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        羰基化蛋白質(zhì)組學(xué)分析進(jìn)展

        2020-02-28 13:31:10周家華秦洪強(qiáng)葉明亮
        分析測試學(xué)報 2020年1期
        關(guān)鍵詞:羰基化生物素羰基

        周家華,秦洪強(qiáng),葉明亮*

        (1.中國科學(xué)院大連化學(xué)物理研究所 國家色譜研發(fā)中心,中國科學(xué)院分析化學(xué)分離科學(xué)重點實驗室,遼寧 大連 116023;2.中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049)

        1 氧化應(yīng)激與蛋白質(zhì)羰基化

        絕大多數(shù)真核生物的生命活動都離不開氧氣,氧氣與高等生物體的能量代謝等過程密切相關(guān)[1-2]。氧氣分子在代謝中間體、酶和輻射作用下產(chǎn)生活性氧(Reactive oxygen species,ROS),其在正常生理條件下對細(xì)胞代謝的調(diào)控發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[3]。然而,當(dāng)產(chǎn)生的ROS超過生命體內(nèi)源性抗氧化防御的緩沖能力,即氧化劑和抗氧化劑之間的不平衡被打破時,將導(dǎo)致氧化還原信號與控制機(jī)制的破壞和/或分子損傷[4],產(chǎn)生氧化應(yīng)激效應(yīng)(Oxidative stress,OS),進(jìn)而導(dǎo)致脂質(zhì)、DNA/RNA和蛋白質(zhì)等重要生命體活動承擔(dān)者的功能受損。當(dāng)持續(xù)氧化應(yīng)激產(chǎn)生時,將對蛋白質(zhì)、DNA和RNA等生物分子造成不可逆損傷,并造成蛋白酶體和溶酶體降解氧化損傷蛋白質(zhì)的能力降低,使細(xì)胞活力降低,甚至造成細(xì)胞死亡[5-6]。氧化應(yīng)激異常與衰老過程以及多種疾病的發(fā)生密切相關(guān),包括動脈粥樣硬化、惡性腫瘤、阿爾茨海默病和帕金森病等神經(jīng)退行性疾病[7]。

        蛋白質(zhì)羰基化(Protein carbonylation,PCO)是指蛋白質(zhì)在氧化應(yīng)激狀態(tài)下產(chǎn)生醛、酮或內(nèi)酰胺等活性羰基官能團(tuán)[8]。PCO是危害性最大的蛋白質(zhì)翻譯后修飾之一,可造成蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的不穩(wěn)定和功能的不可逆損傷[9]。有關(guān)蛋白質(zhì)羰基化的研究始于20世紀(jì)80年代初,由美國國立衛(wèi)生研究院(National Institutes of Health,NIH)的Stadtman實驗室開創(chuàng)[10]。蛋白質(zhì)羰基化被視為氧化應(yīng)激的生物標(biāo)志物,在細(xì)胞、組織和器官衰老中的作用受到特別關(guān)注[11]。Levine和Stadtman提出蛋白質(zhì)羰基化水平隨著年齡的增長而增加,以此支持細(xì)胞或生物體水平上衰老的自由基(氧化應(yīng)激)理論[12-15],故蛋白質(zhì)羰基化是與衰老相關(guān)的重要候選生物標(biāo)志物。同時,蛋白質(zhì)羰基化會調(diào)控蛋白功能,進(jìn)而影響相關(guān)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò),造成疾病相關(guān)蛋白質(zhì)功能的不可逆損傷[16]。因此,羰基化對于蛋白質(zhì)功能的發(fā)揮具有至關(guān)重要的調(diào)節(jié)作用,實現(xiàn)蛋白質(zhì)羰基化的表征,可以提供氧化應(yīng)激相關(guān)蛋白的作用網(wǎng)絡(luò),為相關(guān)疾病的分子機(jī)制研究提供重要信息[17]。

        2 蛋白質(zhì)羰基化途徑

        蛋白質(zhì)羰基化存在超過35種形式[18],按照其產(chǎn)生方式主要分為以下4類[10](圖1)。

        圖1 蛋白質(zhì)羰基化的主要途徑

        2.1 蛋白質(zhì)、多肽主鏈骨架的裂解

        蛋白質(zhì)的多肽骨架中氨基酸的α-碳原子可被ROS攻擊,形成烷氧基自由基,隨后以α-酰胺化或二酰胺途徑裂解。前者的鍵斷裂發(fā)生在自由基起始位點的N-末端一側(cè),使來自蛋白質(zhì)N-末端部分的多肽片段帶有C-末端酰胺,而來自蛋白質(zhì)C-末端部分的多肽N-末端具有N-α-酮酰基;后者的骨架裂解由α-碳起始位點的C-末端側(cè)的鍵斷裂引起,使來自蛋白質(zhì)N-末端部分的新多肽的C-末端形成二酰胺,而來自蛋白質(zhì)的C-末端部分的多肽N-末端產(chǎn)生異氰酸酯基團(tuán)。

        2.2 蛋白質(zhì)氨基酸側(cè)鏈的氧化

        ROS可通過直接攻擊蘇氨酸、賴氨酸、精氨酸、脯氨酸的側(cè)鏈,引入活性羰基。以賴氨酸為例,羥基自由基在賴氨酸側(cè)鏈的C6位置奪取氫,形成以碳為中心的自由基。過渡金屬離子接受碳自由基的孤電子對后,產(chǎn)生賴氨酸亞胺,隨后通過釋放銨離子自發(fā)水解成氨基己二酸半醛(AAS)。類似地,精氨酸氧化成谷氨酸半醛(GGS),蘇氨酸氧化成2-氨基-3-酮丁酸,脯氨酸氧化得到GGS和2-吡咯烷酮。

        2.3 脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物對蛋白活性位點的加成

        ROS對脂質(zhì)的進(jìn)攻引起脂質(zhì)過氧化(Lipid peroxidation),產(chǎn)生α,β-不飽和醛、二醛和酮醛等被稱為活性羰基物質(zhì)(Reactive carbonyl spices,RCS)的代謝產(chǎn)物(又稱Lipid-derived electrophiles,LDEs,即脂質(zhì)衍生親電試劑),如丙烯醛(Acrolein,ACR)、丙二醛(MDA)、4-羥基-2-壬烯醛(4-Hydroxy-2-nonenal,HNE)等。這些活性羰基物質(zhì)可以通過邁克爾加成或生成席夫堿的形式加合到親核氨基酸(即半胱氨酸、組氨酸和賴氨酸)上引入活性羰基。研究這類共價修飾作用不僅能夠發(fā)現(xiàn)親電性化學(xué)信號的調(diào)控機(jī)制,而且對目前藥物化學(xué)領(lǐng)域熱門的靶向共價抑制劑開發(fā)有著重要參考價值。

        2.4 糖化的氧化產(chǎn)物

        氨基酸和還原糖之間發(fā)生被稱為美拉德反應(yīng)的非酶促反應(yīng),在一系列化學(xué)重排之后,可以在蛋白質(zhì)側(cè)鏈引入活性羰基。除此之外,糖酵解中間體降解產(chǎn)生的小分子醛類,如乙二醛(MG)、甲基乙二醛(MGO)和3-脫氧葡糖醛酮(3-DG)也可以加合在蛋白質(zhì)上從而引入活性羰基。

        3 蛋白質(zhì)羰基化的富集檢測方法

        目前,蛋白質(zhì)羰基化的鑒定和定量技術(shù)主要分為以下3類:(1)分光光度法和色譜法測定總蛋白質(zhì)羰基含量;(2)生物化學(xué)和免疫學(xué)技術(shù),如免疫印跡和ELISA(Enzyme-linked immunosorbent assay ,酶聯(lián)免疫吸附測定法),提供有關(guān)修飾蛋白和羰基化水平的全局性信息;(3)基于質(zhì)譜(MS)的羰基化檢測技術(shù),用于鑒定蛋白質(zhì)的修飾位點以及蛋白質(zhì)結(jié)合的羰基化合物的相對定量[19]。質(zhì)譜以外的其他方法雖然能夠高靈敏度檢測氧化修飾蛋白質(zhì),卻不能提供修飾蛋白質(zhì)特性以及修飾本身的化學(xué)性質(zhì)和位點等信息?;谫|(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學(xué)的進(jìn)步,使蛋白質(zhì)羰基化的規(guī)?;芯砍蔀榭赡?,進(jìn)而為蛋白質(zhì)羰基化的相關(guān)調(diào)控通路研究提供了數(shù)據(jù)支撐[19]。目前采用的蛋白質(zhì)組學(xué)方法主要分為凝膠電泳與非凝膠電泳兩大體系(圖2)。

        圖2 蛋白質(zhì)羰基化蛋白組學(xué)分析方法

        3.1 凝膠電泳體系

        二維(2D)凝膠電泳已被廣泛用于復(fù)雜樣品中羰基化蛋白質(zhì)的鑒定。由于相對豐度低、化學(xué)穩(wěn)定性差、缺乏特定的物理化學(xué)性質(zhì)(如吸收或熒光),羰基化蛋白質(zhì)通常無法直接檢測,其檢測和定量需要使用特定的化學(xué)探針進(jìn)行衍生化[15]。

        2,4-二硝基苯肼(2,4-Dintrophenylhydrazide,DNPH)可與活性羰基反應(yīng),形成穩(wěn)定的2,4-二硝基苯腙,其吸收光譜在365~375 nm處具有特征吸收峰。Levine等[20]首先使用DNPH,通過DNP(2,4-二硝基苯基)基團(tuán)在360 nm處的吸光度來測定羰基化程度。這一思路被發(fā)展為“oxyblot”技術(shù)應(yīng)用于蛋白質(zhì)印跡法,即先用DNP衍生羰基化樣品,再使用抗DNP抗體進(jìn)行檢測[21-22],還可以通過質(zhì)譜法進(jìn)行凝膠內(nèi)消化后對羰基化修飾位點進(jìn)行鑒定。

        酰肼基團(tuán)可以與活性羰基反應(yīng)形成腙加合物,其含有的不穩(wěn)定亞胺鍵,可被氰基硼氫化物特異性還原。此外,酰肼還可以引入多種官能團(tuán)(如生物素、洋地黃毒苷和與酰肼偶聯(lián)的各種熒光化合物等)后再與羰基反應(yīng),如可以用洋地黃毒苷-酰肼衍生化羰基并以抗洋地黃毒苷抗體進(jìn)行檢測,或用生物素-酰肼衍生化并用熒光素標(biāo)記的親和素檢測。熒光素縮氨基硫脲和熒光素酰肼首先由Stadtman等[23]用于在一維凝膠中檢測羰基;Regnier等[24]采用生物素化和親和素-異硫氰酸熒光素(Biotinylation and avidin-fluorescein isothiocyanate,FITC)親和染色法,建立了二維電泳中羰基化蛋白的檢測方法,在用過氧化氫刺激后的酵母蛋白質(zhì)組中鑒定出20種羰基化蛋白質(zhì)。2D凝膠電泳可以在各種生物條件下用于差分氧化蛋白質(zhì)的鑒定,但其靈敏度較低,不易檢測低豐度的蛋白質(zhì),操作費力且不允許高通量檢測[25]。

        3.2 非凝膠電泳體系

        質(zhì)譜法是蛋白質(zhì)組學(xué)中用于鑒定蛋白質(zhì),尤其是PTM(Post-translational modification,翻譯后修飾)表征的最通用技術(shù)。使用質(zhì)譜法的無凝膠方法已經(jīng)成為研究蛋白質(zhì)羰基化的最有力技術(shù)。蛋白質(zhì)羰基化的各項研究受制于其低豐度、低電離效率、可能產(chǎn)物的異質(zhì)性以及與分析期間存在的其他化合物的反應(yīng)性。因此在質(zhì)譜分析之前,分離羰基化肽和蛋白質(zhì)的富集策略通常是必需的[26]。

        3.2.1 基于競爭性反應(yīng)策略對半胱氨酸羰基化修飾的間接鑒定脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物會特異性修飾蛋白質(zhì)的半胱氨酸等活性位點,進(jìn)而影響蛋白質(zhì)的功能。可以通過硫醇反應(yīng)性化學(xué)探針標(biāo)記未被修飾的半胱氨酸活性位點,結(jié)合蛋白質(zhì)定量組學(xué)方法,間接實現(xiàn)相關(guān)羰基化蛋白質(zhì)底物及作用位點的鑒定。Cravatt等[27]基于競爭性isoTOP-ABPP(Isotopic tandem orthogonal proteolysis-activity-based protein profiling,同位素串聯(lián)正交蛋白水解-基于活性的蛋白譜分析)策略,使用LDE(引入活性羰基基團(tuán))或DMSO(Dimethylsulfoxide,二甲基亞砜)處理蛋白質(zhì)組,再用硫醇反應(yīng)性碘乙酰胺(Iodoacetamide,IAM)-炔探針標(biāo)記,通過CuI催化的疊氮化物-炔烴環(huán)加成反應(yīng)(點擊化學(xué))綴合上可切割的、同位素標(biāo)記的生物素標(biāo)簽,以鏈霉親和素珠富集,珠上酶解得到探針標(biāo)記肽段,并用LC-MS/MS鑒定和定量。該策略能夠通過半胱氨酸反應(yīng)性碘乙酰胺-炔(IA)探針定量蛋白質(zhì)組中LDE修飾的1000多個半胱氨酸位點。由于對半胱氨酸的LDE修飾可以競爭性地阻斷其IA-炔烴標(biāo)記,DMSO處理的(輕)與LDE處理的(重)信號之間的定量比率準(zhǔn)確地反映了對半胱氨酸LDE修飾的程度。該方法基于LDE和碘代乙酰胺探針對半胱氨酸活性位點的競爭作用,有效實現(xiàn)了LDE相關(guān)底物的篩選,并獲取了相應(yīng)的底物位點信息。然而,該方法只能間接獲取LDE對蛋白質(zhì)中半胱氨酸殘基的修飾位點信息,無法獲取LDE與組氨酸和賴氨酸修飾位點信息。

        3.2.2 通過生物正交LDE-類似物探針對特定羰基化類型進(jìn)行檢測鑒定與基于競爭作用的間接羰基化檢測方法相比,實現(xiàn)修飾位點的直接鑒定具有更高的靈敏度,并能有效減少假陽性干擾。Marnett等[28]設(shè)計合成了帶有疊氮或炔基的4-羥基-2-壬烯醛(HNE)類似物,并將其加入到RKO細(xì)胞(Human colon adenocarcinomacells,人結(jié)腸腺癌細(xì)胞)中,使RKO細(xì)胞中靶蛋白產(chǎn)生羰基化修飾,再加入相對應(yīng)的接入炔基或疊氮基團(tuán)的生物素,利用點擊化學(xué)反應(yīng)獲得生物素化靶蛋白,最后用鏈霉親和素珠親和純化。針對鏈霉親和素結(jié)合非特異性蛋白質(zhì)以及生物素標(biāo)簽影響質(zhì)譜檢測等問題,Porter等[29]提出了親和純化-光致分離策略,開發(fā)了一種可由光裂解的疊氮-生物素標(biāo)簽,可以實現(xiàn)鏈霉親和素捕集的HNE-炔烴探針加合蛋白質(zhì)或肽段的特異性釋放,并用脂質(zhì)衍生親電試劑HNE和4-氧代-2-壬烯醛(4-oxo-2-Nonenal,ONE)的炔基類似物進(jìn)行了一系列定量加合物分析實驗[30]。在此基礎(chǔ)上,Liebler等[31]開發(fā)了一種以位點為中心的定量化學(xué)蛋白質(zhì)組學(xué)方法,其核心在于在光可切割疊氮基生物素試劑中接入輕重同位素標(biāo)記,有效提高了鑒定位點的可信度,實現(xiàn)了對約400個HNE修飾位點的大規(guī)模、原位、位點特異性鑒定和定量。

        生物正交法局限于只能鑒定特定類型的羰基化修飾,不能捕獲蛋白質(zhì)組中所有類型的羰基化修飾蛋白。合成特定LDE類似物探針成本較高、工作量大,此外,在LDE上接入炔基或疊氮化物可能會改變它們的物理和化學(xué)性質(zhì),反過來又會影響其與一些天然靶蛋白的相互作用。

        3.2.3 靶向活性羰基的化學(xué)捕集策略

        (1)“一體化”生物素探針

        利用某些化學(xué)基團(tuán)可以快速動力學(xué)和高特異性結(jié)合活性羰基形成穩(wěn)定的共價加合物的性質(zhì),將其與生物素連接為探針,再使用親和素進(jìn)行捕獲,可以實現(xiàn)衍生化羰基化蛋白/肽段的高效富集。其中使用最廣泛的是生物素酰肼(Biotin hydrazide,BHZ)探針[32]。

        Yang等[33]將BHZ與樣品中羰基化蛋白反應(yīng)生成亞胺,并用氰基硼氫化鈉特異性還原亞胺穩(wěn)定產(chǎn)物,用鏈霉親和素珠捕集生物素化蛋白,珠上洗滌、還原、烷基化封閉、酶解后,取酶解上清液進(jìn)行LC-MS/MS檢測。該研究在單次LC-MS/MS實驗中能夠鑒定老年小鼠中的至少100種羰基化蛋白質(zhì)。

        親和素可在廣泛的pH值范圍內(nèi)以非常高的親和力結(jié)合生物素化多肽,使攜帶位點信息的肽段難以從珠上釋放,因而無法得到所對應(yīng)蛋白質(zhì)中羰基化修飾的具體位點。無論是為了更深入地理解氧化應(yīng)激導(dǎo)致活組織損傷和功能喪失的原因和機(jī)制,還是為了提高鑒定結(jié)果置信度,鑒定蛋白質(zhì)序列中的氧化位點都是必要的。鑒于此,Regnier等[34]采用親和能力較弱的固定化單體親和素構(gòu)建層析柱,柱上捕獲的生物素化蛋白質(zhì)使用2 mmol/L生物素或0.1 mol/L甘氨酸[18]洗脫下來,從而獲得含有羰基化位點的肽段。Regnier等[35]在親和富集后通過反相液相色譜(Reversed-phase liquid chromatography,RPLC)在C8柱上進(jìn)一步分離分析羰基化蛋白質(zhì),并首次報道了基于蛋白質(zhì)組學(xué)的人血漿中氧化蛋白的鑒定和表征[36]。

        內(nèi)源生物素化蛋白質(zhì),以及通過疏水和(或)靜電相互作用與親和素非特異性結(jié)合的蛋白質(zhì)和肽段,是生物素探針法鑒定羰基化蛋白的主要干擾源[19]。為了有效鑒定特異性純化的蛋白質(zhì)組分并過濾掉非特異性背景蛋白質(zhì),Griffin等[37]對親和純化后的蛋白進(jìn)行穩(wěn)定同位素標(biāo)記。該方法結(jié)合了蛋白質(zhì)羰基的生物素酰肼標(biāo)記、親和素親和層析、多重iTRAQ(Isobaric tag for relative absolute quantitation,同位素標(biāo)記相對和絕對定量)試劑穩(wěn)定同位素標(biāo)記等方法,并嘗試在線性離子阱質(zhì)譜儀上使用脈沖碰撞解離(PQD)操作,定量富集得到200多種羰基化蛋白。與之類似的同位素標(biāo)記方法已被廣泛應(yīng)用于人體血漿[38]、鼠血漿[39]、RCS修飾蛋白質(zhì)[40-42]中羰基化的鑒定。

        由于羥胺與活性羰基生成產(chǎn)物的肟鍵(Keq>108M-1)比與酰肼反應(yīng)生成產(chǎn)物的腙鍵(Keq約為104~106M-1)穩(wěn)定得多[43],ARP(Aldehyde-reactive probe,醛反應(yīng)性探針)作為最開始被用于DNA修飾檢測的生物素化羥胺衍生物,因不需要額外的還原步驟,而成為廣泛應(yīng)用的一種酰肼生物素替代品[44-47]。

        基于酰肼或羥胺生物素化探針的富集方法,能夠?qū)崿F(xiàn)多種內(nèi)源性羰基化蛋白質(zhì)的高效捕獲,并通過蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù)實現(xiàn)多種類型內(nèi)源性羰基化的直接鑒定。然而,由于缺乏有效的脫除手段,龐大的生物素基團(tuán)限制了MS分析過程中羰基化肽序列的碎裂和鑒定效率,并且冗長的生物素側(cè)鏈的片段化使質(zhì)譜解析變得更加復(fù)雜。針對以上“一體式”探針面臨修飾位點鑒定效率低的問題,實現(xiàn)羰基化修飾肽段可控釋放成為研究的熱點。

        (2)“分體式”可控釋放探針

        Griffin等[48]提出一種基于固相酰肼(SPH)試劑開發(fā)的無標(biāo)記策略,通過形成共價可逆的腙鍵,可在酰肼包被的玻璃珠上捕獲HNE修飾肽,并在較高溫度(60 ℃)和低pH值(10%三氟乙酸或甲酸)下洗脫釋放。類似地,基于Affi-gel酰肼珠的共價色譜法在自下而上的蛋白質(zhì)組學(xué)方法中得到很好的應(yīng)用,譬如該酰肼珠富集法也被應(yīng)用于糖基化修飾的研究[49]。Maier等[42]將用于相對定量的d0/d4-琥珀酸酐-肽胺標(biāo)記方法和用于捕獲脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物-肽綴合物的Affi-gel酰肼珠富集方法結(jié)合,實現(xiàn)了羰基化蛋白/肽段的富集和定量分析。Prokai等[40]通過還原烷基化對HNE-修飾的肽進(jìn)行二甲基標(biāo)記,使用固相酰肼化學(xué)捕集羰基化肽段,再由酸催化釋放回收。這種以修飾為重點的定量有助于表征蛋白質(zhì)功能的伴隨變化,并且可提供有關(guān)分子信號傳導(dǎo)機(jī)制的重要信息,加深對與氧化應(yīng)激相關(guān)的細(xì)胞過程的理解,但是該方法酸釋放的條件比較苛刻,且仍然面臨釋放不完全的問題。

        GPR(Girard preagent:1-(2-hydrazino-2-oxoethyl) pyridinium chloride,1-(2-肼基-2-氧代乙基)吡啶鎓氯化物)是最初開發(fā)用于衍生和溶解類固醇的系列試劑的一部分[50],其酰肼基團(tuán)易與羰基反應(yīng),而季銨基團(tuán)則可向氧化蛋白質(zhì)和肽添加正電荷。Regnier等[51]將GRP與羰基化蛋白質(zhì)反應(yīng),還原、酶解后用SCX(Strong cation exchange,強(qiáng)陽離子交換)色譜法富集。接著,兩種同位素形式的GPR試劑被用于量化和表征酵母提取物中蛋白質(zhì)羰基化位點[52]。與此有異曲同工之妙的是,Lu等[53]開發(fā)了基于氟衍生化和FSPE(Fluorous solidphase extraction,氟固相萃取)的新方法,將標(biāo)記的肽與固相氟特異性結(jié)合用于HNE修飾肽富集。該方法的優(yōu)點是氟標(biāo)簽可以在MS分析期間增強(qiáng)HNE修飾肽的強(qiáng)度,從而有助于鑒定HNE-修飾的肽,并促進(jìn)氟衍生化肽段的MS/MS片段化。

        AminoxyTMT(Aminoxy tandem mass tag,羥胺串聯(lián)質(zhì)量標(biāo)簽)是串聯(lián)質(zhì)量標(biāo)簽(Tandem mass tag,TMT)同量異位標(biāo)記試劑的衍生物,Griffin等[54]利用其羥胺基官能團(tuán)共價標(biāo)記蛋白質(zhì)中的活性羰基并實現(xiàn)了富集。Lu等[55]提出了六重同量異位標(biāo)記親和純化(SiLAP)策略,使用aminoxyTMT標(biāo)記試劑和抗TMT抗體樹脂同時實現(xiàn)HNE修飾蛋白的選擇性富集和特異性位點的準(zhǔn)確定量,量化了2 257種獨特的HNE修飾肽和1 121種HNE修飾蛋白。

        Wang等[56]合成了生物正交的含炔基酰肼探針(HZyne)和羥胺衍生探針(Ayyne),評估了它們捕獲HNE修飾的蛋白質(zhì)和殘留位點以進(jìn)行MS鑒定的能力,通過基于二甲基標(biāo)記的RD-ABPP(Reductive dimethylation-ABPP,還原型二甲基標(biāo)記-ABPP)策略,定量了4 000多個HNE修飾蛋白細(xì)胞裂解物;通過TOP-ABPP(Tandem orthogonal proteolysis-ABPP,串聯(lián)正交蛋白水解-ABPP)策略鑒定了約400個高可信度的HNE加合位點。Yang等[57]使用前述HZyne探針,富集并分析了肽骨架碎裂形成的全局和位點特異性的親電子蛋白質(zhì)降解物,并鑒定到N-甲?;嚯倪@一新的羰基化產(chǎn)物。值得注意的是,Yang提及了將定量化學(xué)蛋白質(zhì)組學(xué)與開放式搜索工具相結(jié)合的潛在應(yīng)用前景。Wang等[58]開發(fā)了一種苯胺衍生的探針,并結(jié)合ABPP策略分析鐵死亡(ferroptosis)中的羰基化蛋白,鑒定到400多種內(nèi)源性羰基化修飾蛋白質(zhì)和20余個殘基位點。Wang等[59]將苯胺探針用于鑒定丙烯醛(ACR)修飾位點,鑒定了2 300余種蛋白質(zhì)和500余個由丙烯醛靶向的半胱氨酸位點。

        這些基于可控釋放思路開發(fā)的新型探針,極大地提高了羰基化蛋白及其位點的鑒定數(shù)量和質(zhì)量,推動了蛋白質(zhì)羰基化的研究進(jìn)程,但此類方法操作步驟較為繁瑣,肽段攜帶標(biāo)簽依然較大,因此尚需開發(fā)新的更好的方法解決此類問題。近來,Aye等在T-REX[60](Targetable reactive electrophiles and oxidants,靶向活性親電物質(zhì)和活性氧)基礎(chǔ)上開發(fā)出G-REX[61]技術(shù),即在細(xì)胞內(nèi)異位表達(dá)HaloTag蛋白,該蛋白可特異性結(jié)合光籠裝RES(Reactive electrophilic specie,活性親電物質(zhì),即上文所述RCS)前體。在低能量光照射下,體內(nèi)可控釋放RES,如5 min內(nèi)細(xì)胞最多可釋放出5 μmol/L HNE-炔烴,大大減輕了此前研究體外大劑量暴露相關(guān)的毒性/脫靶效應(yīng),進(jìn)而提高了所鑒定到羰基化位點的可靠性??梢灶A(yù)見G-REX在研究氧化應(yīng)激,特別是RES相關(guān)的蛋白質(zhì)羰基化方面的巨大潛力。目前G-REX誘導(dǎo)得到的HNE修飾蛋白依然使用鏈霉親和素點擊/生物素親和富集的方法。如前文所述,這無疑限制了該技術(shù)的更有效應(yīng)用。我們認(rèn)為應(yīng)該利用新的化學(xué)反應(yīng),開發(fā)新型可逆生物正交探針,其應(yīng)滿足:①高效特異地與羰基化蛋白結(jié)合,最好與活性羰基結(jié)合;②能夠被有效地富集出來;③與羰基化蛋白的結(jié)合應(yīng)該是可逆的,以方便地釋放富集蛋白/肽段,獲取羰基化位點信息;④如果可能,該探針應(yīng)該與G-REX技術(shù)兼容。G-ERX技術(shù)與新型探針富集技術(shù)的配套使用,必將有力推動蛋白質(zhì)羰基化研究的進(jìn)程。

        4 結(jié) 語

        化學(xué)生物學(xué)技術(shù)的快速發(fā)展為蛋白質(zhì)羰基化的富集提供了更多的有力工具,而質(zhì)譜技術(shù)的發(fā)展則為蛋白質(zhì)羰基化提供了檢測手段,兩者的結(jié)合極大地推動了蛋白質(zhì)羰基化的研究進(jìn)展。然而,蛋白質(zhì)羰基化具有高度動態(tài)性,并且存在數(shù)目繁多的修飾形式,實現(xiàn)不同類型羰基化的同時檢測尚需要富集、檢測技術(shù)的進(jìn)一步完善,并且需要借助相關(guān)生物信息學(xué)技術(shù)的發(fā)展。隨著相關(guān)技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展,蛋白質(zhì)羰基化的研究必將大為加速,進(jìn)而為闡明氧化應(yīng)激的機(jī)制提供技術(shù)支撐。

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