陳祺, 顏帥帥, 許強(qiáng)華,2,3,4*
(1.上海海洋大學(xué)海洋科學(xué)學(xué)院, 上海 201306; 2.上海海洋大學(xué)大洋漁業(yè)資源可持續(xù)開(kāi)發(fā)省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 上海 201306; 3.國(guó)家遠(yuǎn)洋漁業(yè)工程技術(shù)研究中心, 上海 201306;4.遠(yuǎn)洋漁業(yè)協(xié)同創(chuàng)新中心,上海 201306)
MicroRNAs廣泛存在于各種動(dòng)植物基因組中,其長(zhǎng)度約為21~23 nt,在物種進(jìn)化過(guò)程中保持高度同源性和保守性,并且在物種中具有嚴(yán)格的表達(dá)特異性和時(shí)序性。到目前為止,已有數(shù)以千計(jì)的microRNAs在果蠅、線蟲(chóng)、小鼠和人等多個(gè)物種中被發(fā)現(xiàn)[1]。研究顯示,microRNAs是一類重要的非編碼RNA, 不僅能在轉(zhuǎn)錄后mRNA水平上起調(diào)控作用,也能在轉(zhuǎn)錄水平介導(dǎo)很多關(guān)鍵的生理進(jìn)程和病理過(guò)程,包括細(xì)胞增殖、細(xì)胞命運(yùn)決定、細(xì)胞分化、細(xì)胞代謝、細(xì)胞凋亡等[2]。microRNAs在血管發(fā)育中也起重要作用,主要通過(guò)調(diào)控其靶基因來(lái)調(diào)控血液血管系統(tǒng)中的血管平滑肌細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞,從而抑制血管發(fā)育或使血管增生。
血管是生物體生存密不可分的一個(gè)器官,研究生物體血管發(fā)育能更進(jìn)一步了解血管,并且能為治療血管的相關(guān)疾病提供一定基礎(chǔ)。雖然目前有眾多與血管發(fā)育相關(guān)的microRNAs被報(bào)道,但是仍有許多與血管發(fā)育相關(guān)的microRNAs未被發(fā)現(xiàn)。獨(dú)角雪冰魚(yú)(Chionodracohamatus) 是生活在南極深海零度以下水域的底棲性魚(yú)類,其血液中不含血紅蛋白和功能性血紅細(xì)胞。與含血紅蛋白的南極魚(yú)相比,獨(dú)角雪冰魚(yú)的心臟明顯增大,血管明顯變粗[3]。本課題組前期將獨(dú)角雪冰魚(yú)與相同生境下其他近緣南極魚(yú)血管中microRNAs的表達(dá)進(jìn)行對(duì)比,發(fā)現(xiàn)包括miR-204在內(nèi)的多個(gè)microRNAs的表達(dá)存在顯著差異,推測(cè)miR-204可能參與了南極獨(dú)角雪冰魚(yú)的血管發(fā)育調(diào)控。
目前關(guān)于miR-204調(diào)控血管發(fā)育的研究較多,Jakob等[4]研究發(fā)現(xiàn),miR-204可以通過(guò)調(diào)控促血管生成素-1(angiopoienin-1)來(lái)調(diào)控小鼠角膜新生血管的發(fā)育。Cui 等[5]研究發(fā)現(xiàn),miR-204-3p調(diào)控纖維連接蛋白1(fibronectin 1,F(xiàn)N1)抑制miR-204表達(dá),從而阻塞FN1的附著能力,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖。在鈣化性主動(dòng)脈瓣的疾病研究中,沉默表達(dá)?;撬嵘险{(diào)基因1(taurine upregulated gene 1,TUG1)會(huì)增加miR-204-5p的表達(dá)進(jìn)而調(diào)控runt-related transcription factor 2(Runx2)的表達(dá)從而促進(jìn)成骨分化[6]。而在A549細(xì)胞中轉(zhuǎn)染miR-204 mimics,會(huì)使血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子和血小板生長(zhǎng)因子表達(dá)降低[7]。不僅如此,在胃癌研究中,miR-204能調(diào)控JAK2-STAT3信號(hào)通路從而降低血管生成[8]。這些研究大多數(shù)都在細(xì)胞中進(jìn)行,未能從機(jī)體層面進(jìn)行研究。本研究擬在魚(yú)體上探究miR-204在血管發(fā)育初期對(duì)血管生成的作用,進(jìn)一步探究miR-204對(duì)血管生成的調(diào)控機(jī)制。
本研究利用模式生物斑馬魚(yú)(Barchydaniorerio),通過(guò)注射miR-204 antagomir抑制miR-204的表達(dá),觀察斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育情況,并對(duì)miR-204的靶向基因進(jìn)行預(yù)測(cè)及驗(yàn)證,探究miR-204在血管發(fā)育中的功能及調(diào)控機(jī)制,為后續(xù)揭示南極獨(dú)角雪冰魚(yú)血管補(bǔ)償性增生機(jī)制提供一定的基礎(chǔ),有助于探索脊椎動(dòng)物血管發(fā)育的作用機(jī)制,以期未來(lái)能應(yīng)用于與血管相關(guān)的疾病治療。
野生型斑馬魚(yú)(AB型)以及轉(zhuǎn)基因斑馬魚(yú)(kdrl: EGFP)在斑馬魚(yú)飼養(yǎng)實(shí)驗(yàn)室(上海海生生物實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司)的封閉超濾超凈化水系統(tǒng)中飼養(yǎng),循環(huán)水維持在28 ℃,光周期14 h/10 h(光照/黑暗)。
293細(xì)胞是轉(zhuǎn)染腺病毒的人腎上皮細(xì)胞系,293T細(xì)胞則是由SV40大型T抗原轉(zhuǎn)染293細(xì)胞后得到。293T細(xì)胞容易轉(zhuǎn)染,且傳代速度快。采用含谷氨酰胺的 DMEM 高糖培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),配以10%的胎牛血清以及1%的雙抗充分混合,培養(yǎng)條件為 37 ℃、5% CO2。當(dāng)細(xì)胞達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期時(shí),可進(jìn)行下一步試驗(yàn)。
主要儀器包括:電子天平(BSA-223S,賽多利斯科學(xué)儀器有限公司)、體式顯微鏡(SMZ445,尼康儀器有限公司)、離心機(jī)(Centrifuge 5424R,Eppendorf)、磁力攪拌器(90-18,上海梅穎儀器儀表制造有限公司)、超純水凈化系統(tǒng)(P2PA7491,Millipore)、恒溫混勻儀(Eppendorf)、恒溫培養(yǎng)箱(DNP-9082,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司)、電泳凝膠成像系統(tǒng)(Alpha Innotech)、PCR儀(S1000,BIO-RAD)。
主要試劑包括:miR-204 antagomir、NC(上海吉瑪基因);T4連接酶、PVDF膜、顯影液(Thermo Fisher);GFP、Actin(GenTex);PMD18-T載體(Takara);內(nèi)切酶(NEB);感受態(tài)細(xì)胞(天根生化科技有限公司);質(zhì)粒提取試劑盒、膠回收試劑盒(Omega);胎牛血清(Gibico);DMEM高糖培養(yǎng)基(Hyclone);轉(zhuǎn)染試劑(QIAGEN);蛋白胨、酵母粉、甲醇、氯化鈉、甘氨酸、Tris、脫脂奶粉、氨芐抗生素、卡那抗生素、20XPBS、蛋白marker、SDS、質(zhì)粒小提試劑盒(上海生工生物工程股份有限公司)。
1.3.1目的序列設(shè)計(jì) 通過(guò)比對(duì)斑馬魚(yú)、羅非魚(yú)、人、小鼠的基因組發(fā)現(xiàn),miR-204的種子序列高度保守(表1)。運(yùn)用TargetScan(http://www.targetscan.org/)、miRBase(http://www.mirdb.org/)、starBase(http://www.starbasemn.org/)網(wǎng)站預(yù)測(cè)miR-204潛在靶基因,挑選與血管發(fā)生相關(guān)的5個(gè)候選基因,分別為sprouty-related EVH1 domain containing1 (spred1)、transforming growth factor beta1a (tgfβ1a)、vascular cell adhesion molecule 1b (vcam1b)、NADPH oxidase 4(nox4)、tribbles pseudokinase 3 (trib3) 。從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)分別獲得上述5個(gè)候選基因的3′UTR序列,根據(jù)所獲得的3′UTR 序列與miR204的結(jié)合位點(diǎn), 由 Primer 5.0 軟件設(shè)計(jì)得到特異性引物序列,同時(shí)選取適合的酶切位點(diǎn)(表2)。分別構(gòu)建5個(gè)候選基因的pmir-GLO-3′UTR質(zhì)粒,運(yùn)用雙熒光素報(bào)告酶基因檢測(cè)后選定trib3(CU571319.15)作為最終研究基因。
表1 miR-204在物種間的保守性Table 1 Conservation of miR-204 among species
表2 引物序列與限制性內(nèi)切酶Table 2 Primer sequence and restriction enzyme
1.3.2質(zhì)粒構(gòu)建 引物合成后,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳后進(jìn)行割膠回收。取4 μL膠回收產(chǎn)物,加入5 μL Solution以及1 μL T載體16 ℃連接4 h,隨后進(jìn)行轉(zhuǎn)化。轉(zhuǎn)化后,挑取單克隆,37 ℃搖床進(jìn)行培養(yǎng),用通用引物進(jìn)行PCR后進(jìn)行測(cè)序。結(jié)果用 Vector NTI 7.0 軟件進(jìn)行序列比對(duì),測(cè)序正確的單克隆用 50 mL 離心管進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),隨后進(jìn)行質(zhì)粒抽提。提取后的質(zhì)粒用限制性內(nèi)切酶SacⅠ、SalⅠ(pmirGLO-TRIB3-3′UTR質(zhì)粒)以及NotⅠ、MfeⅠ(Tol2-TRIB3-3′UTR質(zhì)粒)進(jìn)行酶切反應(yīng)。酶切產(chǎn)物 進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳后割膠回收,分別與已進(jìn)行酶切后的pmirGLO和Tol2質(zhì)粒在 16 ℃過(guò)夜連接。轉(zhuǎn)化后,挑取單克隆,37 ℃搖床培養(yǎng),用表2所述引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增后進(jìn)行測(cè)序。用 Vector NTI 軟件對(duì)測(cè)序序列進(jìn)行比對(duì)。測(cè)序正確的單克隆用 50 mL 離心管進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),用質(zhì)粒提取試劑盒進(jìn)行質(zhì)粒中提,得到最終質(zhì)粒。
將性成熟的斑馬魚(yú)于前一夜進(jìn)行交配,取其產(chǎn)的受精卵,使用顯微注射技術(shù)將1 nL 的miR-204 antagomir(50 μmol·L-1)和NC(50 μmol·L-1)(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司),注射到轉(zhuǎn)基因斑馬魚(yú)(kdrl:EGFP)一細(xì)胞期的受精卵內(nèi),每組分別各注射100枚受精卵。以未注射的斑馬魚(yú)受精卵(CK)為對(duì)照,置于28 ℃環(huán)境下培養(yǎng)5 d后進(jìn)行拍照觀察斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育情況。
接種293T細(xì)胞于24孔板中,每孔加入配制好的完全培養(yǎng)基500 μL 以及50 μL 處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的293T細(xì)胞,置于37 ℃培養(yǎng)箱中過(guò)夜培養(yǎng)。待293T細(xì)胞密度約為80%時(shí),取400 ng pmirGLO-TRIB3-3′UTR質(zhì)粒+ miR-204mimics (處理組,T)、400 ng pmirGLO-TRIB3質(zhì)粒+ NC(陰性對(duì)照組,NC)、400 ng pmirGLO-TRIB3-3′UTR質(zhì)粒 (空白對(duì)照組,CK)加入無(wú)血清的基本培養(yǎng)基中進(jìn)行共轉(zhuǎn)染,短暫旋渦混勻,立即加入 1.5 μL 轉(zhuǎn)染試劑。室溫放置 15 min 后逐滴加至細(xì)胞中。轉(zhuǎn)染6 h后吸出無(wú)血清的基本培養(yǎng)基,每孔加入500 μL 新鮮完全培養(yǎng)基。培養(yǎng)26 h后收集細(xì)胞。
雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)一般用來(lái)做miRNA靶標(biāo)鑒定。采用 Dual-Luciferase?報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒(Promega, USA)檢測(cè)熒光素酶活性,并計(jì)算螢火蟲(chóng)熒光素酶與海腎熒光素酶活性的比值(Firefly Luc/Renilla Luc)。
將性成熟的斑馬魚(yú)于前一夜進(jìn)行交配,取其產(chǎn)的受精卵,使用顯微注射技術(shù)將1 nL 的miR-204(50 μmol·L-1) 和NC(50 μmol·L-1)分別與100 ng 的Tol2-TRIB3-3′UTR共注射到一細(xì)胞期的斑馬魚(yú)受精卵內(nèi),空質(zhì)粒(CK)單獨(dú)注射至受精卵中,每組分別各注射50顆受精卵。24 h后在熒光顯微鏡進(jìn)行拍照觀察GFP熒光強(qiáng)度變化。并收集受精卵,用于熒光蛋白表達(dá)的檢測(cè)。
將收集的斑馬魚(yú)受精卵,用磷酸鹽緩沖溶液(PBS)洗滌3次,然后用RIPA緩沖液(Beyotime,中國(guó))和蛋白酶抑制劑PMSF(Sigma-Aldrich,St. Louis,MO,USA)在冰上裂解30 min,提取GFP蛋白質(zhì)。使用8%SDS-聚丙烯酰胺凝膠從每個(gè)樣品中分離相同量(100 μg)的蛋白質(zhì),并轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜(Millipore,Billerica,NY,USA)上。用含5%脫脂牛奶的1%PBST溶液封閉后,將膜在室溫下與抗-GFP(1∶2 000,GT859; GeneTex)一抗孵育1 h,用1×PBST洗滌3次,每次5 min,并在室溫下與二抗(1∶2 000)一起溫育1 h。使用BioRad Western印跡系統(tǒng)(Hercules,CA,USA)使蛋白質(zhì)條帶可視化。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)利用Microsoft Excel 2010進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,使用GraphPad Prism 7.0進(jìn)行繪圖。
在轉(zhuǎn)基因斑馬魚(yú)(kdrl:EGFP)中注射miR-204 antagomir(T)及陰性對(duì)照(NC)后,用熒光顯微鏡觀察斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育情況,結(jié)果(圖1)發(fā)現(xiàn),與NC、CK的受精卵相比,注射miR-204的斑馬魚(yú)軀干部毛細(xì)血管增多,節(jié)間血管增多。結(jié)果表明,抑制miR-204使斑馬魚(yú)胚胎毛細(xì)血管增加,miR-204可能參與斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育的調(diào)控。
注:白色箭頭指毛細(xì)血管增生。Note: The white arrows indicate capillary proliferation.圖1 不同處理的斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育情況Fig.1 Vascular development of zebrafish embryos in different treatments
共轉(zhuǎn)染miR-204和trib3至293T細(xì)胞后,檢測(cè)熒光蟲(chóng)熒光素酶活性以及海腎熒光酶活性,隨后計(jì)算螢火蟲(chóng)熒光素酶與海腎熒光素酶活性的比值結(jié)果(圖2)發(fā)現(xiàn),處理T與NC和CK相比,其相對(duì)酶活均極顯著下降,表明注射miR-204后斑馬魚(yú)的TRIB3活性降低,即miR-204對(duì)trib3有抑制作用。
注: **表示處理間在P<0.01水平差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。Note: **indicate extremely significant difference between treatments at P<0.01 level.圖2 不同處理方式的雙熒光素酶活比值Fig.2 Activity ratio of double luciferase under different treatments
為進(jìn)一步探究miR-204對(duì)trib3的抑制作用,構(gòu)建了tol2-EGFP-TRIB3質(zhì)粒,并與50 μmol·L-1miR-204(T)、50 μmol·L-1NC(NC)共同注射至野生型斑馬魚(yú)一細(xì)胞期受精卵中,空質(zhì)粒(CK)單獨(dú)注射至受精卵中。24 h后的GFP熒光強(qiáng)度結(jié)果(圖3A)顯示,miR-204與tol2-EGFP-trib3質(zhì)粒共同注射的GFP熒光強(qiáng)度顯著低于陰性對(duì)照和空白對(duì)照組。GFP蛋白的Western blot分析(圖3B)表明,miR-204與tol2-EGFP-trib3質(zhì)粒共同注射后的GFP蛋白表達(dá)量顯著低于空白對(duì)照和陰性對(duì)照組,進(jìn)一步表明miR-204能夠下調(diào)TRIB3的表達(dá)。而trib3參與小鼠大動(dòng)脈斑塊數(shù)量和面積調(diào)節(jié)[12],以及與大鼠血管纖維化有關(guān)聯(lián)[13]。由此推測(cè)miR-204可能通過(guò)調(diào)控trib3進(jìn)而調(diào)控斑馬魚(yú)胚胎血管的發(fā)育。
斑馬魚(yú)作為模式生物,因其飼養(yǎng)容易、性成熟期短、卵易于觀察等原因,在眾多研究領(lǐng)域中得以普遍應(yīng)用;將斑馬魚(yú)作為研究模型尤其廣泛應(yīng)用于魚(yú)類的遺傳發(fā)育研究中[8]。本研究將miR-204 antagomir注射至斑馬魚(yú)胚胎一細(xì)胞期,觀察斑馬魚(yú)胚胎血管變化,發(fā)現(xiàn)注射miR-204后斑馬魚(yú)胚胎軀干部毛細(xì)血管增生。針對(duì)miR-204進(jìn)行了潛在靶基因預(yù)測(cè)后,選定trib3為miR-204潛在靶基因。
A:GFP蛋白熒光強(qiáng)度;B:GFP重組蛋白表達(dá)印跡。A: Fluorescence intensity of GFP protein; B: Western blot of GFP recombinant protein.圖3 不同處理的斑馬魚(yú)胚胎GFP熒光蛋白表達(dá)檢測(cè)Fig.3 GFP fluorescence protein expression in zebrafish embryos under different treatments
TRIB3最初被認(rèn)為是抑制果蠅胚胎和生殖細(xì)胞有絲分裂的假激酶[9]。根據(jù)報(bào)道,細(xì)胞在缺氧的脅迫條件下,會(huì)誘導(dǎo)TRIB3的表達(dá)[10]。在小鼠中,敲降TRIB3會(huì)使血糖和肝糖明顯降低[11]。在小鼠中,沉默表達(dá)TRIB3會(huì)使大動(dòng)脈斑塊數(shù)量和面積減少[12]。在糖尿病大鼠模型中,其中有血管纖維化的大鼠TRIB3表達(dá)量增高,被認(rèn)為T(mén)RIB3與糖尿病血管纖維化有關(guān)聯(lián)[13]。TRIB3基因還被證明與胰島素抗性[14]和頸動(dòng)脈粥樣硬化[15]有關(guān)。本研究將miR-204與pmir-trib3-3′UTR質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染至293T細(xì)胞,并將miR-204與trib3的質(zhì)粒共注射至斑馬魚(yú)一細(xì)胞期中,結(jié)果都顯示miR-204對(duì)trib3有顯著抑制作用。因此推測(cè),miR-204通過(guò)抑制trib3的表達(dá)從而調(diào)控斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育。本研究篩選出miR-204的靶基因?yàn)閠rib3,并進(jìn)行了驗(yàn)證,為闡明miR-204在斑馬魚(yú)胚胎血管發(fā)育中的調(diào)控機(jī)制提供參考依據(jù)。