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        氫氣對CO2氣腹致大鼠腎臟損傷的保護(hù)作用及相關(guān)機(jī)制研究

        2020-05-14 13:18:02張建濤蔣麗紅陳明子董奕含范宏剛
        關(guān)鍵詞:氣腹氫氣氧化應(yīng)激

        張建濤 ,蔣麗紅,陳明子,王 婷,董奕含,范宏剛

        (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030;2.黑龍江省實(shí)驗(yàn)動物與比較醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,哈爾濱 150030)

        與傳統(tǒng)手術(shù)相比,腹腔鏡手術(shù)具有視野清晰、出血少、術(shù)后恢復(fù)時間短等優(yōu)勢,廣泛應(yīng)用獸醫(yī)臨床實(shí)踐[1],在動物疾病診斷和治療過程中發(fā)揮重要作用[2-3]。通常需連續(xù)向腹腔內(nèi)注入CO2,提供充足腹腔鏡手術(shù)空間,手術(shù)結(jié)束后排出CO2,造成機(jī)體缺血再灌注損傷,影響生理功能[4]。腎臟由于血供豐富,最易受影響,缺血再灌注損傷導(dǎo)致的急性腎衰竭已成為腹腔鏡手術(shù)常見并發(fā)癥。缺血損害器官,再灌注則導(dǎo)致大量自由基產(chǎn)生,抑制機(jī)體的抗氧化防御系統(tǒng),產(chǎn)生氧化應(yīng)激損傷[5]。外科手術(shù)過程常選擇低氣腹壓灌注和缺血預(yù)處理[6-7],但對減輕氣腹對機(jī)體損傷效果不理想。

        研究指出,氫氣具有抗氧化、抗炎和抗凋亡作用,可顯著改善腦缺血再灌注引起的氧化應(yīng)激損傷[8],氫氣治療作用在醫(yī)學(xué)領(lǐng)域成為全新的研究方向。因此,本試驗(yàn)探究氫氣對CO2氣腹引起的腎臟缺血再灌注性損傷的保護(hù)作用,并初步闡明其機(jī)制,為臨床上減輕CO2氣腹所致腎臟損傷提供一種可選擇的保護(hù)方法,促進(jìn)腹腔鏡外科和氫氣醫(yī)學(xué)發(fā)展。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)動物及分組

        15 只體重250~300 g 雄性Wistar 大鼠,由哈爾濱醫(yī)科大學(xué)試驗(yàn)動物學(xué)部提供,大鼠飼喂標(biāo)準(zhǔn)化鼠糧,不限制飲水,試驗(yàn)過程中保持飼養(yǎng)環(huán)境不變。

        試驗(yàn)動物隨機(jī)分為3 組,分別為對照組(C)、氣腹組(P15)和氫氣組(H2),每組各5 只大鼠。C組大鼠僅維持麻醉90 min;P15 組為CO2氣腹組,氣腹壓力維持15 mmHg,時間為90 min;H2組于氣腹前10 min皮下注射氫氣(0.2 mL·kg-1),10 min后建立CO2氣腹,并維持15 mmHg氣腹90 min。

        1.2 主要儀器與試劑

        儀器:紫外分光光度計(jì)(美國Thermo 公司),熒光定量PCR 儀(美國Roche,Light Cycler 2.0),成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司,Tanon 5200)

        試劑:肌酐(Cr)、尿素氮(BUN)、丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽(GSH)和過氧化氫酶(CAT)檢測試劑盒(購自南京建城生物工程研究所);PrieScriptTMRT 試劑盒和SYBR?Premix Ex Taq?Ⅱ試劑盒(購自大連TaKaRa 公司);Trizol 試劑(購自美國Invitrogen);Nrf2 一抗(購自武漢愛博泰克生物科技有限公司),HO-1和NQO1一抗(購自美國Abcam 公司),Bax,Bcl-2 和Caspase-3一抗(購自沈陽萬類生物公司);HRP-山羊抗兔IgG(購自北京中山金橋生物技術(shù)有限公司):ECL試劑盒(購自碧云天生物技術(shù)公司);其他常規(guī)藥品及試劑均為國產(chǎn)。

        1.3 血液和組織樣本采集

        放氣后2 h斷頭處死大鼠。收集血樣,分離血清并于-20 ℃下保存,用于腎功能檢測。取大鼠腎臟,分為3部分,一部分固定于10%福爾馬林,制作病理組織學(xué)切片;一部分在冷鹽水中勻漿,上清液存儲于-20 ℃,用于檢測肝組織氧化應(yīng)激指標(biāo);第三部分放于液氮中速凍并存儲于-80 ℃,用于相關(guān)基因和蛋白檢測。

        1.4 生化分析

        根據(jù)檢測試劑盒說明檢測血清中Cr 和BUN 含量及腎臟組織勻漿中氧化應(yīng)激指標(biāo)MDA、SOD、GSH、CAT含量。

        1.5 組織病理學(xué)檢查

        將固定在10%福爾馬林中的腎臟修剪合適尺寸,于包埋盒中流水沖洗過夜,梯度脫水、透明、浸蠟,包埋后切片、脫蠟,HE 染色,光學(xué)顯微鏡觀察腎臟組織病理學(xué)變化。

        1.6 熒光定量PCR

        采用qRT-PCR方法開展基因水平檢測。Trizol試劑從腎臟中提取總RNA,使用PrieScriptTMRT 試劑盒將其反轉(zhuǎn)錄為cDNA。根據(jù)產(chǎn)品說明書,使用SYBR?Premix Ex Taq?Ⅱ,在LightCycler 2.0中實(shí)時定量PCR。具體引物(見表1)由TaKaRa 合成。反應(yīng)參數(shù)如下:95 ℃持續(xù)30 s,45 個循環(huán)在95 ℃持續(xù)5 s,引物特異性退火溫度持續(xù)20 s,并在72 ℃延伸20 s。使用2-ΔΔCt方法分析相對mRNA表達(dá)。

        1.7 蛋白質(zhì)印跡

        將冰凍腎臟組織在RIPA∶PMSF(1 000∶1)裂解液中,充分裂解勻漿。將勻漿于4 ℃下12 000 g離心20 min,取上清,BAC蛋白試劑盒測定上清中蛋白質(zhì)含量。將每個樣品中等量蛋白質(zhì)(30 μg)加入5×上樣緩沖液,100 ℃變性5 min。冷卻后,開展后續(xù)Western blot試驗(yàn)。

        采用Western blot 技術(shù)檢測相關(guān)蛋白表達(dá)。按照說明書使用SDS-PAGE 凝膠快速配制試劑盒配制凝膠。點(diǎn)樣,接通電源,80 V,30 min分離上層膠,120 V,60 min分離下層膠;取出凝膠板,采用濕轉(zhuǎn)方法,300 mA,40~80 V下,將蛋白帶轉(zhuǎn)移至NC 膜上;將NC 膜在37 ℃,5%脫脂乳中封閉2 h。將NC膜;置于含有一抗的稀釋液中4 ℃孵育過夜,再用二抗HRP-山羊抗兔IgG在37 ℃孵育2 h。使用ECL試劑盒對信號可視化處理,并使用成像系統(tǒng)掃描印跡,imagine Pro-plus 6.0讀取蛋白灰度值。

        1.8 統(tǒng)計(jì)分析

        數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(SD)。使用SPSS 20.0 統(tǒng)計(jì)分析。與C 組相比,“*”代表P<0.05;“**”代表P<0.01;與P15 組相比,“#”代表P<0.05,“##”代表P<0.01。

        表1 引物序列Table 1 Primer sequences

        2 結(jié)果與分析

        2.1 血清Cr和BUN水平

        與C 組相比,P15 和H2組氣腹后血清BUN 和Cr 水平極顯著升高(P<0.01)。但與P15 組相比H2組BUN和顯著降低(P<0.05,見圖1)。

        2.2 腎臟組織病理學(xué)變化

        C 組的腎組織未顯示任何明顯病理變化(見圖2A)。P15 組,CO2氣腹導(dǎo)致腎小管上皮細(xì)胞周圍明顯液泡變性(見圖2B);H2組觀察到相似組織學(xué)變化,但損傷變形程度較?。ㄒ妶D2C)。

        圖1 血清中BUN及Cr含量Fig.1 Serum BUN and Cr levels

        2.3 腎臟組織氧化應(yīng)激指標(biāo)變化

        與C 組相比,P15 組和H2組血清中MDA 極顯著升高(P<0.01),血清中GSH 和CAT 極顯著下降(P<0.01),H2 組GSH 和CAT 極 顯 著 降 低(P<0.01),SOD 顯著降低(P<0.05);與P15 組相比,血清中MDA、SOD、GSH和CAT均差異極顯著(P<0.01,見圖3)。

        圖2 腎臟組織病理學(xué)變化(200×)Fig.2 Histopathological changes of kidney

        圖3 腎臟組織中MDA、SOD、GSH和CAT含量Fig.3 MDA,SOD,GSH and CAT levels in kidney tissues

        2.4 Nrf2信號通路基因和蛋白的表達(dá)水平

        與C 組 相 比,P15 組Nrf2、HO-1 和NQO1 mRNA水平顯著上調(diào)(P<0.05);在H2干預(yù)氣腹過程后,Nrf2、HO-1 和NQO1 mRNA 進(jìn)一步升高,與P15組相比,差異顯著(P<0.05)。蛋白表達(dá)結(jié)果證實(shí)實(shí)時PCR結(jié)果(見圖4)。

        2.5 Bax/Bcl-2和Caspase-3基因和蛋白表達(dá)

        與C 組相比,氣腹后Bax/Bcl-2 和Caspase-3 mRNA 表達(dá)極顯著增加(P<0.01),H2組Bax/Bcl-2 mRNA 表達(dá)顯著下降(P<0.05),Caspase-3 mRNA表達(dá)顯著升高Caspase-3 mRNA;與P15 組,H2組Bax/Bcl-2 和Caspase-3 mRNA 表達(dá)差異(P<0.01)極顯著。蛋白表達(dá)結(jié)果驗(yàn)證基因表達(dá)結(jié)果(見圖5)。

        2.6 炎性細(xì)胞因子基因和蛋白表達(dá)

        與C 組相比,P15 和H2 組腎臟組織中TNF-α,ICAM-1 和NF-κBp65 mRNA 表達(dá)均極顯著升高(P<0.01),P15 組IL-10 mRNA 表達(dá)極顯著下降(P<0.01),而H2組IL-10 mRNA 表達(dá)顯著下降(P<0.05);與P15 組相比,ICAM-1 和IL-10 mRNA 表達(dá)差異均極顯著,NF-κBp65和TNF-α mRNA表達(dá)差異不顯著(P>0.05)。蛋白表達(dá)結(jié)果與基因表達(dá)結(jié)果一致(見圖6)。

        圖4 腎臟中Nrf2、HO-1、NQO1基因和蛋白表達(dá)Fig.4 Nrf2,HO-1 and NQO1 genes and proteins expression in the kidney

        圖5 腎臟中Bax/Bcl-2和Caspase-3基因和蛋白質(zhì)表達(dá)Fig.5 Bax/Bcl-2 and Caspase-3 genes and protein expression in the kidney

        圖6 腎臟中TNF-α、ICAM-1、IL-10和NF-κBp65基因和蛋白質(zhì)表達(dá)Fig.6 TNF-α,ICAM-1,IL-10 and NF-κBp65 genes and proteins expression in the kidney

        3 討 論

        腎臟通過腎動脈由腹主動脈供應(yīng)血液,血流量大,血供豐富。在腹腔鏡手術(shù)期間,由于CO2氣腹壓迫腎臟血管,使腎主動脈、腎段動脈、葉間動脈、腎主靜脈、腎段靜脈、葉間靜脈血液流速明顯變慢[9],腎臟缺血、缺氧,當(dāng)CO2氣腹肖除且血液循環(huán)恢復(fù)正常時,血液被氧氣重新灌注,導(dǎo)致組織和器官缺血再灌注損傷[10]。李維等發(fā)現(xiàn)隨氣腹壓升高,腎臟病理組織學(xué)在形態(tài)上發(fā)生改變,腎小管上皮細(xì)胞腫脹,影響腎功能[11]。臨床上氣腹壓較高可使腎臟BUN和Cr顯著升高[12]。與本試驗(yàn)結(jié)果一致,在氣腹壓15 mmHg 時,造成腎臟功能損傷,但氣腹前皮下注射H2干預(yù)后BUN和Cr水平得到改善,組織病理結(jié)果顯示腎小管上皮損傷減輕,說明皮下注射H2可減輕CO2氣腹后腎損傷程度。

        H2在生物體抗氧化防御機(jī)制中具有重要作用[13]。外源H2補(bǔ)充劑可治療慢性氧化應(yīng)激相關(guān)疾病[14]。Nrf2 及其下游調(diào)控基因HO1和NQO1 為調(diào)控抗氧化反應(yīng)的重要基因,在氧化應(yīng)激損傷中發(fā)揮保護(hù)作用[15-16]。SOD、CAT 和GSH 通過清除過氧化物和其他自由基,減少脂質(zhì)過氧化并消除受傷細(xì)胞和組織維持氧化及抗氧化平衡。MDA 為細(xì)胞膜不飽和脂質(zhì)過氧化最終產(chǎn)物,為氧化應(yīng)激敏感指標(biāo)。試驗(yàn)顯示CO2氣腹后Nrf2,HO-1和NQO1上調(diào),表明CO2氣腹誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激觸發(fā)體內(nèi)抗氧化反應(yīng),使MDA 顯著升高,SOD,GSH 和CAT 含量顯著下降,引起腎臟氧化應(yīng)激損傷。但H2干預(yù)后,與氣腹組相比,Nrf2,HO-1 和NQO1 進(jìn)一步顯著升高,MDA 顯著下降,SOD、GSH 和CAT 含量顯著升高,減輕機(jī)體腎臟組織氧化損傷。與胡英等N-乙酰半胱氨酸可有效預(yù)防長時間氣腹誘發(fā)氧化應(yīng)激所致的腎功能損害結(jié)論一致[17]。

        炎癥反應(yīng)為缺血再灌注損傷機(jī)制之一,在缺血再灌注損傷過程中活性氧(ROS)的產(chǎn)生,激活NF-κB 轉(zhuǎn)錄因子及炎癥細(xì)胞因子,包括TNFα,IL-6 和ICAM-1 在內(nèi)表達(dá)上升,IL-10 表達(dá)下降[18-19]。TNF-α和IL-6為促炎因子,促進(jìn)炎癥反應(yīng)發(fā)生,IL-10為一種抗炎細(xì)胞因子,抑制炎癥反應(yīng)發(fā)生,ICAM-1是重要粘附因子,促進(jìn)炎癥細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞粘附增強(qiáng),這幾種因子共同作用引發(fā)炎癥反應(yīng)[20-21]。本試驗(yàn)應(yīng)用氫氣干預(yù)氣腹過程后,抑制ICAM-1 和TNF-α分泌,增加IL-10 分泌,表明氫氣干預(yù)氣腹具有保護(hù)性抗炎作用,可減輕腎臟損傷,保護(hù)腎功能。

        缺血再灌注可激活腎臟組織內(nèi)細(xì)胞凋亡通路,導(dǎo)致腎臟損傷[22]。Bcl-2 和Bax 為細(xì)胞凋亡重要介體,細(xì)胞中Bax/Bcl-2 為細(xì)胞凋亡指標(biāo),其增加代表細(xì)胞凋亡。外在凋亡途徑由胞質(zhì)中胱天蛋白酶的活化介導(dǎo),活化Caspase-3水平為細(xì)胞凋亡指標(biāo)[23]。李維等指出高氣腹壓力可導(dǎo)致Caspase-3和Bax/Bcl-2 表達(dá)升高,使腎臟組織細(xì)胞凋亡[11]。陳貝貝等發(fā)現(xiàn)缺血預(yù)處理后Bax/Bcl-2 顯著下降,說明氣腹造成的腎臟組織細(xì)胞凋亡可以通過預(yù)處理得到緩解[24]。本試驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)Caspase-3 和Bax/Bcl-2 表達(dá)升高,說明氣腹造成腎臟組織細(xì)胞凋亡,H2干預(yù)后腎臟組織細(xì)胞凋亡緩解。

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