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        低氘水聯(lián)合富血小板血漿對大鼠糖尿病潰瘍創(chuàng)面愈合的影響

        2020-04-15 03:17:52王湘琦趙超然熊愛兵
        關(guān)鍵詞:毛細血管纖維細胞新生

        王湘琦,趙超然,熊愛兵

        西南醫(yī)科大學附屬醫(yī)院燒傷整形外科,瀘州 646000

        糖尿病足潰瘍(diabetes foot ulcer,DFU)是常見的糖尿病慢性合并癥之一,是導致糖尿病患者截肢致殘的主要原因。潰瘍的發(fā)生被認為是截肢的前兆,而下肢截肢經(jīng)常會導致糖尿病患者死亡,70%的患者在截肢手術(shù)后5年內(nèi)死亡[1-2]。DFU的高截肢率和高死亡率,嚴重影響患者的生活質(zhì)量,給家庭帶來了經(jīng)濟負擔。因此,預防和治療DFU十分重要。富血小板血漿(platelet-rich plasma,PRP)屬于血小板濃縮物,含有大量高濃度的生長因子,可促進軟組織的修復。前期有學者研究發(fā)現(xiàn),PRP對于糖尿病潰瘍創(chuàng)面愈合有獨特的優(yōu)勢和效果[3],在統(tǒng)計學上有更高的愈合率和更低的并發(fā)癥發(fā)生率[4]。低氘水(deuterium depleted water,DDW)為氘體積分數(shù)低于0.015%的水[5],有一系列生物學效應,如抗氧化、防衰老、抗抑郁、抗輻射、保護心血管系統(tǒng)、降血糖、抗腫瘤等作用[6]。本實驗擬觀察DDW聯(lián)合PRP在大鼠糖尿病潰瘍創(chuàng)面中的作用。

        1 材料與方法

        1.1 動物

        健康清潔級雄性 SD 大鼠120只,質(zhì)量160~200 g,購自遼寧長生生物股份有限公司,生產(chǎn)許可證號為SCXK(遼)2015-0001,飼養(yǎng)于西南醫(yī)科大學實驗動物中心。

        1.2 主要儀器與試劑

        鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)、檸檬酸、檸檬酸三鈉、葡萄糖均購自北京索萊寶公司;水合氯醛(源葉生物);大鼠基質(zhì)金屬蛋白酶-9(MMP-9)、組織金屬蛋白酶抑制物 -1(TIMP-1)Elisa試劑盒(上海酶聯(lián)生物科技有限公司);高速冷凍離心機(Eppendorf);酶標儀(Rayto,RT-6100);洗板機(Tianshi,988洗板機);電熱恒溫箱(武漢-恒蘇凈科學儀器有限公司);移液器(Finnpipette,20~200 μL);羅氏血糖儀(活力型)、羅氏血糖試紙、飛科剃刀;高脂高糖飼料(67%大鼠維持飼料+10%豬油+20%蔗糖+2.5%膽固醇+0.5%膽酸鈉,由北京科澳協(xié)力飼料有限公司提供);大鼠普通飼料(成都達碩生物科技有限公司);低氘水(瀘州哈羅德健康科技有限公司)。本實驗用水符合三級水標準。

        1.3 動物分組及模型的建立

        健康清潔級雄性SD大鼠120只,適應性喂養(yǎng)1周后,選100只隨機分為正常對照組(n=20)和糖尿病組(n=80),分別稱取2組大鼠體質(zhì)量,測隨機血糖。剩余20只大鼠用于制取PRP,普通飼料飼養(yǎng),不參與造模與分組。

        1.3.1 糖尿病大鼠潰瘍模型的建立及分組 糖尿病組大鼠予以高脂高糖飼料飼養(yǎng)。飼養(yǎng)4周后,禁食12 h(不禁水),給予1% 的STZ 溶液(臨用前用0.1 mol/L、pH4.5的檸檬酸 - 檸檬酸鈉緩沖液配制,冰浴、避光操作)單次腹腔注射(30 mg/kg),7 d后采用尾靜脈采血法測大鼠隨機血糖,血糖≥16.7 mmol/L表示糖尿病模型大鼠建立成功[7]。成模后以7% 水合氯醛(0.5 mL/100 g)腹腔注射進行麻醉,備皮消毒,在背部制作約3 cm×3 cm的正方形創(chuàng)面,深達筋膜。拍照后醫(yī)用紗布覆蓋創(chuàng)面,膠帶包扎固定。將造模成功[8-9]的72只大鼠隨機分為糖尿病模型組(B組)、PRP組(C組)、低氘水組(D組)及低氘水聯(lián)合PRP組(E組),每組各18只。

        1.3.2 正常大鼠潰瘍模型建立 正常對照組(A組)繼續(xù)予普通飼料喂養(yǎng)4周后,禁食12 h,不禁水,在相同操作條件下注射等體積的檸檬酸 - 檸檬酸鈉緩沖液,7 d后采用尾靜脈采血法測血糖。以7%水合氯醛(0.5 mL/100 g)腹腔注射,備皮消毒,在背部制作約3 cm×3 cm的正方形創(chuàng)面,深達筋膜。拍照后醫(yī)用紗布覆蓋創(chuàng)面,膠帶包扎固定。

        1.4 PRP的制備

        采用改良Landesberg法[10]制作。每次取2~3只大鼠,稱重麻醉后,用預先裝有1 mL檸檬酸葡萄糖溶液(ACD抗凝劑)的5 mL真空離心管及一次性靜脈采血針,直視下從每只大鼠腹主動脈取血約10 mL(約5 mL血裝一離心管),搖勻后,取1 mL全血進行全血細胞分析,測得血小板計數(shù)為646×109。第一次以200×g在4 ℃條件離心15 min,離心后管內(nèi)全血分為3層,下層為紅細胞,上層為上清液,中間交界層即富含血小板。在劃分中層與下層兩部分的線下方2 mm處標記,移取該點以上的全部內(nèi)容物[11]至另一不裝有抗凝劑的空白離心管,搖勻,再以500×g在4 ℃條件離心10 min,得到2個部分,上層即貧血小板血漿(platelet poor plasma,PPP),下層為含有少量紅細胞、血漿和血小板混合物,即PRP。用移液槍吸取上份PPP,即獲得PRP,經(jīng)全血細胞分析測得血小板計數(shù)為 4 296×109。

        1.5 各組干預方案

        A組和B組:生理鹽水灌胃,飲用普通水;潰瘍局部常規(guī)消毒后涂抹生理鹽水,然后無菌紗布覆蓋。C組:生理鹽水灌胃,飲用普通水;潰瘍局部常規(guī)消毒后涂抹PRP,然后用無菌紗布覆蓋。D組:低氘水灌胃,飲用低氘水;潰瘍局部常規(guī)消毒后涂抹生理鹽水,然后無菌紗布覆蓋。E組:低氘水灌胃,飲用低氘水;潰瘍局部常規(guī)消毒后涂抹PRP,然后用無菌紗布覆蓋。各組灌胃量均為0.01 mL/ (g·d)[12]。每只大鼠均單籠飼養(yǎng),于術(shù)后第1日開始換藥,每日更換墊料1~2次,換藥1次,并祛除創(chuàng)面硬痂。PRP每隔1 d使用1次,PRP及生理鹽水每次每創(chuàng)面使用量均為100 μL。

        1.6 樣本獲取及指標檢測

        分別于潰瘍造模后的第3日、第7日及第14日,每組各隨機選取6只大鼠,測血糖(早晨9時)后麻醉,照相并觀察潰瘍愈合情況。取創(chuàng)面及周圍5 mm內(nèi)組織,將一半肉芽組織進行蘇木精-伊紅染色(H-E染色),觀察組織病理學改變;另一半立即置于液氮中冷卻,隨后-80 ℃保存,用于各組大鼠創(chuàng)面組織MMP-9、TIMP-1蛋白含量檢測。

        1.6.1 潰瘍大鼠創(chuàng)面恢復情況 ①大體觀察:觀察創(chuàng)面的基本情況,拍照后用Image J圖像軟件進行潰瘍面積的測量,以創(chuàng)面愈合率作為評價大鼠潰瘍愈合情況的指標。創(chuàng)面愈合率= (創(chuàng)面初始面積-創(chuàng)面當前面積) /初始面積×100%。②組織病理形態(tài)學觀察:取創(chuàng)面及周圍5 mm內(nèi)組織,進行H-E染色,使用光學顯微鏡觀察創(chuàng)面的組織形態(tài)學變化,主要觀察創(chuàng)面肉芽組織、新生毛細血管、成纖維細胞及膠原等的變化。

        1.6.2 創(chuàng)面組織MMP-9和TIMP-1的檢測 取創(chuàng)面及周圍5 mm內(nèi)組織,采用酶聯(lián)免疫吸附法檢測創(chuàng)面組織MMP-9和TIMP-1的含量。所有指標均按照試劑盒說明進行操作。

        1.7 統(tǒng)計學方法

        采用 SPSS 20. 0 軟件進行統(tǒng)計學分析,定量資料以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用t檢驗。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 大鼠一般情況

        正常對照組大鼠皮毛光亮,精神良好,皮脂豐厚。糖尿病組大鼠在STZ注射后精神狀態(tài)變得稍差,皮毛粗糙、萎黃,且易脫毛,飲水量、飲食量、尿量明顯增加;隨著時間變化,體質(zhì)量較正常對照組明顯減輕,皮脂變薄。

        2.2 正常對照組及糖尿病組大鼠體質(zhì)量及血糖結(jié)果的比較

        在適應性喂養(yǎng)1周后,2組大鼠體質(zhì)量無明顯差異;糖尿病組大鼠經(jīng)高脂高糖飼料喂養(yǎng)4周后,體質(zhì)量增長略比正常對照組大鼠快;正常對照組大鼠在經(jīng)檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液注射7 d后體質(zhì)量稍有增長,而糖尿病組大鼠在經(jīng)STZ注射7 d后體質(zhì)量反而降低(表1)。

        表1 造模前后大鼠體質(zhì)量變化(x—±s,g)Tab 1 Changes in body weight of rats before and after modeling (x—±s, g)

        初始狀態(tài)下,糖尿病組大鼠的隨機血糖與正常對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);糖尿病組大鼠經(jīng)高脂高糖飼料喂養(yǎng)4周后,其血糖較正常對照組稍高,但差異不具有統(tǒng)計學意義(P>0.05)。在STZ/檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液注射7 d后,糖尿病組大鼠血糖較正常對照組明顯增高,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),說明高脂飼料喂養(yǎng)配合STZ誘導的2型糖尿病大鼠模型建立成功(表 2)。

        表2 造模前后大鼠血糖水平變化(x—±s,mmol/L)Tab 2 Changes of blood glucose level in rats before and after modeling (x—±s, mmol/L)

        2.3 各糖尿病組大鼠血糖變化

        A、B、C組在各干預時間點的隨機血糖水平與干預前相比,差異無統(tǒng)計學意義;在D組及E組可觀察到,在低氘水干預后大鼠隨機血糖開始緩慢下降,在干預第14 日后較干預前明顯降低,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(表3)。

        表3 干預后不同時間點各組大鼠隨機血糖變化(x—±s,n=6,mmol/L)Tab 3 Random blood glucose changes in rats of different groups at different time points after intervention (x—±s, n=6, mmol/L)

        2.4 各組大鼠創(chuàng)面恢復情況及組織病理形態(tài)學觀察

        各組大鼠創(chuàng)面均無明顯感染,有不同程度滲出、水腫及少量出血,隨著時間推移各創(chuàng)面均在逐步愈合(圖1)。在干預第3日,H-E染色結(jié)果顯示:A組炎癥細胞浸潤明顯,可見少量新生毛細血管及成纖維細胞;B組可見少量炎癥細胞、成纖維細胞及新生毛細血管;C組可見炎癥細胞浸潤,有少量新生毛細血管及成纖維細胞;D組可見炎癥細胞浸潤,有少量新生毛細血管及成纖維細胞;E組可見炎癥細胞浸潤,伴少量新生毛細血管及成纖維細胞。在干預第7日,H-E染色結(jié)果顯示:A組可見大量新生毛細血管及成纖維細胞,有少量膠原纖維,仍可見較多炎癥細胞;B組可見炎癥細胞浸潤,新生毛細血管較其他組少,有少量成纖維細胞;C組見較多的新生毛細血管及成纖維細胞,有少量膠原纖維;D組可見較多的新生毛細血管及成纖維細胞,有少量膠原纖維;E組可見成纖維細胞及新生毛細血管增多,有少量膠原纖維,炎癥細胞減少。在干預第14日,H-E染色結(jié)果顯示:A組可見大量膠原纖維,少量新生毛細血管、成纖維細胞及炎癥細胞;B組可見膠原纖維,少量成纖維細胞及新生毛細血管;C組可見較多膠原纖維及新生毛細血管,伴少量炎癥細胞浸潤;D組可見較多膠原纖維及新生毛細血管,伴少量炎癥細胞浸潤;E組可見大量膠原纖維及較多的新生小動脈和小靜脈。各糖尿病組創(chuàng)面炎癥反應均較正常對照組慢;E組肉芽成熟效果較其余3個糖尿病組快,在各干預組中效果最佳,新生血管及成纖維細胞出現(xiàn)時間早且數(shù)量多,為創(chuàng)面修復提供了前提條件(圖2)。

        圖1 各組大鼠創(chuàng)面愈合情況的比較Fig 1 Comparison of wound healing in each group of rats

        圖2 各組大鼠創(chuàng)面組織H-E染色(×200)Fig 2 H-E staining of wound tissue in each group of rats (×200)

        2.5 各組大鼠愈合率的比較

        干預第3日:各糖尿病組大鼠創(chuàng)面愈合率均明顯低于正常對照組(A組)(P<0.05);C組、D組及E組創(chuàng)面愈合率均高于B組(P<0.05),但兩兩之間的差異均無統(tǒng)計學意義;各組創(chuàng)面愈合率由高到低依次為A組>E組>C組>D組>B組。干預第7日:A組創(chuàng)面愈合率大于B組、C組及D組(P<0.05);E組愈合率雖低于A組,但2組差異無統(tǒng)計學意義;各組創(chuàng)面愈合率由高到低依次為A組>E組>D組>C組>B組。干預第14日:A組創(chuàng)面愈合率大于B組、C組及D組(P<0.05);E組愈合率雖低于A組,但2組差異無統(tǒng)計學意義;各組創(chuàng)面愈合率由高到低依次為A組>E組>C組>D組>B組(表4)。

        表4 干預后不同時間點各組大鼠創(chuàng)面愈合率的變化(x—±s,n=6,%)Tab 4 Changes of wound healing rate in rats of different groups at different time points after intervention (x—±s, n=6, %)

        2.6 各組大鼠創(chuàng)面組織MMP-9含量的比較

        各糖尿病組大鼠創(chuàng)面組織中MMP-9含量在觀察的各時間點均明顯高于正常對照組(A組)。C組、D組及E組在干預3 d后,MMP-9含量較B組明顯降低(P<0.05);干預3 d后E組MMP-9含量較C組及D組明顯降低,7 d后差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(表5)。

        表5 干預后不同時間點各組大鼠創(chuàng)面組織MMP-9含量的變化(x—±s,n=6,ng/g)Tab 5 Changes of MMP-9 content in wound tissues of rats in different groups at different time points after intervention (x—±s, n=6, ng/g)

        2.7 各組大鼠創(chuàng)面組織TIMP-1含量的比較

        各糖尿病組大鼠創(chuàng)面組織中TIMP-1含量在各時間點均低于正常對照組(A組),而C組、D組及E組干預后TIMP-1含量均較B組升高(均P<0.05)。E組干預3 d后TIMP-1含量升高較C組及D組明顯(P<0.05);在干預14 d后,與A組差異無統(tǒng)計學意義(表6)。

        表6 干預后不同時間點各組大鼠創(chuàng)面組織TIMP-1含量的變化(x—±s,n=6,ng/g)Tab 6 Changes of TIMP-1 content in wound tissue of rats in different groups at different time points after intervention (x—±s, n=6, ng/g)

        3 討論

        皮膚是人體最大的器官之一,主要有3個關(guān)鍵作用:屏障功能、感覺功能、代謝功能。皮膚受損時,會經(jīng)歷傷口愈合的過程。傷口愈合的4個階段是炎癥、血管生成、再上皮化和重塑。由于各種原因,一些傷口修復減慢或中斷,這些傷口被稱為慢性傷口[13]。糖尿病慢性足潰瘍是糖尿病患者較嚴重且常見的并發(fā)癥,是常見的慢性傷口之一,在糖尿病人群中的終身發(fā)病率高達15%[14]。盡管發(fā)病率很高,但目前的治療方案仍然有限。常見的外科治療方法主要是清創(chuàng),隨后換藥、控制感染和血糖水平。盡管采用了各種綜合方法,但患者并發(fā)癥發(fā)生率和截肢率仍然很高[15]。

        2型糖尿病大鼠模型已較成熟。有研究[16-17]表明,STZ對胰島β細胞具有高度選擇性毒性作用,通過自由基損傷胰島β細胞,使其胰島素的合成減少,進而引發(fā)糖尿病。通過高脂高糖喂養(yǎng)1~2個月誘導大鼠胰島素抵抗后,再加小劑量一次性腹腔注射STZ來損傷胰島功能,能引起血糖升高,模擬2型糖尿病發(fā)病的過程。張玉領(lǐng)等[18]發(fā)現(xiàn)高脂高糖喂養(yǎng)4周后,大鼠出現(xiàn)明顯的肥胖及胰島素抵抗,一次性腹腔注射STZ 30 mg/kg,可成功制備2型糖尿病大鼠模型,其成模率高,模型穩(wěn)定,無動物死亡,更適用于2型糖尿病的相關(guān)研究。

        PRP是全血經(jīng)離心后獲得的高濃度血漿,富含多種生長因子,可促進軟組織的修復。研究[4,19-20]表明,PRP治療DFU有較好的療效。本次實驗也發(fā)現(xiàn),經(jīng)PRP干預后的糖尿病大鼠創(chuàng)面愈合率較模型組高。低氘水能夠降低胰島素抵抗性、降低糖尿病患者血糖含量[12,21-22]。Wang等[23]報道,低氘水可促進醌氧化還原酶1(NADPH: quinone oxidoreductase-1,NQO1)的表達,從而抑制MMP-9的表達。本研究也發(fā)現(xiàn),低氘水干預組大鼠隨機血糖在干預14 d后明顯下降,在各個時間點的創(chuàng)面愈合率較糖尿病模型組高;說明低氘水可降低糖尿病大鼠隨機血糖,對糖尿病大鼠潰瘍創(chuàng)面愈合有促進作用。

        研究[24]表明,糖尿病患者足部傷口中,MMPs表達增加,其抑制因子TIMPs表達減少,導致傷口難以愈合。MMPs是一組具有共同生物化學性質(zhì)的可降解細胞外基質(zhì)(extracellular matrix, ECM) 的鋅依賴性肽鏈內(nèi)切酶, 是參與 ECM 降解的主要蛋白酶之一;TIMPs 是 MMPs的特異性抑制因子,能調(diào)節(jié) MMPs的活性。MMP-9是金屬蛋白酶家族中相對分子質(zhì)量最大的酶,可作用較廣泛的底物,包括 Ⅳ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ 型膠原,明膠,纖連蛋白,玻連蛋白及層粘連蛋白等,對這些底物起著降解作用[25]。MMP-9通過分解ECM成分參與傷口的愈合過程。糖尿病患者動脈中高含量的MMP-9能使中性粒細胞和巨噬細胞表達增強,這2種細胞是主要的炎癥反應細胞,因此導致DFU延遲愈合[26]。TIMPs是 MMPs 的內(nèi)源性抑制劑,可抑制MMPs 活性,刺激細胞分裂,結(jié)合ECM,抑制血管形成,誘導細胞凋亡[25]。TIMP-1 對 MMP-9 有直接的抑制作用,是 MMP-9的特異性抑制劑。TIMP-1與活性 MMP-9 形成非共價復合物,通過抑制MMP-9活性來減少ECM的降解。鄭潔等[25]的研究表明,MMP-9與糖尿病潰瘍的愈合密切相關(guān),且MMP-9/TIMP-1有望成為未來DFU治療的新靶點。本實驗研究發(fā)現(xiàn),糖尿病組大鼠創(chuàng)面MMP-9水平高于空白對照組,而經(jīng)PRP、低氘水、PRP聯(lián)合低氘水治療后MMP-9明顯降低,且低氘水聯(lián)合PRP治療組干預14 d后效果最明顯;糖尿病組大鼠創(chuàng)面TIMP-1水平低于空白對照組,而經(jīng)PRP、低氘水、PRP聯(lián)合低氘水治療后TIMP-1明顯升高,且低氘水聯(lián)合PRP治療組干預14 d后效果最明顯。

        綜上所述,低氘水聯(lián)合PRP對大鼠糖尿病潰瘍創(chuàng)面愈合有顯著的促進作用,其可能與調(diào)控MMPs的表達有關(guān),即通過提高潰瘍創(chuàng)面TIMP-1表達,從而抑制MMP-9的表達,減少ECM的降解。

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