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        雙重數(shù)字PCR在轉(zhuǎn)基因大豆檢測中的應(yīng)用

        2020-02-27 06:41:40劉曉朱鵬宇景小艷李志紅張永江李想付偉
        生物技術(shù)進展 2020年1期
        關(guān)鍵詞:大豆檢測

        劉曉, 朱鵬宇, 景小艷, 李志紅, 張永江, 李想, 付偉,*

        1.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護學(xué)院, 北京 100193;

        2.中國檢驗檢疫科學(xué)研究院, 北京 100176;

        3.上海海關(guān)動植物與食品檢驗檢疫技術(shù)中心, 上海 200433

        轉(zhuǎn)基因作物自1994年商業(yè)化以來種植面積逐年增加,2017年達到了1.898億 hm2。雖然各國對轉(zhuǎn)基因作物的安全性評價標(biāo)準(zhǔn)有所不同,轉(zhuǎn)基因作物的種植國家與種植面積在近些年來也略有變動,但總體發(fā)展態(tài)勢十分良好。其中轉(zhuǎn)基因大豆是研究比較多并且最早商業(yè)化的轉(zhuǎn)基因作物品種,種植面積達到了9 140萬hm2,占轉(zhuǎn)基因作物總量的50%[1]。由于國內(nèi)大豆生產(chǎn)成本高、進口大豆質(zhì)優(yōu)價低等因素,同時國內(nèi)大豆市場面臨國內(nèi)種植規(guī)模小但需求量高的矛盾,我國需要進口大豆保障市場需求。國際市場上的大豆產(chǎn)品種類繁雜,其中轉(zhuǎn)基因大豆占有相當(dāng)大的比重。根據(jù)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部的公告,截至2019年1月共有14個大豆轉(zhuǎn)基因品系獲得我國轉(zhuǎn)基因生物進口安全證書(表1),這些轉(zhuǎn)基因大豆品系隨著國際貿(mào)易作為食品加工原料進入我國市場。除已獲批的14個轉(zhuǎn)基因大豆品系外,幾個主要進口國還大面積種植了其他轉(zhuǎn)基因品系,這些未獲準(zhǔn)入的大豆有可能在生產(chǎn)加工、運輸、銷售等過程中摻入其中,給我國進口大豆的精準(zhǔn)檢測帶來障礙。同時為了滿足眾多消費者的知情權(quán)和消費權(quán),必須加強轉(zhuǎn)基因大豆的監(jiān)管,提升轉(zhuǎn)基因大豆的精準(zhǔn)檢測技術(shù)。實現(xiàn)這一目的的基礎(chǔ)就是要加快實現(xiàn)微量轉(zhuǎn)基因成分的定量檢測,完善轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品管理體系。

        目前,轉(zhuǎn)基因成分定量檢測應(yīng)用最多的是實時熒光PCR技術(shù)[2],通過繪制標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)濃度曲線,檢測閾值來計算轉(zhuǎn)基因成分含量,但是在實際應(yīng)用中有一定局限性,其中最主要的是標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:首先很難做到精準(zhǔn)的標(biāo)準(zhǔn)濃度梯度,其次在操作步驟及繪制曲線過程中會產(chǎn)生人工誤差,數(shù)字PCR能夠避免這些問題并且不受擴增效率的影響[4-5]。在實際檢測過程中,不僅要檢測大豆原料,有時也需要檢測大豆深加工產(chǎn)品。深加工產(chǎn)品含有添加劑、色素等成分,往往提取的DNA質(zhì)量不高,亟需選擇一種靈敏度更高的檢測方法,因此有學(xué)者嘗試使用數(shù)字PCR檢測方法,并證實了數(shù)字PCR靈敏度及重復(fù)性高于其他PCR方法[6-8]。dPCR是一種基于油包水結(jié)構(gòu)實現(xiàn)單分子擴增的PCR方法,能實現(xiàn)不依賴于標(biāo)準(zhǔn)曲線檢測拷貝數(shù),利用內(nèi)參基因與外源基因拷貝數(shù)比例來計算轉(zhuǎn)基因成分含量,從而實現(xiàn)高靈敏度的定量并廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)基因成分的檢測。吳瀟等[9]利用微滴式數(shù)字PCR成功建立了轉(zhuǎn)基因大豆GTS-40-3-2品系的檢測方法。周圓等[10]建立了3種轉(zhuǎn)基因玉米品系TC1507、MIR162、MIR604的二重微滴式數(shù)字PCR檢測方法。Corbisier等[11]利用數(shù)字PCR方法也成功地檢測到了轉(zhuǎn)基因玉米MON810品系,并驗證了其與實時熒光PCR結(jié)果的一致性。

        對于轉(zhuǎn)基因成分的絕對定量檢測來說,單重檢測在單個基因準(zhǔn)確性方面具有較好的擴增效果,而且檢測的穩(wěn)定性較高;但是由于轉(zhuǎn)基因成分絕對定量是基于外源基因與內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因的比值,因此雙重檢測具有潛在的較高的穩(wěn)定性和準(zhǔn)確性,而且相較于單重檢測來說,具有較低的成本。

        表1 轉(zhuǎn)基因大豆安全證書(進口)批準(zhǔn)清單

        本研究基于數(shù)字PCR方法,針對MON87705、MON87769和DP356043三種轉(zhuǎn)基因大豆的品系特異性序列進行引物的設(shè)計與優(yōu)化,驗證雙重數(shù)字PCR在轉(zhuǎn)基因大豆中的特異性、重復(fù)性、檢測限和在實際樣品中的檢測效果等參數(shù),并對雙重微滴式數(shù)字PCR在轉(zhuǎn)基因大豆檢測的可行性以及標(biāo)準(zhǔn)化進行初步分析。在已有研究中,3個大豆品系的定量檢測方法較少,其中轉(zhuǎn)基因大豆MON87705尚未通過我國進口審批,但已在國外商業(yè)化,實際檢測依靠篩選元件的篩查與判斷不夠準(zhǔn)確,而本研究獲得了3種大豆品系特異性序列,并針對側(cè)翼片段和間插序列設(shè)計了引物與探針,以期能夠?qū)崿F(xiàn)轉(zhuǎn)基因成分的品系溯源,為轉(zhuǎn)基因大豆或大豆制品轉(zhuǎn)基因成分定量研究提供技術(shù)方法。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料與試劑

        轉(zhuǎn)基因大豆100% MON87705、100% MON87769、10% DP356043、MON87705、標(biāo)準(zhǔn)品購自美國油脂化學(xué)家協(xié)會(American Oil Chemists’ Society, AOCS)。ddPCR 預(yù)混液、微滴生成油、微滴分析油、微滴生成卡槽、微滴生成卡槽膠墊和96孔板購自美國Bio-Rad公司。

        1.2 實驗儀器

        Nanodrop ND-1000核酸蛋白定量儀(Thermo Scientific, 美國);QX200 Droplet Digital PCR系統(tǒng)(Bio-Rad, 美國, 包括微滴生成儀、微滴讀取儀和封膜儀);ABI StepOne Plus定量PCR儀(Applied Biosystem,美國)。

        1.3 實驗方法

        1.3.1DNA提取 轉(zhuǎn)基因大豆基因組采用改良CTAB法提取,基因組DNA通過Nanodrop ND-1000核酸蛋白定量儀檢測純度和濃度。

        1.3.2引物與探針設(shè)計 大豆單拷貝內(nèi)參基因lectin采用行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)SN1204-2016提供的引物探針序列,大豆品系特異性區(qū)域序列參考GenBank并測序驗證,采用NCBI數(shù)據(jù)庫引物設(shè)計工具進行引物和探針的設(shè)計,并由英濰捷基(上海)股份有限公司合成,引物及探針信息見表2。

        表2 引物探針序列

        1.3.3微滴數(shù)字PCR 微滴式數(shù)字PCR包含四步:PCR體系配置、微滴生成、PCR擴增和信號讀取。數(shù)字PCR體系為(20 μL):10 μL 2×ddPCR Master Mix,10 μmol·L-1內(nèi)參基因,外源基因的正向引物和反向引物各1 μL,雙探針各0.5 μL,DNA模板1 μL(模板濃度50 ng·μL-1)。微滴生成步驟需要專用的微滴生成卡以及微滴生成儀,將20 μL PCR體系和70 μL微滴生成油(droplet generation oil)加入微滴生成卡,覆蓋專用膠墊后置入微滴生成儀,生成微滴。將微滴轉(zhuǎn)入96孔板,用錫箔紙密封置于ABI-PCR儀中進行擴增。以lectin為內(nèi)參基因,實驗設(shè)置空白對照,并且每個樣品3個平行。

        微滴數(shù)字PCR擴增程序:94 ℃,10 min預(yù)變性;94 ℃變性15 s,57 ℃退火60 s,39個循環(huán);98 ℃熱失活10 min。擴增階段結(jié)束將96孔板置入微滴讀取儀中讀取信號,并使用軟件QuantaSoft V1.3.2.0分析實驗數(shù)據(jù)。

        1.3.4外源拷貝數(shù)的計算 ddPCR采用直接計數(shù)的方法進行拷貝數(shù)的計算。通過數(shù)字PCR反應(yīng)總微滴數(shù)和陽性微滴數(shù)直接計算得到同一待測樣中外源基因與內(nèi)參基因的絕對拷貝數(shù),再計算轉(zhuǎn)基因樣品中轉(zhuǎn)基因成分含量即可。轉(zhuǎn)基因成分含量計算公式如下所示:

        轉(zhuǎn)基因成分含量=(外源基因拷貝數(shù)/內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因拷貝數(shù))×100%

        1.4 特異性檢測

        實驗以3個轉(zhuǎn)基因大豆品系:MON87705、MON87769、DP356043為實驗材料,并加入了轉(zhuǎn)基因大豆常見品系DAS44406、MON87701驗證不同品系雙重數(shù)字PCR方法的特異性。具體反應(yīng)體系與反應(yīng)條件同1.3.3。

        1.5 定量范圍檢測

        將50 ng·μL-1的轉(zhuǎn)基因大豆基因組用水進行梯度稀釋,經(jīng)過濃度梯度稀釋后的轉(zhuǎn)基因大豆基因組DNA用于雙重數(shù)字PCR定量范圍及檢測限的測定。具體反應(yīng)體系與反應(yīng)條件同1.3.3。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 特異性檢測

        實驗所用的轉(zhuǎn)基因品系特異性測定實驗結(jié)果見圖1。實驗所用的品系特異性引物探針組合對非靶標(biāo)大豆品系無擴增,數(shù)字PCR結(jié)果陰性點與陽性點的熒光信號區(qū)分明顯,由圖1B可知所建立方法可同時分析外源基因與內(nèi)參基因的兩種熒光信號并且相互無交叉擴增的影響。

        2.2 定量范圍檢測

        定量范圍是指雙重數(shù)字PCR檢測方法所能實現(xiàn)穩(wěn)定定量檢測的質(zhì)量百分比范圍。滿足穩(wěn)定拷貝數(shù):20 μL體系的數(shù)字PCR反應(yīng)孔包含的目的基因拷貝數(shù)。定量檢測應(yīng)實現(xiàn)界定線性范圍內(nèi)的點滿足線性擬合標(biāo)準(zhǔn)曲線線性系數(shù)大于95%。對于轉(zhuǎn)基因成分檢測來說重點是低含量轉(zhuǎn)基因成分的有效檢出,因此本研究重點對雙重數(shù)字PCR檢測限進行了檢測。

        A:轉(zhuǎn)基因大豆品系特異性驗證結(jié)果;B:轉(zhuǎn)基因大豆MON87705品系雙重dPCR的二維散點圖 藍色點—外源基因陽性,綠色點—內(nèi)參基因陽性,橘色點—外源基因陽性和內(nèi)參基因陽性; C、D、E:分別為轉(zhuǎn)基因大豆品系MON87705、MON89788、DP356043外源基因的微滴dPCR結(jié)果 藍色點—陽性,灰色點—陰性,粉色線—熒光閾值限。

        質(zhì)量百分比MON87705平均RSD/%質(zhì)量百分比MON87769平均RSD/%質(zhì)量百分比DP356043平均RSD/%100%7225.28100%75419.2010%16134.4050%41715.0250%37412.045%8717.4025%2357.6225%19914.672.5%4439.425%3418.875%2317.841.25%2305.320.5%4.924.000.5%1118.180.5%4023.330.05%1.40.05%3.70.05%2.5NTC0NTC0NTC0

        圖2 轉(zhuǎn)基因大豆定量檢測結(jié)果

        通過三個品系的雙重數(shù)字PCR定量結(jié)果及雙重數(shù)字PCR反應(yīng)熱點圖可以看出,本研究中雙重數(shù)字PCR檢測體系具有較高的檢測線性,并且不同組內(nèi)的RSD值小于25%。雙重數(shù)字PCR反應(yīng)陽性點與陰性點的區(qū)分非常明顯,結(jié)果表明所建立方法的穩(wěn)定性和重復(fù)性較好。從驗證結(jié)果可以看出,本研究中的檢測體系在質(zhì)量百分比為0.5%的樣品中可以實現(xiàn)穩(wěn)定擴增,在0.05%的樣品中可以出現(xiàn)陽性結(jié)果,但是所有平行不全為陽性,因此,本研究設(shè)定定性檢測限定為0.05%,定量檢測限為0.5%。

        2.3 轉(zhuǎn)基因大豆品系拷貝數(shù)分析

        利用轉(zhuǎn)基因成分含量計算公式進行計算,結(jié)果如表4所示,MON87705和MON87769含量分別為115.43%、104.08%,DP356043含量為12.75%,RSD均符合穩(wěn)定定量檢測標(biāo)準(zhǔn)。

        表4 大豆轉(zhuǎn)基因成分拷貝數(shù)結(jié)果

        3 討論

        近年來隨著轉(zhuǎn)基因技術(shù)的推廣及商業(yè)化程度的加深,進口產(chǎn)品或市售大豆制品所含轉(zhuǎn)基因成分越來越復(fù)雜,實際檢測過程中常常會遇到樣品混雜、純度低或多拷貝整合等情況[12],十分不利于國家對轉(zhuǎn)基因商品市場的監(jiān)督管理。數(shù)字PCR方法作為一種新型的準(zhǔn)確定量技術(shù),在靈敏度、穩(wěn)定性等方面都優(yōu)于其他PCR方法,更適合應(yīng)用于實際檢測工作。本研究建立了一種轉(zhuǎn)基因大豆品系的數(shù)字PCR檢測方法,驗證了檢測特異性、定量范圍等參數(shù),結(jié)果顯示實驗所用引物探針組合在數(shù)字PCR方法中僅對目標(biāo)大豆品系有熒光信號產(chǎn)生,可以進行特異性擴增,用于大豆轉(zhuǎn)基因品系的篩選與鑒別,方法也可以準(zhǔn)確檢測出大豆中轉(zhuǎn)基因成分的含量,定量檢測限可達0.5%,研究同時測定了轉(zhuǎn)基因大豆的外源基因拷貝數(shù),其結(jié)果與購買標(biāo)準(zhǔn)品的參數(shù)大體一致,也說明本研究建立的雙重數(shù)字PCR體系能夠準(zhǔn)確且穩(wěn)定的滿足實際檢測需要。數(shù)字PCR是一種靈敏、準(zhǔn)確的定量技術(shù),操作流程較為簡單,采用基因組DNA可直接進行檢測。此外不需要繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,可以直接實現(xiàn)對拷貝數(shù)的絕對定量分析,在線性范圍、檢測極限和定量極限等方面都更勝于實時熒光PCR,因此受到很多學(xué)者的認(rèn)可[13-14]。雙重數(shù)字PCR相對于單重數(shù)字PCR在穩(wěn)定性和準(zhǔn)確性方面具有明顯的優(yōu)勢,尤其是檢測通量大大提高[15]。通過對實際樣品的檢測所建立的雙重數(shù)字PCR方法適用于港口及各檢驗檢疫單位或者其他科研單位,以進行轉(zhuǎn)基因大豆的品系特異性高效定量成分檢測。

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