葉綠 許偉紅 薛靜 張婷 朱亮 杜燕 吳華香
生物鐘存在于機(jī)體內(nèi)幾乎所有的細(xì)胞中,調(diào)節(jié)機(jī)體的行為和生理過(guò)程,包括能量代謝、內(nèi)分泌激素的晝夜節(jié)律[1]。生物鐘包括正向調(diào)節(jié)作用的circadian locomotor output cycles kaput(Clock)、brain and muscle Arnt-like protein-1(Bmal1)和負(fù)向調(diào)節(jié)作用的 Period1-3(Per1-3)、Cryptochrome1-2(Cry1-2)。這些生物鐘基因相互作用,在轉(zhuǎn)錄和翻譯水平構(gòu)成自主的反饋環(huán)路[2]。
生物鐘功能紊亂與代謝綜合征、糖尿病、心血管疾病密切相關(guān)。研究表明,睡眠障礙、輪班工作導(dǎo)致糖尿病發(fā)病率增加[3]。人群生物鐘基因的多態(tài)性和突變與心血管疾病、糖尿病和肥胖相關(guān)[4-6]。Per2基因缺失導(dǎo)致小鼠肥胖[7],Clock和Bmal1基因缺失引起小鼠血糖升高[8-9]。但目前多數(shù)動(dòng)物模型為全身性基因敲除,除外環(huán)境和攝食行為等影響后,生物鐘基因異常導(dǎo)致β細(xì)胞功能障礙的機(jī)制不明確。有研究發(fā)現(xiàn),特異性敲除β細(xì)胞Bmal1基因比全身性敲除Bmal1基因的小鼠,胰島素分泌下降、糖耐量受損和血糖升高更明顯。特異性敲除小鼠β細(xì)胞Clock和Per2基因未導(dǎo)致胰島功能障礙[10]。這些研究證實(shí)Bmal1對(duì)維持胰島β細(xì)胞正常功能的重要作用。
β細(xì)胞功能障礙是糖尿病發(fā)病的中心環(huán)節(jié),細(xì)胞凋亡在胰島功能障礙起重要作用[11-13]。目前生物鐘基因?qū)?xì)胞凋亡的調(diào)控機(jī)制尚不明確。本研究應(yīng)用RNA干擾,沉默胰島β細(xì)胞Bmal1基因表達(dá),觀察Bmal1基因缺失對(duì)β細(xì)胞的影響及其機(jī)制,現(xiàn)報(bào)道如下。
1.1 細(xì)胞、主要儀器和試劑 大鼠胰島β細(xì)胞瘤株(insulinoma cell line,INS-1,武漢普諾賽生命科技有限公司,貨號(hào):CL-0368)。全自動(dòng)酶標(biāo)儀(美國(guó)Thermo scientific公司,型號(hào):Multiskan MK3),實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(美國(guó) Applied Biosystems公司,型號(hào):QuantStudio6),流式細(xì)胞儀(美國(guó)Beckman公司,型號(hào):CytoFLEX),熒光顯微鏡(日本Olympus公司,型號(hào):BX53),增強(qiáng)型ATP檢測(cè)試劑盒(上海碧云天公司,批號(hào):S0027),ROS檢測(cè)試劑盒(上海碧云天公司,批號(hào):S0033),RNA抽提試劑盒(美國(guó)Ambion公司,批號(hào):15596-026),實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒(美國(guó)Vazyme公司,批號(hào):Q111-02),TUNEL檢測(cè)試劑盒(美國(guó)Roche Applied Science公司,批號(hào):12156792910)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 胰島β細(xì)胞培養(yǎng)于含5%CO2的37℃培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)條件為含10%胎牛血清(美國(guó)Gibco公司,批號(hào):10091-148)、2mmol/L左旋谷氨酰胺(美國(guó)Gibco公司,批號(hào):25030-081)、青霉素-鏈霉素溶液(美國(guó) Gibco 公司,批號(hào):15070-063)、10 mmol/L HEPES(美國(guó) Gibco公司,批號(hào):15630-080)、50μmol/L 巰基乙醇(美國(guó) Gibco公司,批號(hào):21985023)、11.2mmol/L 葡萄糖、1mmol/L丙酮酸鈉的RPMI-1640培養(yǎng)液(美國(guó)Gibco公司,批號(hào):11875-093)。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組 正常對(duì)照組(含5.5mmol/L葡萄糖,NC組)、高糖組(含33.3mmol/L葡萄糖)、正常糖濃度+無(wú)關(guān)RNA轉(zhuǎn)染組(含5.5mmol/L葡萄糖,NC+siRNA組)、正常糖濃度+Bmal1基因沉默組(NC+Bmal1-/-組)、高糖+無(wú)關(guān)RNA轉(zhuǎn)染組(含33.3mmol/L葡萄糖,高糖+siRNA組)、高糖+Bmal1基因沉默組(高糖+Bmal1-/-組)。
1.2.3 細(xì)胞轉(zhuǎn)染及沉默Bmal1基因 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,生長(zhǎng)狀態(tài)良好的INS-1β細(xì)胞,每孔2×105個(gè)接種于細(xì)胞培養(yǎng)6孔板,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過(guò)夜。細(xì)胞密度達(dá)到70%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染,在轉(zhuǎn)染前2h換成無(wú)血清1640培養(yǎng)基。取5μl LipofectamineTM2000(美國(guó)Invitrogen 公司,批號(hào):11668-027)加至 100μl opti-MEM 中,室溫下靜置5min;混合LipofectamineTM2000和核酸的稀釋液,室溫下靜置20min。每個(gè)培養(yǎng)孔加混合液200μl。細(xì)胞于37℃、CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),6h后換為正常培養(yǎng)基,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過(guò)夜。
1.2.4 三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)濃度測(cè)定 去除培養(yǎng)液,每孔加入200μl裂解液裂解細(xì)胞。裂解后4℃12 000r/min離心5min,收集上清液。加100μlATP工作液至檢測(cè)孔內(nèi),室溫靜置5min。在檢測(cè)孔內(nèi)加入20μl樣品或標(biāo)準(zhǔn)品,迅速混勻,2s后用化學(xué)發(fā)光儀測(cè)定。
1.2.5 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞活性氧 (reactive oxygen species,ROS)水平 使用0.25%胰酶消化細(xì)胞,終止消化后,1 500r/min離心5min收集細(xì)胞,去上清液。用PBS洗滌細(xì)胞2次,1 500r/min離心5min。根據(jù)DCFH-DA細(xì)胞ROS檢測(cè)試劑盒的說(shuō)明進(jìn)行操作:加入1ml DCFH;37℃培養(yǎng)箱孵育20min,每隔3min混勻1次;用無(wú)血清培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞3次。隨后用流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。
1.2.6 TUNEL法檢測(cè)細(xì)胞凋亡 將爬有細(xì)胞的玻片用4%多聚甲醛溶液室溫固定25min,用PBS洗滌3次,每次5min。隨后,細(xì)胞爬片浸入0.1%TritonX-100溶液中10min進(jìn)行冰上操作,PBS浸洗2次,每次5min。然后加入50μl TUNEL反應(yīng)混合液,37℃避光孵育60min。隨后用PBS洗滌3次,每次5min。加入DAPI避光孵育5min,PBST洗滌4次,每次5min。使用抗熒光淬滅封片液封片,熒光顯微鏡觀察及采集圖像。
1.2.7 實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測(cè) 根據(jù)RNA抽提試劑盒說(shuō)明書(shū)提取細(xì)胞RNA,應(yīng)用微量分光光度計(jì)測(cè)定波長(zhǎng)為260、280nm的光密度值,計(jì)算RNA的純度和濃度。將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。目的基因Bmal1、去乙酰化酶sirtuin 1(Sirt1)以及管家基因GAPDH的引物序列由杭州擎科生物公司合成。PCR反應(yīng)條件為95°C預(yù)變性10min;95℃ 變性 30s,60°C 退火延伸 30s,共 40個(gè)循環(huán)。2-ΔΔCt法計(jì)算Bmal1、Sirt1基因、管家基因 GAPDH mRNA表達(dá)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用 SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件。測(cè)得計(jì)量資料采用±se表 示,多組間比較用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 Bmal1沉默后對(duì)ATP生成的影響 見(jiàn)圖1。
圖1 Bmal1沉默后對(duì)ATP生成的影響(與NC組比較,**P<0.01;與 NC+siRNA 組比較,△△P<0.01;與高糖 +siRNA組比較,▲▲P<0.01)
由圖1可見(jiàn),與NC+siRNA組比較,NC+Bmal1-/-組ATP 含量下降(P<0.01);與 NC 組比較,高糖組 ATP 含量明顯下降(P<0.01);與高糖+siRNA 組比較,高糖+Bmal1-/-組 ATP 明顯下降(P<0.01)。
2.2 Bmal1沉默后對(duì)ROS生成的影響 見(jiàn)圖2。
圖2 Bmal1沉默后對(duì)ROS生成的影響(與NC組比較,**P<0.01;與NC+siRNA組比較,△△P<0.01;與高糖+siRNA組比較,▲▲P<0.01)
由圖2可見(jiàn),與NC+siRNA組比較,NC+Bmal1-/-組ROS 水平升高,(P<0.01);與 NC 組比較,高糖組 ROS生成增加(P<0.01);與高糖+siRNA組比較,高糖+Bmal1-/-組 ROS 增加更明顯(P<0.01)。
2.3 Bmal1基因?qū)irt1mRNA表達(dá)的影響 見(jiàn)圖3。
由圖3可見(jiàn),與NC+siRNA組比較,NC+Bmal1-/-組Sirt1 mRNA 表達(dá)下降(P<0.01);與 NC 組比較,高糖組Sirt1 mRNA表達(dá)下降(P<0.01);與高糖+siRNA 組相比,高糖+Bmal1-/-組Sirt1 mRNA表達(dá)有下降趨勢(shì),下降幅度為 20.7%,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P >0.05)。
2.4 Bmal1基因?qū)?xì)胞凋亡的影響 NC組、高糖組、NC+siRNA組、NC+Bmal1-/-組、高糖+siRNA組、高糖+Bmal1-/-組 的 凋 亡 率 分 別 為 4.31%、10.26%、4.86% 、6.72%、13.21%、25.36%。與 NC+siRNA 組比較,NC+Bmal1-/-組凋亡率無(wú)明顯變化(P >0.05);與 NC 組比較,高糖組細(xì)胞凋亡增加(P<0.05);與高糖+siRNA組比較,高糖+Bmal1-/-組細(xì)胞凋亡率明顯增加(P<0.01),見(jiàn)圖 4(插頁(yè))。
圖3 Bmal1基因?qū)irt1mRNA表達(dá)的影響(與NC組比較,**P<0.01;與 NC+siRNA 組比較,△△P<0.01)
糖尿病嚴(yán)重危害人類(lèi)健康,β細(xì)胞功能障礙在糖尿病發(fā)病中起關(guān)鍵作用,其主要表現(xiàn)為胰島素分泌不足和分泌節(jié)律異常。研究表明,胰島素分泌節(jié)律主要由生物鐘調(diào)控[14-16],因此,生物鐘可能通過(guò)調(diào)控胰島β細(xì)胞功能影響糖尿病的發(fā)生、發(fā)展。有關(guān)胰島β細(xì)胞生物鐘基因的研究數(shù)據(jù)較少。有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn),特異性敲除胰島β細(xì)胞Bmal1基因的小鼠比Bmal1-/-小鼠的胰島素分泌下降更明顯,盡管Bmal1-/-β細(xì)胞大小和增殖不受影響,其葡萄糖刺激的胰島素分泌下降近60%[10]。這些資料提示生物鐘基因Bmal1參與糖尿病發(fā)病,對(duì)維持β細(xì)胞正常功能有重要作用。
細(xì)胞凋亡在胰島β功能障礙起重要作用[11-13]。受凋亡信號(hào)刺激時(shí),內(nèi)源性ROS過(guò)量生成、細(xì)胞色素C及凋亡誘導(dǎo)因子等釋放入細(xì)胞質(zhì),激活半胱氨酸蛋白酶9(Caspase9),導(dǎo)致細(xì)胞DNA修復(fù)功能損傷、核酸內(nèi)切酶活化,最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[17]。此外,在糖尿病人群以及動(dòng)物模型均發(fā)現(xiàn)氧化應(yīng)激增強(qiáng)[18-19]。但生物鐘基因在胰島β細(xì)胞凋亡過(guò)程中的機(jī)制尚不明確。本研究對(duì)不同干預(yù)因素處理后的β細(xì)胞凋亡情況進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn),高糖環(huán)境下,β細(xì)胞凋亡增加,這種作用在Bmal1基因沉默后更明顯。此外,結(jié)果顯示,Bmal1基因沉默后,ATP含量下降,ROS水平升高;在高糖環(huán)境下,Bmal1基因沉默組ATP水平明顯下降,ROS顯著增加。ROS氧化活性極強(qiáng),其增加導(dǎo)致細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷和代謝障礙。ATP是生物體各項(xiàng)生命活動(dòng)最直接的能量來(lái)源。故ROS增加,ATP減少可導(dǎo)致相應(yīng)器官組織功能障礙。有文獻(xiàn)報(bào)道,在Bmal1-/-小鼠的臟器如腎臟、心臟和脾臟等,均發(fā)現(xiàn)ROS明顯增加,導(dǎo)致相應(yīng)組織細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng)增強(qiáng),引起細(xì)胞功能障礙[20]。由于胰島β細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶基因表達(dá)水平較低,如超氧化物歧化酶含量?jī)H為肝臟的30%,過(guò)氧化氫酶及谷胱甘肽過(guò)氧化物酶僅為肝臟的5%[21],因此,β細(xì)胞清除ROS和抗氧化能力較弱,對(duì)氧化應(yīng)激損傷更敏感。Lee等[22-23]的研究顯示,Bmal1基因缺失使氧化應(yīng)激增強(qiáng),導(dǎo)致β細(xì)胞功能障礙,可能的機(jī)制是Bmal1基因缺失,導(dǎo)致線粒體解偶聯(lián)蛋白(uncoupling protein2,UCP2)上調(diào)和抗氧化反應(yīng)基因表達(dá)改變(如調(diào)控抗氧化反應(yīng)的關(guān)鍵因子核因子E2相關(guān)因子2及其調(diào)控的靶基因如Sestrin2,過(guò)氧化還原酶3,谷氨酸半胱氨酸連接酶催化亞基和谷氨酸半胱氨酸連接酶修飾亞基下降),最終導(dǎo)致β細(xì)胞功能衰竭。這些資料提示Bmal1基因參與維持胰島β細(xì)胞的正常功能。
本研究發(fā)現(xiàn),Bmal1基因沉默后,Sirt1基因表達(dá)下降;在高糖環(huán)境下,Sirt1基因表達(dá)下降;Bmal1基因沉默組更明顯,下降幅度為20.7%。去乙?;窼irt1在細(xì)胞凋亡中起重要的調(diào)節(jié)作用,其主要通過(guò)組蛋白/非組蛋白去乙?;饔糜绊懟蜣D(zhuǎn)錄,發(fā)揮抗氧化應(yīng)激作用,減少細(xì)胞凋亡,增加細(xì)胞存活率。UCP2可使線粒體氧化磷酸化解偶聯(lián),ATP合成減少,影響ATP敏感的K+通道開(kāi)放,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)Ca2+下降,抑制胞吐作用,減少胰島素的釋放;Sirt1可通過(guò)抑制UCP2間接促進(jìn)胰島素分泌[24]。
本研究結(jié)果初步提示生物鐘基因Bmal1可通過(guò)調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激信號(hào)通路影響胰島β細(xì)胞功能和凋亡。國(guó)內(nèi)外對(duì)胰島β細(xì)胞功能障礙進(jìn)行了長(zhǎng)期深入研究,但目前尚無(wú)有效保護(hù)和恢復(fù)胰島β細(xì)胞功能的治療措施。因此,進(jìn)一步研究胰島β細(xì)胞功能障礙的發(fā)病機(jī)制及其信號(hào)傳導(dǎo)通路,對(duì)尋找有效的治療靶點(diǎn)具有重要意義和潛在的臨床價(jià)值。