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        CXCL12-CXCR4軸促進膠質(zhì)母細胞瘤前神經(jīng)-間質(zhì)轉(zhuǎn)化

        2020-03-02 08:48:52許學(xué)文宋廉楊曉曉石卉龔愛華王鳴張禮榮
        關(guān)鍵詞:實驗

        許學(xué)文,宋廉,楊曉曉,石卉,龔愛華,王鳴,張禮榮

        (1.江蘇大學(xué)附屬醫(yī)院影像科,江蘇 鎮(zhèn)江 212001;2.江蘇大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013)

        膠質(zhì)母細胞瘤(glioblastoma, GBM)是成人最常見的原發(fā)性腦腫瘤,中位生存期為12~15個月,5年生存期低于5%[1]。盡管GBM的放療、化療及其他輔助治療對改善患者的生存期具有一定的效果,但其復(fù)發(fā)率仍然較高[2]。當(dāng)前基于基因表達圖譜將GBM分為4個亞型:前神經(jīng)型(33%)、神經(jīng)型(12%)、經(jīng)典型(20%)及間質(zhì)型(32%)[3];其中間質(zhì)型具有惡性程度高、預(yù)后差的特點,且前神經(jīng)型具有間質(zhì)型轉(zhuǎn)化的特征,即前神經(jīng)型-間質(zhì)型轉(zhuǎn)化(proneural-mesenchymal transition, PMT)[4],然而其確切的分子機制仍不是十分清楚。

        趨化因子及其受體在膠質(zhì)瘤發(fā)生、發(fā)展中的機制已成為目前研究的熱點[5]。CXC趨化因子受體4(CXC chemokine receptor 4,CXCR4)屬于趨化因子受體CXCR亞家族,CXC趨化因子配體-12(CXC chemokine ligand 12,CXCL12)是其唯一配體,CXCL12-CXCR4軸在促進干細胞歸巢、誘導(dǎo)血管生成及腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移等方面具有重要的作用[6]。但是,CXCL12-CXCR4軸在膠質(zhì)瘤中的作用尚不完全清楚,本研究擬探討CXCL12-CXCR4軸在膠質(zhì)母細胞瘤PMT中的作用。

        1 材料與方法

        1.1 主要材料

        人膠質(zhì)瘤LN428,U87MG細胞株(中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院);CXCL12(美國Genscript公司);普樂沙福(美國 MedChem Express公司);高糖DMEM、PBS(美國Hyclone公司);澳洲胎牛血清(美國Gibco公司);兔單克隆抗體N-鈣黏蛋白、E-鈣黏蛋白、幾丁質(zhì)酶-3樣蛋白-1(chtinase-3-like-1 protein,CHI3L1/YKL-40)、波形蛋白、β-微管蛋白(美國Cell Signaling Technology公司);鼠單克隆抗體少突膠質(zhì)細胞轉(zhuǎn)錄因子2(oligodendrocyte lineage transcription factor 2,OLIG2),羊抗兔二抗,羊抗鼠二抗(美國Santa Cruz公司);基質(zhì)膠、Transwell小室(美國Corning Incorporated公司);ECL發(fā)光液(美國Millipore公司);牛血清白蛋白(德國 BioFroxx公司);CCK8試劑盒(日本Dojindo公司)。

        1.2 細胞培養(yǎng)

        人膠質(zhì)瘤LN428、U87MG細胞株均培養(yǎng)于含10%胎牛血清的高糖DMEM,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,細胞生長至80%~90%融合時用0.25%胰蛋白酶消化傳代。

        1.3 免疫印跡實驗檢測細胞前神經(jīng)型和間質(zhì)型相關(guān)蛋白

        1.3.1 選擇CXCL12在細胞中最佳作用濃度 取對數(shù)生長期細胞,0.25%胰蛋白酶消化重懸,接種入6孔板,每孔培養(yǎng)基補足至2 mL,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中觀察;次日細胞貼壁后,觀察細胞狀態(tài)良好,細胞接種密度為60%~70%;將細胞分為CXCL12不同濃度(0、20、40、60、80、100 ng/mL)處理組,共培養(yǎng)48 h后收集各組細胞;預(yù)冷PBS清洗,立即加入蛋白裂解液提取總蛋白,100℃煮沸10 min;4 ℃行12 000×g離心10 min,上清液即為蛋白樣品。以每個泳道20 μg蛋白樣品上樣,行10%變性SDS-PAGE;將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜;5%牛血清白蛋白室溫封閉30 min;加入一抗4℃搖床孵育過夜,TBST洗膜3次,每次5 min;加入二抗室溫搖床孵育1 h;TBST洗膜3次,每次5 min;ECL 發(fā)光試劑顯影,在凝膠成像系統(tǒng)上曝光并使用Image J軟件對蛋白條帶進行定量分析,與內(nèi)參β-微管蛋白比較。一抗N-鈣黏蛋白、E-鈣黏蛋白、波形蛋白、YKL-40、β-微管蛋白稀釋比均為1 ∶1 000、一抗OLIG2的稀釋比為1 ∶500;二抗稀釋比均為1 ∶10 000。每組實驗獨立重復(fù)3次。根據(jù)蛋白表達量選擇CXCL12最佳作用濃度。

        1.3.2 檢測普樂沙福對細胞前神經(jīng)型和間質(zhì)型相關(guān)蛋白的影響 將細胞分為對照組,CXCL12組,普樂沙福組,CXCL12+普樂沙福組,分別予以PBS,80 ng/mL CXCL12,20 μmol/L普樂沙福,80 ng/mL CXCL12+20 μmol/L普樂沙福處理。采用免疫印跡法檢測相關(guān)蛋白的表達。具體實驗操作方法同“1.3.1”。每組實驗獨立重復(fù)3次。

        1.4 Transwell實驗檢測細胞遷移和侵襲能力

        取對數(shù)生長期細胞,0.25%胰蛋白酶消化重懸,接種入6孔板,每孔培養(yǎng)基補足至2 mL,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);次日細胞貼壁后,觀察細胞狀態(tài)良好,細胞接種密度為60%~70%。將細胞分為對照組,CXCL12組,CXCL12+普樂沙福組,分別予以PBS, 80 ng/mL CXCL12,80 ng/mL CXCL12+20 μmol/L普樂沙福處理。共培養(yǎng)48 h后收集各組細胞。在侵襲實驗前,小室上層鋪100 μL 1 ∶20稀釋的基質(zhì)膠,置于細胞培養(yǎng)箱,待膠凝固后備用。遷移實驗無須鋪膠。將3×104個膠質(zhì)瘤細胞用100 μL無血清高糖DMEM重懸置于小室上層,小室下層加入500 μL含10%胎牛血清的高糖DMEM。將小室置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14 h;4%低聚甲醛固定30 min;用棉簽輕輕拭去小室內(nèi)面細胞;用0.1%結(jié)晶紫染色液浸染30 min,風(fēng)干后置于顯微鏡下觀察并拍照;運用Image J軟件計算穿膜細胞數(shù)。每組實驗獨立重復(fù)3次。

        1.5 CCK8法檢測細胞增殖率

        制得單細胞懸液,以1 000個/孔密度接種于96孔板;次日細胞貼壁后,實驗分組同“1.4”,同時設(shè)空白組(只含DMEM)進行校正,每組設(shè)3個復(fù)孔。按說明書要求,每天加入10 μL CCK8試劑,放置培養(yǎng)箱中孵育2 h,用酶標儀測定450 nm處的光密度值。以培養(yǎng)時間為橫軸,相對增殖率為縱軸,繪制細胞生長曲線。每組實驗獨立重復(fù)3次。

        1.6 克隆形成實驗檢測細胞克隆形成能力

        取對數(shù)生長期細胞,制備單細胞懸浮液,并以1 000個/孔密度接種于6孔板,每孔加入2 mL培養(yǎng)基,待細胞貼壁后,實驗分組同“1.4”。每隔3至4天半換液1次,靜置培養(yǎng)2~3周;當(dāng)出現(xiàn)肉眼可見克隆時,終止培養(yǎng);4%低聚甲醛固定30 min;0.1%結(jié)晶紫染色30 min;拍照并計算克隆數(shù)。每組實驗獨立重復(fù)3次。

        1.7 生物信息學(xué)分析

        通過Cancer Brower下載TCGA中膠質(zhì)瘤患者的mRNA表達及臨床相關(guān)數(shù)據(jù),分析CXCR4 mRNA在健康者與患者以及在GBM患者不同亞型中的表達水平,進一步分析CXCR4 mRNA與CXCL12、N-鈣黏蛋白、E-鈣黏蛋白、波形蛋白、YKL-40、OLIG2 mRNA的相關(guān)性。以平均值為界,將高于和低于平均值分別定義為高表達組和低表達組。

        1.8 統(tǒng)計學(xué)分析

        2 結(jié)果

        2.1 CXCR4在膠質(zhì)瘤中的表達及病理分析

        TCGA-GBM(AffyU133a)數(shù)據(jù)庫樣本共539例,其中健康者腦組織樣本10例,腦膠質(zhì)瘤組織樣本529例(前神經(jīng)型139例,間質(zhì)型158例,經(jīng)典型145例,神經(jīng)型87例)。與健康者腦組織相比,腦膠質(zhì)瘤組織中CXCR4 mRNA表達水平顯著增高(t=7.346,P<0.01);CXCR4高表達組(n=262)膠質(zhì)瘤患者總體生存率明顯低于低表達組(n=262,χ2=5.056,P<0.05);CXCR4 mRNA在前神經(jīng)型中表達明顯低于間質(zhì)型(t=10.53,P<0.01)?;虮磉_熱圖分析表明,CXCR4 mRNA與CXCL12、N-鈣黏蛋白、波形蛋白、YKL-40 mRNA成正相關(guān),與E-鈣黏蛋白、OLIG2 mRNA成負相關(guān)。見圖1。

        2.2 選擇CXCL12在膠質(zhì)瘤細胞中最佳作用濃度

        免疫印跡實驗結(jié)果顯示,不同濃度CXCL12(0、20、40、60、80、100 ng/mL)預(yù)處理后,與0 ng/mL相比,80 ng/mL CXCL12處理后細胞內(nèi)OLIG2(LN428:t=14.62,U87MG:t=8.46,P均<0.05)、E-鈣黏蛋白(LN428:t=18.03,U87MG:t=6.27,P均<0.05)的表達顯著降低,YKL-40(LN428:t=11.02,U87MG:t=11.57,P均<0.01)、N-鈣黏蛋白(LN428:t=5.83,U87MG:t=12.79,P均<0.05)、波形蛋白(LN428:t=5.30,U87MG:t=10.58,P均<0.05)的表達顯著增高。綜合考慮,選擇80 ng/mL CXCL12作為最佳實驗濃度進行后續(xù)實驗。見圖2。

        圖1 TCGA膠質(zhì)瘤(AffyU133a)數(shù)據(jù)庫分析CXCR4 mRNA在膠質(zhì)瘤中的表達

        a:P<0.05,b:P<0.01,與對照組比較

        2.3 CXCL12-CXCR4軸促進膠質(zhì)瘤細胞PMT

        免疫印跡實驗結(jié)果顯示,膠質(zhì)瘤細胞經(jīng)80 ng/mL CXCL12處理后,OLIG2蛋白表達水平較對照組顯著降低(LN428:t=5.66,U87MG:t=12.53,P均<0.05),YKL-40蛋白表達水平較對照組顯著上升(LN428:t=8.66,U87MG:t=15.30,P均<0.01);而經(jīng)20 μmol/L普樂沙福和80 ng/mL CXCL12+20 μmol/L普樂沙福分別處理后,與CXCL12組對比,OLIG2蛋白表達水平顯著升高(LN428:t=13.98,9.82,U87MG:t=16.42,10.73,P均<0.01),YKL-40蛋白表達水平顯著降低(LN428:t=22.52,24.45,U87MG:t=16.38,18.40,P均<0.01)。見圖3。

        2.4 CXCL12-CXCR4軸促進膠質(zhì)瘤細胞侵襲和遷移

        Transwell結(jié)果顯示,80 ng/mL CXCL12預(yù)處理48 h后,膠質(zhì)瘤細胞遷移(LN428:t=11.46,U87MG:t=16.52,P均<0.01)和侵襲(LN428:t=6.03,U87MG:t=10.05,P均<0.01)數(shù)量顯著多于對照組;給予普樂沙福處理后,與單純 CXCL12組比較,細胞遷移(LN428:t=9.22,U87MG:t=11.42,P均<0.01)和侵襲(LN428:t=5.37,U87MG:t=8.53,P均<0.01)數(shù)量則顯著降低。見圖4。

        a:P<0.05,b:P<0.01

        a:P<0.01

        2.5 CXCL12-CXCR4軸促進膠質(zhì)瘤細胞增殖

        克隆形成實驗顯示,與對照組相比,膠質(zhì)瘤LN428細胞CXCL12組形成的克隆數(shù)顯著增多(t=28.46,P<0.01),加入普樂沙福后,細胞克隆數(shù)顯著減少(t=35.10,P<0.01)。由于膠質(zhì)瘤U87MG細胞株彌漫性生長方式導(dǎo)致細胞的克隆不明顯,與對照組相比,CXCL12組細胞克隆數(shù)顯著增多(t=10.50,P<0.01),加普樂沙福后,細胞克隆數(shù)顯著降低(t=16.50,P<0.01)。此外,CCK8實驗結(jié)果顯示,與對照組相比,膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞CXCL12組細胞增殖率顯著增高(LN428:t=8.28,U87MG:t=3.98,P均<0.01),加入普樂沙福后,細胞增殖率顯著降低(LN428:t=8.252,U87MG:t=9.60,P均<0.01)。見圖5。

        a:P<0.05,b:P<0.01,與對照組比較;c:P<0.05,與CXCL12+普樂沙福組比較

        3 討論

        膠質(zhì)瘤腫瘤細胞前神經(jīng)型和間質(zhì)型可以互相轉(zhuǎn)換,并受周圍微環(huán)境的精確調(diào)控[7]。CXCR4是一種高度保守的7次跨膜G蛋白偶聯(lián)受體,首次在外周血白細胞中發(fā)現(xiàn),在多種細胞類型中呈高表達,包括淋巴細胞、造血干細胞、基質(zhì)成纖維細胞和癌細胞[8]。本研究結(jié)果顯示,與健康者相比,膠質(zhì)瘤患者CXCR4 mRNA表達增高,且與患者生存率呈負相關(guān);基因表達熱圖結(jié)果顯示,CXCR4 mRNA和CXCL12 mRNA與間質(zhì)型指標YKL-40、N-鈣黏蛋白、波形蛋白mRNA呈正相關(guān),與前神經(jīng)型指標OLIG2、E-鈣黏蛋白mRNA呈負相關(guān)。由此表明,CXCL12-CXCR4軸可能與腫瘤惡性生物學(xué)行為有關(guān)。但是,CXCL12-CXCR4軸是否參與膠質(zhì)瘤其他生物學(xué)行為,如PMT、增殖、轉(zhuǎn)移等,還需進一步研究。

        研究發(fā)現(xiàn),PMT是膠質(zhì)母細胞瘤局部浸潤和轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵因素[9];另有研究表明,膠質(zhì)瘤細胞從前神經(jīng)型向間質(zhì)型的轉(zhuǎn)化過程中,YKL-40的升高和OLIG2的降低代表細胞向間質(zhì)型轉(zhuǎn)化[10]。本研究結(jié)果顯示,在膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞中加入外源性CXCL12后,YKL-40蛋白表達顯著升高,OLIG2蛋白顯著降低,且細胞的侵襲、遷移能力顯著增高。由此表明,CXCL12-CXCR4軸可以促進膠質(zhì)瘤細胞PMT,從而增強膠質(zhì)瘤局部浸潤和遠處轉(zhuǎn)移。在抑制CXCL12-CXCR4信號傳導(dǎo)的藥物中,選擇性CXCR4拮抗劑普樂沙福是研究最多、臨床應(yīng)用最廣的化合物[11]。本研究結(jié)果顯示,予以普樂沙福處理后,膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞的間質(zhì)型相關(guān)指標YKL-40蛋白表達顯著降低,前神經(jīng)型相關(guān)指標OLIG2蛋白表達顯著升高,且細胞的遷移和侵襲能力顯著受到抑制。由此表明,普樂沙??梢宰钄郈XCL12-CXCR4軸,從而抑制膠質(zhì)瘤細胞PMT。

        研究表明,腫瘤細胞具有無限增殖的能力,最終導(dǎo)致惡性腫瘤形成[12]。為了進一步驗證CXCL12-CXCR4軸與膠質(zhì)瘤的惡性生物學(xué)行為相關(guān),本實驗進行了克隆形成實驗和CCK8法檢測膠質(zhì)瘤細胞的增殖能力。結(jié)果顯示,予以膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞外源性CXCL12處理,細胞的克隆形成能力和相對增殖率顯著增高;普樂沙福處理后,膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞的克隆形成能力和相對增殖率顯著降低。由此表明,CXCL12-CXCR4軸可以提高膠質(zhì)瘤細胞的增殖能力,阻斷CXCL12-CXCR4軸可以降低膠質(zhì)瘤細胞的增殖能力。

        此外,有研究發(fā)現(xiàn),CXCL12依賴性刺激腫瘤細胞上的CXCR4,從而激活包括PI3K/AKT/mTOR在內(nèi)的關(guān)鍵下游通路,參與腫瘤的生存、增殖、轉(zhuǎn)移等過程[13];另有研究表明,在膠質(zhì)瘤中PI3K/AKT/mTOR信號通路異常活化,抑制通路后可以有效地延長膠質(zhì)瘤患者生存時間[14]。結(jié)合之前的研究,無論CXCL12-CXCR4軸在癌癥中的確切機制如何,該軸在腦膠質(zhì)瘤的發(fā)生進展過程中起著重要作用。CXCL12-CXCR4軸在膠質(zhì)瘤細胞PMT過程中可能激活PI3K/AKT/mTOR信號通路。

        綜上所述,本研究利用一定濃度的CXCL12及普樂沙福作用于體外培養(yǎng)的膠質(zhì)瘤LN428和U87MG細胞株,表明CXCL12-CXCR4軸可以促進膠質(zhì)瘤細胞PMT;普樂沙福通過阻斷CXCL12-CXCR4軸,可有效抑制膠質(zhì)瘤細胞增殖、侵襲和遷移,具體分子機制還有待進一步研究。

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