張新，陳成聰，杜琴，李喜旺，孫曉玲*

茶尺蠖絲氨酸蛋白酶基因的克隆、時空表達(dá)及對饑餓的表達(dá)響應(yīng)

張新1,2，陳成聰3，杜琴1,2，李喜旺1,2，孫曉玲1,2*

1. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院茶葉研究所，浙江 杭州 310008；2. 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部茶樹生物學(xué)與資源利用重點實驗室，浙江 杭州 310008；3. 國家茶葉質(zhì)量安全工程技術(shù)研究中心，福建 泉州 362400

絲氨酸蛋白酶是鱗翅目昆蟲消化系統(tǒng)中一類重要的蛋白酶。本研究從茶尺蠖（）中克隆到一條絲氨酸蛋白酶基因并分析了其結(jié)構(gòu)特征和表達(dá)特性?；蛐蛄腥L858?bp，編碼285個氨基酸，預(yù)測蛋白分子量為29.53?kDa，等電點為5.44。經(jīng)與其他絲氨酸蛋白酶比對，EoSP1含有保守的絲氨酸蛋白酶催化位點（H95，A161和S328）及蛋白互作結(jié)構(gòu)域，與蓓帶夜蛾（）中SPs親緣關(guān)系較近。進(jìn)一步獲得了與EoSP1-GST融合蛋白大小接近的目的蛋白。qRT-PCR分析發(fā)現(xiàn)，在幼蟲期的表達(dá)顯著高于成蟲、蛹和卵期，并在幼蟲中腸中特異性表達(dá)；饑餓處理后表達(dá)下降，恢復(fù)飼喂后表達(dá)量接近對照組。以上結(jié)果為茶尺蠖消化酶功能解析及抗蟲新靶點的篩選提供了依據(jù)。

茶尺蠖；絲氨酸蛋白酶；克?。槐磉_(dá)分析

絲氨酸蛋白酶（Serine protease，SP）是一類以絲氨酸為活性中心的蛋白水解酶家族，催化結(jié)構(gòu)域由組氨酸（His）、天冬氨酸（Asp）和絲氨酸（Ser）3個氨基酸殘基組成[1-2]。根據(jù)蛋白結(jié)構(gòu)域的不同，SP可分為單結(jié)構(gòu)域和多結(jié)構(gòu)域蛋白，單結(jié)構(gòu)域蛋白主要發(fā)揮蛋白消化功能，而多結(jié)構(gòu)域蛋白常作用于各種生物過程中的分子識別[3-4]。根據(jù)酶切位點的不同，SP又可主要分為胰蛋白酶（Trypsin）、胰凝乳蛋白酶（Chymotrypsin）、彈性蛋白酶（Elastase）及其他酶類等[5-6]。其中，胰蛋白酶除包含His-Asp-Ser保守活性三聯(lián)體外，在蛋白序列的N端還含有保守氨基酸殘基IVGG，可水解多肽鏈中賴氨酸和精氨酸殘基中的羧基側(cè)，是昆蟲體內(nèi)含量最豐富的消化酶[7]；胰凝乳蛋白酶豐度僅次于胰蛋白酶，包含催化三聯(lián)體及胰凝乳蛋白酶所特有的結(jié)合口袋氨基酸殘基，可專一切割酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸等芳香族氨基酸形成的羧基端肽鍵[5]。目前，在動物、植物和微生物等中均發(fā)現(xiàn)SP參與消化、先天免疫和發(fā)育等多種生理活動[2,8-9]。

SP是鱗翅目昆蟲消化系統(tǒng)中最重要的消化酶，占總消化活性的95%以上[2,10-12]，由基因編碼。目前，的cDNA序列已經(jīng)從煙草天蛾（）、棉鈴蟲（）、斜紋夜蛾（）、小菜蛾（）、家蠶（）和美國白蛾（）等多種鱗翅目昆蟲中克隆獲得，并發(fā)現(xiàn)它們編碼的蛋白主要為胰蛋白酶和胰凝乳蛋白酶[13-14]。大量研究結(jié)果表明，在鱗翅目昆蟲體內(nèi)具有組織表達(dá)特異性，其編碼的蛋白參與昆蟲對營養(yǎng)物質(zhì)的消化與吸收、免疫以及對饑餓的耐受性等多個生理過程。例如，煙草夜蛾、斜紋夜蛾和家蠶的基因在中腸中特異表達(dá)，饑餓脅迫后會引起部分基因表達(dá)下調(diào)[15-17]；美國白蛾在取食量較大的時期表達(dá)量顯著高于取食量較小的時期，并且取食喜樹后的表達(dá)量高于其他寄主植物[18]；家蠶在病原微生物BmNPV入侵過程中參與免疫應(yīng)答[19-20]；東方粘蟲（）和主要表達(dá)于中腸，饑餓脅迫后二者表達(dá)均受抑制，但受蛻皮激素誘導(dǎo)上調(diào)，則主要響應(yīng)蘇云金芽孢桿菌的刺激[21]。有研究發(fā)現(xiàn)，沉默的大豆二化螟（）幼蟲體重增長顯著變慢，死亡率顯著升高[22]。類似地，植物源絲氨酸蛋白酶抑制劑通過與昆蟲體內(nèi)的SP發(fā)生反應(yīng)使其失活，從而顯著阻滯幼蟲的生長發(fā)育，甚至降低成蟲的繁殖能力[12, 23]。因此，作為潛在的防控靶標(biāo)基因已經(jīng)引起科研工作者的廣泛關(guān)注。

茶尺蠖（）屬鱗翅目（Lepidoptera）尺蠖蛾科（Geometridae），是危害茶樹（）的主要害蟲之一，主要以幼蟲取食茶樹葉片，發(fā)生嚴(yán)重時可造成樹勢衰敗及茶葉絕收[24-25]。目前，對其有效的防治仍依賴于化學(xué)農(nóng)藥。然而，化學(xué)農(nóng)藥的大量使用導(dǎo)致了農(nóng)藥殘留、害蟲抗藥性以及次期性害蟲大發(fā)生等諸多問題[26]。因此，開發(fā)茶尺蠖的綠色防控技術(shù)已成為茶樹植保工作的迫切需求。通過對茶尺蠖體內(nèi)重要消化酶的研究將有助于理解茶尺蠖的營養(yǎng)利用機(jī)制，可以為茶尺蠖綠色防控技術(shù)的開發(fā)提供理論基礎(chǔ)。遺憾的是，目前尚無茶尺蠖幼蟲基因的相關(guān)報道。鑒于此，本研究從茶尺蠖幼蟲的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中獲得基因片段的轉(zhuǎn)錄本序列，利用RACE技術(shù)對其全長進(jìn)行克隆，并利用原核表達(dá)方法確定克隆到的基因能夠編碼大小一致的蛋白，繼而采用熒光定量PCR（qRT-PCR）技術(shù)對在茶尺蠖不同發(fā)育時期、不同組織部位，以及饑餓和回補(bǔ)食物后的表達(dá)量變化情況進(jìn)行了研究，擬為該基因的利用提供理論基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 供試?yán)ハx

供試的茶尺蠖幼蟲采自浙江省杭州市西湖區(qū)中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院茶葉研究所試驗茶園（N 30°10'，E 120°5'），以新鮮茶樹嫩梢飼養(yǎng)于人工氣候箱內(nèi)[(26±1)℃，(70±5)%，14L∶10D]。繁殖兩代后用于試驗。各處理方法如下：

1.1.1 不同發(fā)育時期

分別收集產(chǎn)卵后1?d的卵（200粒）、孵化第2天的1齡幼蟲（200頭）、蛻皮第2天的2齡幼蟲（50頭）；蛻皮第2天的3齡幼蟲（5頭）；蛻皮第2天的4、5齡幼蟲（1頭）、化蛹第2天的雌蛹和雄蛹（1個）、羽化第2天的雌、雄成蟲（1頭），液氮冷凍后于–80℃冰箱保存。每個樣品8個生物學(xué)重復(fù)。

1.1.2 不同組織部位

實體顯微鏡（OLIMPUS）下解剖茶尺蠖4齡幼蟲，分別采集80頭茶尺蠖幼蟲的中腸、唾液腺、脂肪體、表皮和血淋巴，液氮冷凍后于–80℃冰箱保存?zhèn)溆?。每類組織樣品取8個生物學(xué)重復(fù)。

1.1.3 饑餓處理

中腸組織：對照組為飼喂茶樹葉片的4齡茶尺蠖幼蟲，饑餓處理組同為4齡茶尺蠖幼蟲但不飼葉片，饑餓24?h。饑餓24?h后再飼喂茶樹葉片24?h的4齡幼蟲為先饑餓-再飼喂組。每個處理設(shè)3個生物學(xué)重復(fù)。

蟲體：對照組為飼喂茶樹葉片的4齡茶尺蠖幼蟲，饑餓處理組同為4齡茶尺蠖幼蟲但不飼以葉片。分別于處理后的3、6、12、24?h和48?h后取樣；饑餓24?h后再飼喂茶樹葉片24?h的4齡幼蟲為先饑餓-再飼喂組。每個處理設(shè)8個生物學(xué)重復(fù)。

1.2 RNA提取

參照Promega總RNA提取試劑盒說明書，對樣品進(jìn)行總RNA提取。利用瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA質(zhì)量，并使用Nano Drop ND-2000微量核酸蛋白測定儀（Thermo，美國）測定濃度。參照Prime Script RT Reagent（Takara，日本）反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書，取1?μg總RNA進(jìn)行cDNA合成，用于后續(xù)基因克隆和表達(dá)分析。

1.3 EoSP1基因的克隆

從本實驗室茶尺蠖幼蟲轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中得到1個SP基因片段的轉(zhuǎn)錄本序列，根據(jù)此序列分別設(shè)計特異性RACE引物（表1），以茶尺蠖幼蟲cDNA為模板，采用高保真酶PrimeSTAR?Max DNA Polymerase（TAKARA，大連）進(jìn)行PCR擴(kuò)增，獲取基因全序列。PCR反應(yīng)體系為：cDNA 1.0?μL、Max 25?μL、上下游引物各1.5?μL、ddH2O 21?μL。反應(yīng)程序為：94℃預(yù)變性3?min；98℃變性10?s，55℃退火30?s，72℃延伸30?s，35個循環(huán)；72℃延伸10?min，4℃保存。采用1%瓊脂糖凝膠檢測RCR產(chǎn)物，將單一目標(biāo)條帶切膠回收，使用pClone007 Blunt Vector Kit（TSINGKE，北京）用于目的片段與克隆載體的構(gòu)建，轉(zhuǎn)化DH5α大腸桿菌，挑選單克隆進(jìn)行菌液PCR，陽性克隆送測，引物合成和測序均由北京擎科生物科技有限公司（杭州）完成。

1.4 生物信息學(xué)分析

通過Softberry在線軟件（http://softberry.com）的FGENESH功能對全長進(jìn)行開放閱讀框（Open reading frame，ORF）及氨基酸序列分析；使用ProtParam（https://web.expasy.org/protparam）在線預(yù)測EoSP1的氨基酸組成、分子量和等電點特征；通過PSIPRED（http://bioinf.cs.ucl.ac.uk/introduction）分析EoSP1的蛋白結(jié)構(gòu)；在NCBI（https://www. ncbi.nlm.nih.gov）數(shù)據(jù)庫中下載已登錄其他昆蟲的絲氨酸蛋白酶氨基酸序列，采用MEGA5.0軟件中的鄰接法（Neighbor-Joining tree）構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹。

1.5 原核表達(dá)載體構(gòu)建及蛋白純化

利用EoSP1-pGEX-F和EoSP1-pGEX-R一對引物對（表1）擴(kuò)增獲得包含BamH Ⅰ和Sma Ⅰ多克隆酶切位點的全長序列，通過酶切連接到表達(dá)載體上，連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞，篩選陽性克隆。將經(jīng)測序驗證的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21（Rosetta）菌株中，挑選陽性克隆接種于液體LB培養(yǎng)基中，培養(yǎng)至OD值達(dá)到0.4~0.6，加入終濃度1?mmol·L-1IPTG誘導(dǎo)重組質(zhì)粒表達(dá)，于37℃，200?r·min-1繼續(xù)培養(yǎng)2?h，收集菌體。分別收集誘導(dǎo)前后各1?mL菌液，將菌體重懸于100?μL SDS上樣緩沖液中，煮沸5?min變性，室溫12?000?r·min-1離心5?min后，取25?μL上清液進(jìn)行SDS-PAGE（10%濃度）檢測蛋白表達(dá)情況。

將上述條件擴(kuò)大培養(yǎng)至100?mL LB菌液，將誘導(dǎo)后的菌液于4℃下，轉(zhuǎn)速12?000?r·min-1離心10?min收集至50?mL離心管中，加入15?mL 0.1?mol·L-1的Tris-HCl（pH=8.0）緩沖液重懸菌體。對重懸菌體進(jìn)行超聲破碎（超聲5?s，停5?s，共15?min），結(jié)束后于4℃，12?000?r·min-1離心30?min。參考GST標(biāo)簽蛋白純化試劑盒（GST-tag Protein Purification Kit，碧云天，上海）進(jìn)行蛋白純化，利用梯度透析法對純化后的蛋白進(jìn)行復(fù)性，對復(fù)性后的重組蛋白進(jìn)行SDS-PAGE鑒定。

1.6 定量分析

1.7 數(shù)據(jù)分析

使用SPSS Statistics 20對結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計分析。不同發(fā)育時期、不同組織部位以及饑餓后再飼喂樣品中相對表達(dá)量的差異顯著性采用單因素方差分析法（Tukey’s多重檢驗）進(jìn)行比較；饑餓與對照組茶尺蠖樣品中相對表達(dá)量的差異顯著性采用Student'stest進(jìn)行分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 EoSP1全長克隆及蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測

基因ORF全長為858?bp，編碼285個氨基酸殘基（圖1）；利用Protparam對EoSP1氨基酸序列的理化性質(zhì)進(jìn)行在線預(yù)測，結(jié)果表明，EoSP1推導(dǎo)氨基酸殘基數(shù)為285，分子量為29.53?kDa，理論等電點pI為5.44，蛋白質(zhì)不穩(wěn)定指數(shù)為36.98，脂溶指數(shù)為91.68，平均疏水性指數(shù)為0.214。PSIPRED Server預(yù)測結(jié)果表明，EoSP1由6個α螺旋、16個β折疊和一些無規(guī)則卷曲構(gòu)成。此外，發(fā)現(xiàn)EoSP1的N末端疏水區(qū)包含從第1位開始的18個氨基酸組成的信號肽，預(yù)測酶切位點為18、19位，表明EoSP1是分泌型蛋白（圖2）。

表1 引物信息

圖1 EoSP1核苷酸序列及其預(yù)測氨基酸序列

2.2 EoSP1蛋白結(jié)構(gòu)及進(jìn)化樹分析

將EoSP1同其他已知昆蟲的絲氨酸蛋白酶進(jìn)行蛋白序列比對，發(fā)現(xiàn)EoSP1含有絲氨酸蛋白酶的3個保守催化活性位點（H95，A161，S328）?；罨嚓P(guān)元件包含RIVGG，TAAHC和GDSGSAL序列，以及3對二硫鍵的半胱氨酸殘基等也是保守存在于EoSP1中（圖3）。進(jìn)一步保守結(jié)構(gòu)域分析發(fā)現(xiàn)EoSP1屬于類胰蛋白酶類（Trypsin-like）的絲氨酸蛋白酶。

與其他已知昆蟲絲氨酸蛋白酶序列進(jìn)行進(jìn)化樹分析，結(jié)果表明，EoSP1與蓓帶夜蛾和小地老虎（）的絲氨酸蛋白酶家族成員親緣關(guān)系較近，而與大紅斑蝶（）親緣關(guān)系最遠(yuǎn)（圖4）。

2.3 EoSP1原核表達(dá)及純化

在37℃，0.1?mmol·L-1IPTG誘導(dǎo)條件下促使融合載體表達(dá)。經(jīng)SDS-PAGE檢測發(fā)現(xiàn)，與對照相比，誘導(dǎo)后泳道中有1條單一明顯、分子質(zhì)量略高于50?kDa的蛋白條帶（圖5，泳道2）。EoSP1蛋白分子量預(yù)測為29.53?kDa，融合27?kDa GST標(biāo)簽后約為57?kDa，誘導(dǎo)條帶大小接近重組蛋白的預(yù)測分子量。超聲后發(fā)現(xiàn)EoSP1-GST重組蛋白以包涵體形式存在（圖5，泳道3—4），通過對沉淀中的包涵體進(jìn)行蛋白質(zhì)變性、復(fù)性，最終純化到目的蛋白（圖5，泳道5）。由此證明，所編碼的蛋白與EoSP1蛋白的預(yù)測分子量相當(dāng)。

圖2 EoSP1蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測

2.4 EoSP1在茶尺蠖不同發(fā)育時期的表達(dá)特征

在整個茶尺蠖生活史中，在1~4齡茶尺蠖幼蟲中的相對表達(dá)量均顯著高于5齡幼蟲、蛹期、成蟲期和卵期，2齡幼蟲的相對表達(dá)量是卵期的2?600倍以上；在幼蟲期，1~4齡幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量顯著高于5齡；在不同蟲態(tài)中，預(yù)蛹中的表達(dá)量顯著高于蛹期、成蟲和卵等其他蟲態(tài)（圖6）。

2.5 EoSP1在不同組織中的表達(dá)特征

在中腸、脂肪體、唾液腺和血淋巴中均有表達(dá)，在中腸中的相對表達(dá)量顯著高于其他4個組織；而在表皮、脂肪體、唾液腺和血淋巴中的表達(dá)量間不存在顯著差異（圖7）。

2.6 饑餓脅迫下EoSP1的表達(dá)響應(yīng)

與對照相比，饑餓24?h幼蟲中腸內(nèi)的相對表達(dá)顯著降低，恢復(fù)飼喂后中腸內(nèi)的相對表達(dá)量與對照之間不存在顯著差異（圖8-A）。

饑餓12?h，處理組幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量顯著高于對照；饑餓24?h，處理組幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量是對照組的2.7倍；饑餓48?h，饑餓處理的幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量是對照的2.3倍，恢復(fù)飼喂組茶尺蠖幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量與對照組幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量基本相當(dāng)，但是顯著低于饑餓處理48?h茶尺蠖幼蟲體內(nèi)的相對表達(dá)量（圖8-B）。

注：ACR15986.2：蓓帶夜蛾；AFM28249.1：煙草夜蛾；AAX39409.1：家蠶；AAV33653.1：斑實夜蛾

圖4 EoSP1與其他昆蟲SPs系統(tǒng)進(jìn)化樹分析

注：M：蛋白分子量標(biāo)記；1：對照；2：IPTG誘導(dǎo)后；3：超聲破碎上清；4：超聲破碎沉淀；5：純化目的蛋白

Note: M: Protein Marker. 1: Control. 2: Induced by IPTG. 3: Supernatant after sonification. 4: Sediment after sonification. 5: Purified protein

注：M：蛋白分子量標(biāo)記；1：對照；2：IPTG 誘導(dǎo)后；3：超聲破碎上清；4：超聲破碎沉淀；5：純化目的蛋白

注：數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤，單因素方差分析（Tukey’s多重檢驗），不同大寫字母代表EoSP1的相對表達(dá)量在茶尺蠖生活史的不同時期具有顯著性差異（P<0.05）；不同小寫字母代表EoSP1的相對表達(dá)量在幼蟲不同齡期（虛線左側(cè)）或不同蟲態(tài)之間（虛線右側(cè)）具有顯著性差異（P<0.05）

注：不同小寫字母表示不同處理之間差異具有顯著性（Tukey’s多重檢驗，P<0.05）

注：A：中腸；B：蟲體。Ⅰ：對照；Ⅱ：饑餓24?h；Ⅲ：饑餓24?再飼喂24?h。*表示饑餓處理前后間差異顯著（Student’s t檢驗，P<0.05）；柱上字母表示不同處理之間差異具有顯著性（Tukey’s多重檢驗，P <0.05）

3 討論

絲氨酸蛋白酶作為鱗翅目昆蟲消化系統(tǒng)中最重要的消化水解酶，不僅參與食物中蛋白質(zhì)的水解和其他蛋白質(zhì)的合成，還與昆蟲生長、免疫、蛻皮和變態(tài)等生長發(fā)育過程密切相關(guān)[1]。例如，煙草天蛾卵中含有的多種與黑化和抗菌肽合成相關(guān)的絲氨酸蛋白酶參與抵御細(xì)菌感染，構(gòu)成了煙草天蛾卵的先天免疫系統(tǒng)[27]。近年來，還有研究發(fā)現(xiàn)昆蟲對產(chǎn)生抗性可能依賴于昆蟲腸道中蛋白酶水平或類型的變化[2]。目前，科研工作者已從多種鱗翅目昆蟲中發(fā)現(xiàn)了絲氨酸蛋白酶家族的存在，如甜菜夜蛾SeCT34、家蠶BmSP25和菜青蟲PrCT1等，通過對該類蛋白酶的結(jié)構(gòu)和功能分析，鑒定到SP家族的保守結(jié)構(gòu)域和催化位點[18,20,22,28-30]。本文從茶尺蠖幼蟲體內(nèi)克隆到1條絲氨酸蛋白酶的cDNA全長序列（圖1），并發(fā)現(xiàn)所編碼的氨基酸N端含有1個由18個氨基酸殘基組成的信號肽（圖2），這與已報道的BmSP25，PrCT1等絲氨酸蛋白酶是分泌型蛋白的結(jié)構(gòu)一致[28]。通過與蓓帶夜蛾等已知昆蟲絲氨酸蛋白酶的氨基酸序列比對，鑒定到EoSP1存在高度保守的H95-A161-S328催化三聯(lián)活性位點，以及3對半胱氨酸殘基（圖3）。此外，EoSP1還包含胰蛋白酶蛋白N端保守氨基酸殘基IVGG，表明其屬于絲氨酸蛋白酶家族中的類胰蛋白酶亞族（圖3）。系統(tǒng)進(jìn)化樹與序列比對結(jié)果一致，茶尺蠖EoSP1與蓓帶夜蛾和小地老虎的SPs同源性較高（圖4）。在原核系統(tǒng)中誘導(dǎo)表達(dá)了EoSP1-GST重組蛋白，其大小與預(yù)測的EoSP1蛋白分子量（約29.53?kDa）一致，表明已克隆獲得的可以正常翻譯和表達(dá)（圖5）。綜上所述，本文克隆得到的是編碼絲氨酸蛋白酶家族基因成員之一，所編碼的絲氨酸蛋白酶屬于類胰蛋白酶亞族，為分泌型蛋白。

已有研究結(jié)果表明，絲氨酸蛋白酶在鱗翅目昆蟲不同發(fā)育階段和不同組織中的表達(dá)與其生物學(xué)功能緊密相關(guān)[10,16,31]。本研究發(fā)現(xiàn)，在茶尺蠖幼蟲中腸中的表達(dá)量顯著高于脂肪體、血淋巴和唾液腺等其他組織；并且，在1~4齡幼蟲階段的表達(dá)量最高，在5齡幼蟲、預(yù)蛹和蛹期表達(dá)量顯著下降，在成蟲期及卵期幾乎不表達(dá)（圖6）。這一研究結(jié)果表明，所編碼的蛋白酶參與了茶尺蠖幼蟲對植物蛋白質(zhì)的水解、消化和吸收過程，推測其在調(diào)控茶尺蠖的生長、發(fā)育和繁殖過程中具有重要作用。類似的研究結(jié)果在美國白蛾、小菜蛾絲氨酸中也有發(fā)現(xiàn)，但是二者高齡幼蟲的表達(dá)量均顯著高于低齡幼蟲[18,32]，與之不同的是，茶尺蠖5齡幼蟲進(jìn)入暴食期，但是的相對表達(dá)量卻顯著低于1~4齡幼蟲（圖6）。究其原因，這可能與茶尺蠖幼蟲的取食特點和不同老嫩程度葉片中的蛋白或者其他代謝物含量改變相關(guān)[33]。茶尺蠖5齡幼蟲進(jìn)入暴食期，主要以茶樹老葉為食。有研究表明，相較于嫩葉或成熟葉，茶樹老葉中蛋白含量明顯下降[34]。因此，5齡幼蟲水解和消化蛋白的需求亦會降低，相應(yīng)地，主要負(fù)責(zé)消化蛋白的絲氨酸蛋白酶的表達(dá)量也下降。此外，老葉與嫩葉之間生化成分的差異也可能會影響茶尺蠖幼蟲體內(nèi)絲氨酸蛋白酶的表達(dá)[35]。

如前所述，絲氨酸蛋白酶在鱗翅目昆蟲對植物蛋白質(zhì)的水解和吸收過程中發(fā)揮著重要作用[19,32]。基于此，眾多科研工作者對饑餓處理后鱗翅目昆蟲中腸內(nèi)基因的表達(dá)響應(yīng)特征進(jìn)行了研究，并發(fā)現(xiàn)饑餓昆蟲中腸中基因的相對表達(dá)量顯著低于正常取食的昆蟲；重新飼喂后，基因的表達(dá)量在有的昆蟲中可以恢復(fù)至正常取食的幼蟲水平，但也在個別昆蟲則表現(xiàn)出不可逆的抑制作用[15,16,31]。例如，饑餓處理后，煙草天蛾絲氨酸蛋白酶的相對表達(dá)量顯著下調(diào)，而同家族的和的表達(dá)量則不受影響，重新飼喂后，的表達(dá)量未恢復(fù)至正常取食的幼蟲水平[15]；斜紋夜蛾絲氨酸蛋白酶Slctlp1和Slctlp2的轉(zhuǎn)錄水平和蛋白水平在饑餓處理后皆顯著下調(diào)，但在重新飼喂后，Slctlp2在轉(zhuǎn)錄和蛋白水平都恢復(fù)至正常取食的幼蟲水平，而Slctlp1只在蛋白水平有所恢復(fù)[16,31]。本研究中，與對照相比，饑餓處理后茶尺蠖幼蟲中腸內(nèi)的相對表達(dá)量顯著下降，恢復(fù)飼喂后中腸內(nèi)的相對表達(dá)量與對照幼蟲的表達(dá)量基本一致（圖8），這與斜紋夜蛾的研究結(jié)果相似。這一結(jié)果進(jìn)一步表明，的表達(dá)與茶尺蠖的進(jìn)食量密切相關(guān)，從而推測其在茶尺蠖中腸中發(fā)揮著重要的消化作用。有趣的是，饑餓處理誘導(dǎo)了茶尺蠖幼蟲整個蟲體中相對表達(dá)量顯著上調(diào)，并且恢復(fù)飼喂后茶尺蠖幼蟲整體的表達(dá)量與對照組幼蟲體內(nèi)的表達(dá)量基本相當(dāng)。這說明除了參與茶尺蠖幼蟲對植物蛋白質(zhì)的水解、消化和吸收以外，可能還參與蟲體免疫調(diào)節(jié)等其他重要的生理過程。在今后的研究中，我們將利用RNA干擾技術(shù)對的生理功能進(jìn)行研究。

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Cloning and Expression Analysis of Serine Proteasein Tea Geometrid () and Its Response to Starvation

ZHANG Xin1,2, Chen Chengcong3, DU Qin1,2, LI Xiwang1,2, SUN Xiaoling1,2*

1. Tea Research Institute of the Chinese Academy of Agricultural Sciences, Hangzhou 310008, China; 2. Key Laboratory of Tea Biology and Resources Utilization, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Hangzhou 310008, China; 3. National Research Center of Engineering and Technology of Tea Quality and Safety, Quanzhou 362400, China

Serine protease plays an important role in the digestion process of Lepidoptera insects. In this study, we cloned a serine protease encoding genefromand analyzed its basic characteristics and expression patterns. The coding sequence ofis 858?bp, encoding 285 amino acid residues with deduced molecular weight of 29.53?kDa and isoelectric point of 5.44. Compared with other serine proteases, EoSP1 contains conserved serine protease catalytic sites (H95, A161and S328) and protein interaction domains, and shows the closest relationship with SPs from. Further, EoSP1-GST fusion protein similar to the predicted size was purified fromcells. qRT-PCR analysis showed that the expression level ofwas much higher in larvae than that in adults, pupae and eggs, and expressed in midgut of larvae specifically.was down-regulated by starvation treatment, and the expression level was change back to that of control group after re-feeding. The above results provide a basis for the function analysis of digestive enzyme and screening of new insect-resistance targets in.

, serine protease, cloning, expression pattern

S435.711；Q52

A

1000-369X(2019)06-669-12

2019-10-08

2019-10-23

國家自然科學(xué)基金項目（31272053）、中央級公益性科研院所基本科研業(yè)務(wù)費專項（1610212017017、1610212018004）國家茶葉質(zhì)量安全工程技術(shù)中心開放課題基金項目（2018NTQS0102）

張新，助理研究員，主要從事茶樹抗蟲機(jī)理研究，xinzhang@tricaas.com。

xlsun1974@163.com