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        枳殼類中藥材干燥果實DNA提取方法的優(yōu)化實驗設(shè)計

        2020-06-18 04:06:34李明娟金佩芬黃越燕丁寶月
        實驗室研究與探索 2020年3期
        關(guān)鍵詞:實驗方法

        李明娟, 黃 嬛, 金 莉, 金佩芬, 黃越燕, 丁寶月

        (1.嘉興學(xué)院醫(yī)學(xué)院,浙江嘉興314001;2.嘉興市食品藥品檢驗檢測院,浙江嘉興314001)

        0 引 言

        實驗教學(xué)在藥學(xué)教學(xué)中占有較大比重,在藥學(xué)人才培養(yǎng)中處于十分重要的地位,對培養(yǎng)學(xué)生的實驗技能和創(chuàng)新能力有著不可替代的作用[1-5]。將學(xué)科前沿引入到實驗教學(xué)中,可以引導(dǎo)學(xué)生更加有效地學(xué)習(xí)和運用基礎(chǔ)知識,感受學(xué)以致用的樂趣,激發(fā)創(chuàng)新思維,培養(yǎng)創(chuàng)新能力[6-9]。

        枳殼為常用中藥,是蕓香科植物酸橙(Citrus aurantiumL.)及其栽培變種黃皮酸橙C. aurantium‘Huangpi’、代代花C. aurantium‘Daidai’、朱欒C.aurantium‘Chuluan’、塘橙C. aurantium‘Tangcheng’的干燥未成熟果實。臨床主要用于治療胸悶脹痛、食積不化、痰飲、胃下垂、脫肛、子宮脫垂等癥[10]。由于枳殼品種繁多、種植區(qū)域廣泛,來源復(fù)雜,兼之以次充好、以假充真,使得同物異名、同名異物現(xiàn)象嚴重,枳殼交易市場混亂,為研究和臨床用藥帶來不便。因此,如何有效、快速地鑒定枳殼成為一個亟須解決的問題。DNA分子標記技術(shù)在中藥材鑒定中具有廣泛的應(yīng)用,具有微量、快速、準確、特異性強、對樣本要求較低[11-13]的特點,能夠彌補傳統(tǒng)生藥鑒定方法的不足。DNA提取是DNA 分子標記技術(shù)中關(guān)鍵的一步,能否順利進行后續(xù)鑒定取決于提取的DNA 的質(zhì)量。中藥材是干品,且經(jīng)炮制加工成碎片,很難用基原、外觀、顯微及理化等常規(guī)方法進行鑒別。中藥材中的DNA 可能會在炮制和貯藏過程中受到破壞,存在不同程度的DNA降解現(xiàn)象。枳殼類中藥材分子鑒定也同樣存在上述問題[14]。因此,如何從枳殼類中藥材干燥果實中提取高質(zhì)量的DNA 成為其分子鑒定的一個難題。本實驗的設(shè)計采用改良的DNA 提取方法對4 種枳殼類藥材(朱欒、香櫞、枳殼、代代花)的干燥果實不同部位進行DNA提取,比較提取質(zhì)量,優(yōu)化提取條件,有利于藥學(xué)專業(yè)學(xué)生認識學(xué)科發(fā)展前沿、提升科研創(chuàng)新能力。

        1 實驗材料與方法

        1.1 藥 材

        實驗所用的4 種枳殼類栽培變種由浙江省食品藥品檢驗研究院提供。樣本信息詳見表1。

        表1 樣品來源表

        1.2 儀器與試劑

        PCR相關(guān)試劑,快捷型植物基因組DNA提取系統(tǒng)(DP321)購于天根生化科技(北京)有限公司;引物由生工生物工程(上海)有限公司合成;實驗中的儀器包括PCR 擴增儀BIO-RAD DNA Engine,核酸電泳儀Power Pac Basic,Bio-Rad 公司的凝膠成像系統(tǒng)Molecular Imager? Gel Doc TM XR +System。

        1.3 實驗設(shè)計

        1.3.1 朱欒DNA的提取

        以朱欒的干燥果實為取材對象,按照DNA提取方法的不同分為試劑盒組、改良組,每一組根據(jù)采樣部位的不同分為外果皮、中果皮、囊及內(nèi)果皮組。試劑盒組按照快捷型植物基因組DNA 提取系統(tǒng)(DP321)的操作說明進行DNA提取,改良組的提取方法如下:①取枳殼類藥材樣品組織約50 mg,研成極細粉(要求過120 目篩),裝入5 mL EP管中。②在EP管中加入0℃超純水,置于0 ℃冰箱浸泡約30 h,每隔10 h 換1次水。12 000 r/min離心5 min,用移液槍小心移去上清液,開蓋置于40 ℃烘箱中晾干。③將緩沖液FP1和FP2 置于37 ℃水浴中預(yù)熱約2 min(若天氣炎熱,此步驟可省略不做)。④在樣品中加入1 000 μL 緩沖液FP1 和15 μL RNaseA(10 mg/mL),渦旋振蕩1 min,60 ℃水浴20 min,每隔5 min 劇烈搖蕩一次。⑤繼續(xù)加入325 μL 緩沖液FP2,充分混勻,渦旋振蕩1 min。⑥12 000 r/min離心5 min,將上清液轉(zhuǎn)至新的離心管中。⑦重復(fù)⑥。⑧向上清液中加入0.2 倍2.5 M的NaCl 和0.7 倍體積的異丙醇,充分混勻,12 000 r/min離心2 min,棄上清液,保留沉淀。⑨加入600 μL 70%乙醇,渦旋振蕩5 s,12 000 r/min離心2 min,棄上清液。⑩重復(fù)⑨?!? 開蓋倒置,置于40 ℃烘箱徹底晾干殘余乙醇。○12 加入50 μL 滅菌蒸餾水或超純水溶解(60 ℃水浴助溶),期間顛倒混勻數(shù)次,最終得到DNA 溶液?!?3 所得DNA 溶液可置于4 ℃冰箱備用,若長期不用可保存于-20 ℃冰箱中。

        1.3.2 其余3 種藥材DNA的提取

        以3 種枳殼類藥材香櫞、胡柚、枳殼、代代花的干燥果實作為取材對象,取材部位均選取5 種藥材的外果皮,按改良后的提取方法進行DNA提取。

        1.4 提取DNA的濃度、純度測定

        取10 μL DNA樣品,用超純水稀釋至60 μL,以超純水為空白對照測定其濃度、A260/A280和A260/A230值,并記錄數(shù)據(jù)。

        1.5 DNA瓊脂糖電泳

        制備質(zhì)量分數(shù)為1.5%的瓊脂糖凝膠,8 μL DNA樣品與2 μL上樣液混合后加入加樣孔中,電泳槽電壓調(diào)至120 ~140 V,待loding buffer 跑到下游2/3 ~3/4處,關(guān)閉電源,將膠塊浸沒于EB 染色液中染色10min,取出后用清水漂洗數(shù)次,在凝膠成像系統(tǒng)中觀察結(jié)果,拍照留存。

        1.6 PCR擴增

        以提取的DNA為模板,引物選取及擴增體系參照相關(guān)文獻進行[3],引物序列詳見表2,PCR擴增體系詳見表3。擴增程序為:94 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃變性30s,52 ℃退火45 s,72 ℃延伸2 min,共35 個循環(huán);72 ℃延伸7 min,4 ℃保存。擴增產(chǎn)物在1.5%的瓊脂糖凝膠(EB染色)上電泳,用凝膠成像儀拍照,分析。

        表2 PCR擴增引物序列

        表3 PCR擴增反應(yīng)20 μL反應(yīng)體系

        2 結(jié) 果

        2.1 DNA提取方法的優(yōu)化

        朱欒是中藥材枳殼的一種栽培變種,以朱欒外果皮為取材對象,分別按試劑盒操作和改良后的提取方法(以下分別簡稱為方法1 和方法2)進行DNA提取,由表4 可見,用改良的方法提取到的DNA 純度較高,A260/A280值較接近標準值1.8,A260/A230的比值也在2.5附近,DNA瓊脂糖電泳結(jié)果也證明改良方法提取到的DNA條帶更清楚(見圖1),說明改良后提取到的DNA純度較高。雖然表4 中,試劑盒方法提取的DNA濃度較高,但是參照A260/A280及A260/A230的比值可以推斷所含雜質(zhì)較多,不代表真實的DNA濃度。

        表4 不同方法提取朱欒外果皮DNA濃度和純度檢測結(jié)果

        圖1 不同方法提取朱欒DNA電泳圖

        2.2 樣品取材部位的不同對DNA提取的影響

        分別取朱欒外果皮、中果皮、囊及內(nèi)果皮用改良后的方法進行DNA提取,稀釋DNA提取液進行DNA濃度測定和瓊脂糖電泳測定,以AW88 為引物進行ISSRPCR擴增,擴增產(chǎn)物進行電泳,檢測結(jié)果見表5。

        表5 不同取材部位提取朱欒DNA濃度和純度檢測結(jié)果

        從表5 可知,DNA 提取液濃度順序:外果皮>內(nèi)果皮>囊>中果皮;DNA 提取液A260/A280的值只有外果皮的最接近標準值1.8;DNA 提取液A260/A230的值外果皮2.64,比較接近標準值2.5;說明外果皮提取的DNA質(zhì)量最好,濃度和純度也均比其他部位高。

        DNA電泳圖(見圖2)中,外果皮的條帶最清晰明亮;內(nèi)果皮次之;囊的條帶較為模糊,難以辨別;中果皮無DNA 電泳條帶出現(xiàn)。該結(jié)果說明外果皮提取的DNA質(zhì)量最好。

        圖2 不同部位提取朱欒DNA電泳圖

        如圖3 所示,外果皮DNA 的PCR 產(chǎn)物最清晰明亮,內(nèi)果皮次之,中果皮和囊相近。這進一步說明外果皮提取DNA更適合朱欒分子鑒定的后續(xù)反應(yīng)。

        圖3 不同部位提取朱欒DNA的ISSR-PCR電泳圖

        2.3 枳殼類藥材DNA提取

        選取3 種枳殼類藥材香櫞、枳殼、代代花作為實驗對象,取材部位均選取5 種藥材的外果皮,按改良后的提取方法進行DNA 提取,由表6 所示可見,不同品種的枳殼類藥材,DNA 提取濃度稍有差異,純度尚可,A260/A280的值均在1.8 附近。

        表6 不同品種枳殼類藥材DNA提取液的濃度和純度檢測結(jié)果

        在圖4 所示的PCR 產(chǎn)物電泳圖中,5 條引物中AW88、AW90 均能使3 種枳殼品種的DNA 擴增出清晰明亮的多態(tài)性條帶。AW102、AW103、AW241 引物擴增后為出現(xiàn)清晰條帶。

        圖4 改良法提取3種枳殼類藥材外果皮DNA的ISSR-PCR電泳圖

        3 實驗教學(xué)效果

        通過本實驗,使學(xué)生掌握了干燥枳殼的DNA提取及優(yōu)化方法。干燥中藥材的DNA 受到了不同程度的破壞,易降解,因此實驗設(shè)計時通過優(yōu)化水浴溫度、裂解時間、藥材粉碎度及取材部位等因素,比較實驗結(jié)果,讓學(xué)生充分裂解中藥材DNA 提取時的注意事項,掌握凝膠電泳、DNA濃度純度測定等基本的分子實驗技能,大大激發(fā)了學(xué)生的科研熱情,培養(yǎng)了學(xué)生嚴謹?shù)目茖W(xué)態(tài)度。

        4 結(jié) 語

        本實驗中優(yōu)化了枳殼類中藥材干燥果實的DNA提取方法,并證實外果皮部分更適于提取DNA用于后續(xù)鑒定反應(yīng),為干燥中藥材的DNA提取及分子鑒定提供了一定的參考。實驗內(nèi)容可行性較強,可在現(xiàn)有的實驗室基礎(chǔ)上開展,開拓了學(xué)生的科學(xué)視野,激發(fā)了學(xué)生對科學(xué)研究的濃厚興趣。實驗中加入了對各影響因素的優(yōu)化,內(nèi)容多樣,并加入自主查閱文獻及總結(jié)環(huán)節(jié),提高了學(xué)生綜合分析問題的能力。教學(xué)實踐表明,學(xué)生非常喜歡參與到這類研究型實驗,研究型實驗可以將學(xué)生的專業(yè)課知識學(xué)以致用,在分析科學(xué)問題時進一步鞏固所學(xué)到的專業(yè)基礎(chǔ)知識。

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