摘要:采用高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定馬鈴薯2個(gè)不同薯形品種會(huì)-2和PB06成熟塊莖中植物激素赤霉素(GA3)及脫落酸(ABA)的含量,發(fā)現(xiàn)橢圓薯形品種會(huì)-2成熟塊莖中GA3含量高、ABA含量低,相反圓薯形品種PB06塊莖中GA3含量低、ABA含量高。由此推測(cè),植物激素ABA和GA3可能參與調(diào)控馬鈴薯塊莖形狀的發(fā)育。外源添加植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑GA3及ABA同樣影響試管薯的形狀。添加0.01 μmol/L GA3,試管薯縱莖與橫徑的比值增加到150;添加5 μmol/L ABA,塊莖縱徑與橫莖的比值輕微下降,與對(duì)照相比沒(méi)有顯著差異。但是同時(shí)添加0.01 μmol/L GA3和5 μmol/L ABA,試管薯縱莖與橫徑的比值相對(duì)單獨(dú)添加0.01 μmol/L GA3顯著降低到1.37。因此,ABA和GA3在調(diào)控試管薯的薯形中起到拮抗效應(yīng),該作用可能是通過(guò)影響薯形相關(guān)基因的表達(dá)或關(guān)閉而實(shí)現(xiàn)的。
關(guān)鍵詞:馬鈴薯;薯形;脫落酸(ABA);赤霉素(GA3);塊莖形態(tài);拮抗效應(yīng)
中圖分類號(hào):S532.01文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2019)18-0125-04
收稿日期:2018-06-14
基金項(xiàng)目:江西省教育廳科學(xué)技術(shù)研究項(xiàng)目(編號(hào):GJJ161010)。
作者簡(jiǎn)介:胡月清(1980—),女,江西撫州人,博士,講師,主要從事植物激素與生長(zhǎng)發(fā)育研究。Tel:(0795)3202591;E-mail:huyueqing427@163.com。
薯形是馬鈴薯的一個(gè)重要農(nóng)藝性狀,野生種薯形非常豐富[1],但是由于只有形狀優(yōu)良、整齊一致的薯形才被育種者選擇和保留,所以栽培種的薯形變異較少,大多為圓形、橢圓形、長(zhǎng)形3種類型[2]。薯形不但是品種鑒別的重要依據(jù),也是不同食品加工需求的重要篩選指標(biāo)。長(zhǎng)薯形的馬鈴薯通常被用作加工成薯?xiàng)l,而圓薯形的馬鈴薯通常被加工成薯片。相對(duì)馬鈴薯產(chǎn)量及抗性的研究,目前關(guān)于薯形方面的研究較少[3]。1個(gè)世紀(jì)前,Salaman發(fā)現(xiàn)薯形的遺傳符合孟德?tīng)栠z傳定律[4],并且圓薯形對(duì)長(zhǎng)薯形是顯性[5]。1985年,Masson將控制圓薯形的基因命名為Ro,并確定該基因距著絲粒12.2 cm[6]。隨后,van Eck等將Ro基因定位在第10號(hào)染色體上并指明它是控制薯形遺傳的主效位點(diǎn),其貢獻(xiàn)率達(dá)到75%[7]。隨著研究手段的豐富,控制薯形的作用位點(diǎn)相繼被鑒定出來(lái)。Sliwka等利用RAPD標(biāo)記構(gòu)建遺傳圖譜,將薯形相關(guān)的基因定位到第2、第11號(hào)染色體上[8]。Prashar等通過(guò)構(gòu)建SNP連鎖圖譜,將與薯形相關(guān)較大的QTL位點(diǎn)定位于第10、第2號(hào)染色體上,其中位于第10號(hào)染色體上的位點(diǎn)是主效位點(diǎn)[9],位置與van Eck等報(bào)道的Ro基因[7]幾乎一致。2014年全基因組關(guān)聯(lián)分析(genome-wide association study,GWAS)首次被運(yùn)用在薯形研究中,并發(fā)現(xiàn)4個(gè)與薯形遺傳相關(guān)的位點(diǎn)分別在第2、第10、第11、第12號(hào)染色體上,該結(jié)果進(jìn)一步對(duì)已知的薯形相關(guān)位點(diǎn)進(jìn)行了驗(yàn)證[10]。目前多個(gè)薯形相關(guān)基因得到了開(kāi)發(fā)和驗(yàn)證[11-13]。塊莖的誘導(dǎo)受赤霉素(GA3)和脫落酸(ABA)等多種植物激素的控制[14],而形態(tài)的建成伴隨著塊莖的發(fā)育而發(fā)生。既然GA3和ABA可以拮抗地調(diào)控塊莖的形成,那么它們也有可能調(diào)控塊莖的形態(tài)建成即薯形,本研究正是基于此推測(cè)而展開(kāi)的。
1?材料與方法
1.1?試驗(yàn)材料
研究材料為橢圓形薯形材料會(huì)-2及圓薯形材料PB06。
1.2?材料培養(yǎng)
將脫毒苗帶腋芽的單莖段接種于MS培養(yǎng)基(30 g/L蔗糖、0.75%瓊脂粉,pH值為5.8)中,于22 ℃、光照16 h/d下培養(yǎng)。生長(zhǎng)3~4周后,將長(zhǎng)勢(shì)一致的完全展開(kāi)6~7張葉片的會(huì)-2及PB06脫毒苗經(jīng)過(guò)4 d的煉苗、移栽至塑料盆中。2016年9月于湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物激素與生長(zhǎng)發(fā)育湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室網(wǎng)室進(jìn)行盆栽試驗(yàn)。等到2個(gè)品種馬鈴薯塊莖完全成熟時(shí),對(duì)馬鈴薯塊莖取樣,用液氮研磨成粉末,測(cè)定植物激素的含量。
為了研究ABA和GA3在試管薯形態(tài)發(fā)育中的作用,將基礎(chǔ)MS培養(yǎng)基中添加8%蔗糖培養(yǎng)20 d的會(huì)-2試管薯的形態(tài)作為對(duì)照。分別添加5 μmol/L ABA、0.01 μmol/L GA3、0.1 μmol/L GA3及混合添加0.01 μmol/L GA3和5 μmol/L ABA,觀測(cè)試管薯的形態(tài)。
1.3?植物激素的測(cè)定
采用高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定GA3及ABA的含量,植物激素的提取和純化參照參考文獻(xiàn)[15-16]的方法進(jìn)行。首先,稱取200 mg左右鮮樣液氮冷凍后迅速用組織勻漿機(jī)(QIAGEN,Germany)勻漿,加入1.5 mL 80% 甲醇和5 μL內(nèi)標(biāo)(20 μg/mL 2H6-ABA、2H2-GA3)于4 ℃冰箱中浸提8 h 以上。12 800 r/min離心10 min,上清液冷凍濃縮至干后用200 μL磷酸鈉緩沖液(pH值7.8)溶解,12 800 r/min離心10 min,取20 μL上清經(jīng)高效液相色譜分離純化,80%甲醇洗脫液再次冷凍濃縮至干。用40 μL 10%甲醇溶解,12 800 r/min 離心10 min,取5 μL通過(guò)液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(LC-MS/MS)檢測(cè)和分析。
ABA質(zhì)譜方法:采用負(fù)離子模式,質(zhì)譜多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)檢測(cè),ESI電離源,霧化氣流速為3 L/min,干燥氣流速為15 L/min,脫溶劑管溫度為280 ℃,加熱模塊溫度為480 ℃,ABA(m/z)為262.9/153,碰撞能15 V,2H6-ABA(m/z)為269.35/159.25,碰撞能15 V。GA3質(zhì)譜方法:霧化氣流速為3 L/min,干燥氣流速為15 L/min,脫溶劑管溫度為250 ℃,加熱模塊溫度為450 ℃,GA3(m/z)為345.1/143.1,碰撞能30 V。
1.4?塊莖及試管薯形態(tài)測(cè)定
用游標(biāo)卡尺分別測(cè)定成熟的馬鈴薯塊莖及培養(yǎng)20 d試管薯的最大縱莖表示塊莖長(zhǎng)度、最大橫徑表示塊莖寬度;再用縱莖與橫徑的比值表示薯形。
1.5?數(shù)據(jù)處理
所有數(shù)據(jù)均為3次生物學(xué)重復(fù)的“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”,采用DPS 14.50進(jìn)行數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析。
2?結(jié)果與分析
2.1?會(huì)-2和PB062個(gè)品種成熟塊莖形態(tài)及其ABA和GA3含量的比較
收獲成熟期的2個(gè)馬鈴薯栽培品種,外形觀察發(fā)現(xiàn)會(huì)-2成長(zhǎng)橢圓形,而PB06成圓形(圖1-A)。進(jìn)一步用游標(biāo)卡尺測(cè)量塊莖的橫徑和縱徑,并計(jì)算縱徑與橫徑的比值(去除縱徑或橫徑小于3 cm的數(shù)值)。結(jié)果表明,成熟期的2個(gè)品種的橫徑?jīng)]有顯著差別,會(huì)-2的縱徑比PB06的縱徑顯著增長(zhǎng),會(huì)-2縱徑與橫徑的比值為1.47,而PB06縱徑與橫徑的比值顯著偏低,為1.24(表1)。
會(huì)-2成熟塊莖ABA的含量為32.83 ng/g,而PB06的含量為46.15 ng/g;會(huì)-2成熟塊莖GA3的積累為3.43 ng/g,PB06為1.12 ng/g。PB06中ABA含量與GA3含量的比值為41.21,會(huì)-2為9.83(表1)。上述結(jié)果表明,ABA與GA3的含量或者它們的比值與馬鈴薯塊莖的形狀相關(guān),ABA含量高、GA3含量低,換言之即ABA與GA3比值較大的品種塊莖的形狀接近圓形,相反塊莖的形狀接近長(zhǎng)橢圓形。
2.2?外源植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑ABA及GA3對(duì)試管薯形態(tài)的調(diào)控
為了進(jìn)一步驗(yàn)證ABA及GA3含量與塊莖形態(tài)的關(guān)系,以及它們對(duì)塊莖形態(tài)建成的作用是否與塊莖形成一樣存在拮抗效應(yīng)。因此,以會(huì)-2為研究材料開(kāi)展試管薯驗(yàn)證體系。8%蔗糖培養(yǎng)基中添加5 μmol/L ABA后,試管薯的體積變小,橫徑和縱徑都變短,但是縱徑與橫徑的比值沒(méi)有顯著變化。添加0.01 μmol/L GA3后,橫徑顯著變小,縱徑變化不顯著,縱徑與橫徑的比值顯著增加,比值達(dá)到1.50,也就是說(shuō)試管薯變得更呈長(zhǎng)橢圓形了。隨著GA3含量的增加,橫徑進(jìn)一步變小,縱徑則進(jìn)一步更加,此時(shí)橫徑與縱徑的比值最大,達(dá)到2.29,試管薯的外形顯得更細(xì)長(zhǎng)。在8%蔗糖培養(yǎng)基中同時(shí)添加0.01 μmol/L GA3和5 μmol/L ABA,發(fā)現(xiàn)ABA減緩了GA3導(dǎo)致的試管薯變長(zhǎng)的效應(yīng),此時(shí)試管薯縱徑與橫徑的比值為1.37,相對(duì)只添加0.01 μmol/L GA3減小,但是仍然比單獨(dú)添加8%蔗糖及8%蔗糖與5 μmol/L ABA組合顯著增加。不同處理下試管薯薯形外觀變化見(jiàn)圖1,薯形測(cè)量數(shù)據(jù)見(jiàn)表2。上述結(jié)果表明,生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑GA3可使得試管薯變長(zhǎng);生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑ABA可使試管薯變圓,但與對(duì)照相比差異并不顯著;且ABA可以拮抗GA3對(duì)試管薯變得更加橢圓的效應(yīng)。該試驗(yàn)結(jié)果與“內(nèi)源植物激素ABA含量低、GA3含量高,塊莖則更顯得橢圓(縱徑與橫徑的比值增加)”相一致。所以,植物激素ABA與GA3可以影響試管薯的形態(tài)。
3?討論與結(jié)論
薯形是馬鈴薯的一個(gè)重要外觀品質(zhì),無(wú)論是直接鮮食,還是加工成各種產(chǎn)品后食用,對(duì)塊莖的形狀都有嚴(yán)格的要求。為了方便去皮,鮮食消費(fèi)者往往選擇塊莖大小均勻、形狀規(guī)則的品種。圓薯形品種大西洋(Atlantic)是炸薯片的最佳選擇,長(zhǎng)形品種夏波蒂(Shepody)和布爾班克(Burbank)則是炸薯?xiàng)l的最適品種。所以,薯形的遺傳研究對(duì)于選育滿足食品工業(yè)不同加工需求和鮮薯消費(fèi)需求的新品種具有十分重要的意義。
本研究的2個(gè)品種PB06和會(huì)-2分別是圓薯形品種和橢圓形薯形品種。在研究植物激素對(duì)塊莖發(fā)育的調(diào)控時(shí)發(fā)現(xiàn),長(zhǎng)薯形品種會(huì)-2的塊莖中相對(duì)圓薯形品種PB06具有更高的GA3含量、GA3含量/ABA含量的值和更低的ABA含量。由此推測(cè),植物激素GA3和ABA可能與塊莖的形態(tài)建成相關(guān)。試管薯體系的驗(yàn)證結(jié)果表明,添加0.01 μmol/L GA3后試管薯的薯形顯著變長(zhǎng),當(dāng)添加0.1 μmol/L GA3后縱徑與橫徑的比值達(dá)到2.29,而同時(shí)添加ABA后縱徑與橫徑的比值縮小,該結(jié)果與上述“高ABA含量、低GA含量的馬鈴薯品種為圓形,反之為橢圓形(長(zhǎng)形)”的結(jié)果相一致。
ABA與GA3是一對(duì)經(jīng)典的植物激素組合,二者在種子的休眠與萌發(fā)、根的發(fā)育及開(kāi)花等方面都表現(xiàn)出拮抗的生物學(xué)效應(yīng),因此它們的平衡對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育是必要的[17-18]。塊莖形成過(guò)程中ABA與GA3也存在拮抗效應(yīng),GA3為抑制塊莖形成的植物激素,而ABA是促進(jìn)因子[19-21,14],馬鈴薯塊莖的形態(tài)建成與塊莖發(fā)育是同步的,既然ABA與GA3拮抗調(diào)控塊莖的形成,那么它們對(duì)薯形的形成可能也有類似的作用。但是,這種拮抗效應(yīng)是如何產(chǎn)生的、有哪些因子在精細(xì)調(diào)控這種拮抗、這2種植物激素合成及信號(hào)途徑的重要基因與已知的薯形控制基因間存在怎樣的互作關(guān)系,是今后研究須要解決的重要科學(xué)問(wèn)題。
參考文獻(xiàn):
[1]Glendinnin D R.Potato introductions and breeding up to the early 20th century[J]. New Phytologist,1983,94(3):479-505.
[2]Uitdewilligen J.Discovery and genotyping of existing and induced DNA sequence variation inpotato[D]. Wageningen:Wageningen University,2012.
[3]van Eck H J.Genetics of morphological and tuber traits[J]. Potato Biology and Biotechnology,2007,91-115.
[4]Salaman R N.The inheritance of colour and other characters in the potato[J]. Journal of Genetics,1911,5(1):192-193.
[5]Jong H D,Bums V J.Inheritance of tuber shape in cultivated diploid potatoes[J]. American Potato Journal,1993,70(3):267-284.
[6]Masson M F.Mapping,combining abilities,heritabilities and heterosis with 4X × 2X crosses in potato[D]. Madison:Wisconsin University,1985.
[7]van Eck H J,Jacobs J M,Stam P,et al.Multiple alleles for tuber shape in diploid potato detected by qualitative and quantitative genetic analysis using RFLPs[J]. Genetics,1994,137(1):303-309.
[8]Sliwka J,Wasilewicz-Flis I,Jakuczun H,et al. Tagging quantitative trait loci for dormancy,tuber shape,regularity of tuber shape,eye depth and flesh color in diploid potato originated from six Solanum species[J]. Plant Breed,2008,127(1):49-55.
[9]Prashar A,Hornyik C,Young V,et al.Construction of a dense SNP map of a highly heterozygous diploid potato population and QTL analysis of tuber shape and eye depth[J]. Theoretical and Applied Genetics,2014,127(10):2159-2171.
[10]DHoop B B,Keizer P L C,Paulo M J,et al. Identification of agronomically important QTL in tetraploid potato cultivars using a marker-trait associationanalysis[J]. Theoretical and Applied Genetics,2014,127(3):731-748.
[11]朱文文,徐建飛,李廣存,等. 馬鈴薯塊莖形狀基因CAPS標(biāo)記的開(kāi)發(fā)與驗(yàn)證[J]. 作物學(xué)報(bào),2015,41(10):1529-1536.
[12]沈云龍. 馬鈴薯薯形相關(guān)基因序列分析及光敏色素影響塊莖形成初步研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.
[13]陳?娜. 馬鈴薯薯形基因位點(diǎn)標(biāo)記開(kāi)發(fā)與物理圖譜構(gòu)建[D]. 北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院,2017.
[14]Dutt S,Manjul A S,Raigond,et al.Key players associated with tuberization in potato:potential candidates for geneticengineering[J]. Critical Reviews in Biotechnology,2017,37(7):942-957.
[15]Liu X,Yang Y L,Lin W H,et al.Determination of both jasmonic acid and methyl jasmonate in plant samples by liquid chromatography tandem mass spectrometry[J]. Chinese Science Bulletin,2010,55(21):2231-2235.
[16]Zhou L J,Xiao L T,Xue H W.Dynamic cytology and transcriptional regulation of rice lamina joint development[J]. Plant Physiology,2017,174(3):1728-1746.
[17]Shu K,Zhang H W,Wang S F,et al.ABI4 regulates primary seed dormancy by regulating the biogenesis of abscisic acid and gibberellins inArabidopsis[J]. PLoS Genetics,2013,9(6):e1003577.
[18]Shu K,Zhou W G,Yang W Y.APETALA 2-domain-containing transcription factors:focusing on abscisic acid and gibberellins antagonism[J]. New Phytologist,217(3):977-983.
[19]Xu X,Lammeren A A M V,Vermeer E,et al.The role of gibberellin,abscisic acid,and sucrose in the regulation of potato tuber formation in vitro[J]. Plant Physiology,1998,117(2):575-584.
[20]Noelia M G M,Stritzler M,Capiati D A.Heterologous expression of Arabidopsis ABF4 gene in potato enhances tuberization throughABA-GA crosstalk regulation[J]. Planta,2014,239(3):615-631.
[21]胡月清,詹?爽,庫(kù)文珍,等. ABA和GA3對(duì)馬鈴薯試管薯形成及淀粉積累的協(xié)同調(diào)控[J]. 分子植物育種,2017,15(10):4210-4214.