)行評分(16分制),得數(shù)越高,損傷程度越重。

        1.5.2 炎癥因子檢測 7 d后收集3 mL腹動脈血,離心,分離血清,ELISA法檢測TNF-α、IL-1β以及IL-6炎癥因子水平,采用免疫比濁法檢測CRP含量,嚴(yán)格按照試劑盒說明書操作。

        1.5.3 MMP-9、TIMP-1表達(dá)檢測 進(jìn)行神經(jīng)功能缺損程度評分后,采用水合氯醛溶液麻醉大鼠,斷頭取腦,于-80℃條件下凍存,在研缽內(nèi)研磨粉碎,組織勻漿器勻漿。1)采用RT-PCR法檢測MMP-9、TIMP-1基因表達(dá),其中β-actin上游引物序列為5′-GAGGC CCAGAGCAAGAGAGGT-3′,下游引物序列為 5′-TTC ACGGTTGGCCTTAGGGTT-3′;MMP-3上游引物序列為5′-AAGGAGAGGCTGACATAATGA-3′,下游引物序列為 5′-ATCTGTCCATCGTTCATCATC-3′;TIMP-1 上游引物序列為 5′-GACCACCTTATACCAGCGTTA-3′,下游引物序列為5′-GTGCAAATTTCCGTTCCTTAA-3′。使用 Trizol試劑盒提取總 RNA,加入 20 μL DEPC水溶解,采用紫外分光光度計證實(shí)0.1 g瓊脂糖凝膠電泳中含有兩條帶(18 s和28 s)用于反轉(zhuǎn)錄的標(biāo)本,校正每組總RNA濃度,加入181 μL Oligod(T),72 ℃條件下變性10 min,取出立即置于冰上2 min。后加入11.5 μL DEPC水,2.5 μL 5Xbuffer,0.5 μL dNTP Mix?ture,0.5 μL RNase,0.5 μL M-MLV,室溫下靜置10 min。然后42℃水浴條件下1 h,冰上放置2 min。放入熒光定量PCR儀中,采用25 μL反應(yīng)體系,觀察熒光定量熔解度。2)采用Western blotting法檢測MMP-9、TIMP-1蛋白的表達(dá),提取總蛋白質(zhì)后根據(jù)BCA蛋白濃度測定試劑盒操作步驟測定蛋白質(zhì)濃度。使用熒光成像儀觀察相關(guān)蛋白的表達(dá),使用Image J分析軟件分析所得圖像中條帶的光密度值,以靶蛋白β-actin灰度比值作為蛋白的相對表達(dá)豐度。

        1.5.4 氧化應(yīng)激指標(biāo)測定 取大鼠腦漿液,離心,取上清液,采用硫代巴比妥酸比色法檢測血清丙二醛(MDA)含量,采用黃嘌呤氧化酶法檢測血清超氧物歧化酶(SOD)含量,采用紫外吸收法測過氧化氫酶(CAT)含量,采用比色法檢測谷胱甘肽過氧化物酶(GSH),嚴(yán)格按照試劑盒說明書操作。

        1.6 統(tǒng)計學(xué)處理

        2 結(jié)果

        2.1 各組大鼠神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分比較

        見表1。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠的神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分明顯高升高,具有顯著差異(P<0.05)。給予藥物干預(yù)后,陽性組和實(shí)驗組大鼠的神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分明顯低于模型組(P<0.05),兩組比較亦有顯著性差異(P<0.05)。

        表1 各組大鼠神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分比較(分,±s)

        表1 各組大鼠神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分比較(分,±s)

        與假手術(shù)組比較,?P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與陽性組比較,△P<0.05。下同

        神經(jīng)行為學(xué)評分00.00±00.00 5.72±1.12*3.28±0.49*#3.05±0.52*#△組別假手術(shù)組模型組陽性組實(shí)驗組n 15 15 15 15神經(jīng)功能評分0.00±0.00 5.86±1.21*3.63±0.81*#3.12±0.76*#△

        2.2 各組大鼠炎癥因子比較

        見表2。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠的TNF-α、CRP、IL-1β以及 IL-6水平明顯升高(P<0.05)。給予藥物干預(yù)后,陽性組和實(shí)驗組大鼠的炎癥因子水平明顯降低(P<0.05),兩組比較有顯著差異(P<0.05)。

        表2 各組大鼠炎癥因子比較(μg/mL,±s)

        表2 各組大鼠炎癥因子比較(μg/mL,±s)

        組別假手術(shù)組模型組陽性組實(shí)驗組n 15 15 15 15 TNF-α 39.89±6.16 54.75±7.08*47.09±7.14*#41.28±7.32*#△CRP 32.14±4.59 51.23±3.12*40.12±3.74*#35.47±5.26*#△IL-1β 4.53±0.67 6.72±0.85*4.66±0.54*#4.69±0.71*#△IL-6 21.12±2.67 30.47±3.86*23.57±3.45*#23.87±3.09*#△

        2.3 各組大鼠MMP-9和TIMP-1表達(dá)比較

        見表3,圖1。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠的MMP-9基因表達(dá)和MMP-9蛋白表達(dá)的相對豐度值明顯升高,TIMP-1基因表達(dá)和TIMP-1蛋白表達(dá)的相對豐度值明顯降低,具有顯著差異(P<0.05)。給予藥物干預(yù)后,陽性組和實(shí)驗組大鼠的MMP-9基因表達(dá)和MMP-9蛋白表達(dá)的相對豐度值明顯低于模型組,TIMP-1基因表達(dá)和TIMP-1蛋白表達(dá)的相對豐度值明顯高于模型組(P<0.05),兩組比較亦有顯著差異(P<0.05)。

        表3 各組大鼠MMP-9和TIMP-1表達(dá)比較(±s)

        表3 各組大鼠MMP-9和TIMP-1表達(dá)比較(±s)

        組別假手術(shù)組(n=15)模型組(n=15)陽性組(n=15)實(shí)驗組(n=15)基因表達(dá)蛋白表達(dá)的相對豐度值基因表達(dá)蛋白表達(dá)的相對豐度值基因表達(dá)蛋白表達(dá)的相對豐度值基因表達(dá)蛋白表達(dá)的相對豐度值MMP-9 0.656±0.045 0.597±0.084 1.572±0.206*0.942±0.091*0.908±0.108*#0.734±0.041*#0.723±0.10*#▲0.617±0.037*#▲TIMP-1 10.471±1.716 0.743±0.094 8.037±1.038*0.483±0.027 9.053±1.101*#0.548±0.100*#9.721±1.526*#▲0.619±0.091*#▲

        圖1 各組大鼠MMP-9、TIMP-1蛋白表達(dá)

        2.4 各組大鼠氧化應(yīng)激指標(biāo)比較

        見表4。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠的MDA水平明顯升高,SOD、GSH以及CAT水平明顯降低,具有顯著差異(P<0.05)。給予藥物干預(yù)后,陽性組和實(shí)驗組大鼠的MDA水平明顯低于模型組,SOD、GSH以及CAT水平明顯高于模型組(P<0.05),兩組比較有顯著性差異(P<0.05)。

        表4 各組大鼠氧化應(yīng)激指標(biāo)比較(±s)

        表4 各組大鼠氧化應(yīng)激指標(biāo)比較(±s)

        組別假手術(shù)組模型組陽性組實(shí)驗組n 15 15 15 15 MDA(mmol/mL)5.27±1.13 10.81±2.53*7.24±1.34*#6.32±1.51*#△SOD(U/mL)180.81±20.27 116.68±15.46*142.85±21.32*#136.89±13.31*#△GSH(U/mg)46.07±2.57 18.63±1.84*34.53±0.78*#29.56±0.81*#△CAT(U/mg)5.67±1.08 1.93±0.65 3.19±0.36 2.50±0.21*#△

        3 討論

        急性腦梗死是一種炎癥相關(guān)性疾病[7-8],腦缺血后存在炎癥反應(yīng),而炎癥反應(yīng)釋放大量的氧自由基、一氧化氮、興奮性氨基酸等毒性物質(zhì),可明顯造成腦組織不可逆的損傷,可誘發(fā)神經(jīng)細(xì)胞凋亡,加重腦損傷[9]。研究證實(shí),TNF-α、IL-1β、IL-6以及CRP均參與急性腦梗死的發(fā)生發(fā)展過程。TNF-α是炎癥反應(yīng)的起始因子,可誘導(dǎo)動脈粥樣硬化的形成,促進(jìn)腦神經(jīng)細(xì)胞凋亡[10]。IL-1β通過激活內(nèi)皮細(xì)胞促使血栓形成,或增加誘導(dǎo)細(xì)胞間黏附分子表達(dá),使大量中性粒細(xì)胞浸潤到腦組織,誘發(fā)炎性反應(yīng),是腦缺血損傷的病理生理基礎(chǔ)。CRP與低密度脂蛋白特異性結(jié)合后,可刺激黏附分子大量產(chǎn)生,進(jìn)而損害血管內(nèi)皮功能。

        研究發(fā)現(xiàn),MMP-9/TIMP-1與急性腦梗死患者腦梗死的梗死面積、出血轉(zhuǎn)化及預(yù)后密切相關(guān)[11-12],是其損傷和修復(fù)的關(guān)鍵啟動因素。研究MMP的特殊抑制劑或提高內(nèi)源性TIMP水平,開發(fā)具有調(diào)控MMP/TIMP平衡的治療方法,將為缺血性腦卒中的治療提供新的思路。MMPs作為金屬蛋白酶參與BBB完整性以及腦梗死溶栓后出血轉(zhuǎn)化,其中MMP-9與BBB完整性破壞的關(guān)系最為密切[13]。TIMP-1由巨噬細(xì)胞和結(jié)締組織細(xì)胞產(chǎn)生,其分泌受多種細(xì)胞因子影響,可對MMP-9產(chǎn)生抑制作用。

        氧化應(yīng)激是缺血性腦血管疾病中尤為重要的一個發(fā)病機(jī)制。急性腦梗死可使氧自由基大量產(chǎn)生,增加氧化應(yīng)激反應(yīng),誘導(dǎo)神經(jīng)毒性損傷導(dǎo)致神經(jīng)元死亡[14]。SOD為清除氧自由基的特異性酶,是清除自由基連鎖反應(yīng)的標(biāo)志物[15]。MDA是細(xì)胞膜脂質(zhì)過氧化產(chǎn)生的穩(wěn)定代謝物。CAT是抗氧化酵素系統(tǒng)的重要一員,可發(fā)生過氧化氫的歧化,使細(xì)胞免于遭受H2O2的毒害[16]。GSH是一種含γ-酰胺鍵和巰基的三肽,與SOD一起參與細(xì)胞中抗氧化作用。

        中醫(yī)認(rèn)為急性局灶性腦缺血因痰瘀互結(jié)、腦脈不通所致,兼夾氣血、脾胃升降失調(diào),治宜活血醒腦開竅。腦栓通膠囊由蒲黃、赤芍、郁金、天麻、漏蘆組成,具有活血通絡(luò),祛風(fēng)化痰之功效,用于風(fēng)痰瘀血痹阻脈絡(luò)引起的缺血性中風(fēng)病中經(jīng)絡(luò)急性期和恢復(fù)期。方中蒲黃、赤芍化瘀止痛;郁金活血行氣、止痛解郁;天麻熄風(fēng)止痙、平抑肝陽、祛風(fēng)通絡(luò);漏蘆清熱解毒散結(jié),諸藥合用具有活血通絡(luò),祛風(fēng)化痰之功效?,F(xiàn)代藥理學(xué)研究發(fā)現(xiàn)[17],腦栓通膠囊可降低血瘀模型大鼠的全血黏度、全血還原黏度、血漿黏度,延長血栓形成時間,可有效抑制對結(jié)扎雙側(cè)頸總動脈致實(shí)驗性不完全缺血模型大鼠的腦血管通透性,改善大腦中動脈阻塞致局灶性腦缺血模型大鼠的神經(jīng)癥狀,降低腦梗死范圍。

        本研究結(jié)果顯示,與假手術(shù)組比較,模型組大鼠的神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分、TNF-α、CRP、IL-1β以及IL-6水平、MMP-9基因表達(dá)和MMP-9蛋白表達(dá)的相對豐度值以及MDA水平明顯高升高,TIMP-1基因表達(dá)和TIMP-1蛋白表達(dá)的相對豐度值、SOD、GSH以及CAT水平明顯降低,具有顯著差異。藥物干預(yù)后,陽性組和實(shí)驗組大鼠的神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分、炎癥因子、MMP-9基因表達(dá)和MMP-9蛋白表達(dá)的相對豐度值明顯低于模型組,TIMP-1基因表達(dá)和TIMP-1蛋白表達(dá)的相對豐度值、SOD、GSH以及CAT水平明顯高于模型組,兩組比較均有顯著差異。提示腦栓通膠囊能有效地降低急性腦梗死大鼠的神經(jīng)功能評分和神經(jīng)行為學(xué)評分,降低炎癥因子和自噬相關(guān)蛋白水平,減輕氧化應(yīng)激反應(yīng)。

        綜上所述,腦栓通膠囊可有效地降低急性腦梗死模型大鼠炎癥因子水平,改善MMP-9和TIMP-1表達(dá),減輕其氧化應(yīng)激指標(biāo)。

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