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        附子多糖純化工藝的優(yōu)化及其毒性

        2019-11-21 06:04:12丁興杰蒲忠慧亮郭力劉
        中成藥 2019年11期
        關(guān)鍵詞:換液斑馬魚(yú)定容

        丁興杰 蒲忠慧 熊 亮郭 力劉 菲?彭 成?

        (1.成都中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,教育部中藥材標(biāo)準(zhǔn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,中藥資源系統(tǒng)研究與開(kāi)發(fā)利用省部共建國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地,四川 成都611137;2.西南特色藥材創(chuàng)新藥物成分研究所,四川 成都611137)

        附子為毛茛科烏頭屬植物烏頭Aconitum carmichaeliDebx.子根的加工品,其味辛、甘,性大熱,有毒,具有回陽(yáng)救逆、補(bǔ)火助陽(yáng)、散寒止痛功效。附子多糖是附子有效成分之一,具有調(diào)節(jié)免疫、抗腫瘤、保護(hù)心肌細(xì)胞、降血脂等作用[1],近年來(lái)越來(lái)越受到重視[2-4],目前相關(guān)工藝研究主要集中在提取上[5-7],鮮有純化方面的報(bào)道。

        透析法作為多糖經(jīng)典的除小分子化合物方法,能有效提高附子多糖純度,而且損失較少。本實(shí)驗(yàn)首次采用Box-Behnken 響應(yīng)面法優(yōu)化附子多糖純化工藝,并進(jìn)行毒性研究,以期為該成分開(kāi)發(fā)利用提供參考。

        1 材料

        1.1 試藥 生附片(產(chǎn)地四川江油)購(gòu)自四川江油中壩附子科技發(fā)展有限公司,經(jīng)成都中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院高繼海副教授鑒定為毛茛科烏頭屬植物烏頭Aconitum carmichaeliDebx.子根的加工品。無(wú)水葡萄糖對(duì)照品(批號(hào)110833-200302,中國(guó)食品藥品檢定研究院)。中性蛋白酶(批號(hào)16110902,南寧龐博生物工程有限公司);牛血清白蛋白(如吉生物科技有限公司)。95%乙醇、蒽酮、硫酸均為分析純(成都科龍化工試劑廠)。

        1.2 儀器 Lambda 35型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì);LDZ5-2型離心機(jī);DSY-1-6型電熱恒溫水浴器;電子分析天平(萬(wàn)分之一,德國(guó)Sartorius 公司);DB-211SC 型電熱鼓風(fēng)恒溫干燥箱;MD34型透析袋(8 000~14 000 Da,美國(guó)Viskase 公司);24孔板;移液槍。

        2 方法

        2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

        2.1.1 葡萄糖 精密稱取105 ℃下干燥至恒重的無(wú)水葡萄糖對(duì)照品10 mg,置于10 mL 量瓶中,定容,搖勻,即得(1 mg/mL)。

        2.1.2 蛋白質(zhì) 精密稱取105 ℃下干燥至恒重的牛血清白蛋白對(duì)照品10 mg,置于10 mL 量瓶中,定容,搖勻,即得(1 mg/mL)

        2.1.3 二硝基水楊酸(DNS)精密稱取DNS 0.65 g,適量蒸餾水溶解后轉(zhuǎn)移至100 mL 棕色量瓶中,依次加入NaOH 溶液(2 mol/L)32.5 mL、丙三醇4.5 g,定容,搖勻,放置7 d,即得。

        2.1.4 考馬斯亮藍(lán) 精密稱取考馬斯亮藍(lán)G-250 100 mg,依次加入95%乙醇50 mL、85%磷酸100 mL,蒸餾水定容至1 000 mL,即得,置于棕色瓶中備用。

        2.2 總糖標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 采用苯酚-硫酸法。精密吸取“2.1.1”項(xiàng)下葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0、40、60、80、100、120 μL,置于試管中,蒸餾水定容至1.5 mL,再加入5%苯酚2 mL,搖勻,迅速加入濃硫酸6.5 mL,室溫下顯色25 min;另取蒸餾水2 mL,同法顯色,作為空白對(duì)照,于最大吸收波長(zhǎng)488 nm 處測(cè)定吸光度。以總糖質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo)(A)進(jìn)行回歸,得方程A=63.75X+0.018(r=0.999 9),在0.004~0.012 mg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        2.3 還原糖標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 采用DNS 法。精密吸取“2.1.1”項(xiàng)下葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL,置于比色管中,蒸餾水定容至1 mL,再加入“2.1.3”項(xiàng)下DNS 試劑2 mL,搖勻,沸水浴3 min,加純水17 mL,于最大吸收波長(zhǎng)495 nm 處測(cè)定吸光度。以還原糖質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo)(A)進(jìn)行回歸,得方程A=21.72X-0.046(r=0.999 9),在0.015~0.035 mg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        “股份制”合作統(tǒng)一經(jīng)營(yíng)模式使橫溪塢村竹林逐步走向規(guī)?;?、集約化、效益化、品牌化的現(xiàn)代林業(yè)經(jīng)營(yíng)道路,實(shí)現(xiàn)了生態(tài)、經(jīng)濟(jì)、社會(huì)效益的和諧統(tǒng)一,對(duì)當(dāng)?shù)剜l(xiāng)村振興發(fā)揮了更為積極有效的作用。

        2.4 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 采用考馬斯亮藍(lán)法。精密吸取“2.1.2”項(xiàng)下蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液0、40、60、80、100、120 μL,置于試管中,蒸餾水定容至1 mL,再加入“2.1.4”項(xiàng)下考馬斯亮藍(lán)溶液5 mL,顯色15 min,于最大吸收波長(zhǎng)590 nm 處測(cè)定吸光度,以蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo)(A)進(jìn)行回歸,得方程A=52.6X+0.092(r=0.999 9),在0.004~0.012 mg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        2.5 純化工藝 采用單因素試驗(yàn),確定提取工藝為5 g 藥材粗粉加40倍量水煎煮4 h,過(guò)濾,濾液離心,上清液加80%乙醇醇沉,低溫放置過(guò)夜,離心,沉淀用水復(fù)溶,Sevage 法除蛋白后用透析膜透析。然后,通過(guò)苯酚硫酸法、DNS 法[8]測(cè)定多糖含有量。

        2.5.1 醇沉體積分?jǐn)?shù)對(duì)多糖損失率的影響 取藥材粗粉5 g,加40倍量水,100 ℃下回流煎煮4 h,離心,取上清液,加乙醇至50%、60%、70%、80%、90%,靜置過(guò)夜,離心,加水復(fù)溶,測(cè)定多糖含有量,結(jié)果見(jiàn)圖1。由圖可知,醇沉體積分?jǐn)?shù)80%時(shí)多糖損失率最低。

        圖1 醇沉體積分?jǐn)?shù)對(duì)多糖損失率的影響

        2.5.2 除蛋白方法對(duì)多糖含有量的影響 蛋白質(zhì)是粗多糖中最主要的雜質(zhì),其存在增加了多糖吸濕性,而且所帶電荷可吸附大量其他雜質(zhì)和多糖,導(dǎo)致難以去除或分離[9]。取適量多糖溶于水,離心去沉淀,上清液分別用Sevage 試劑、三氟乙酸、中性蛋白酶除蛋白,考馬斯亮藍(lán)法檢測(cè)蛋白質(zhì)含有量,結(jié)果見(jiàn)圖2。由圖可知,雖然三氟乙酸法可將蛋白質(zhì)除盡,但也會(huì)使多糖大量降解;酶法雖也可除盡蛋白質(zhì),但多糖含有量也較低,綜合考慮,選擇Sevage 法去除蛋白質(zhì)。

        圖2 除蛋白方法對(duì)多糖含有量的影響

        2.6 透析工藝 通過(guò)MD34透析袋(8 000~14 000 Da)對(duì)多糖進(jìn)行透析后,對(duì)透析時(shí)間、透析溫度、換液次數(shù)進(jìn)行單因素考察[10]。

        2.6.1 透析時(shí)間 固定透析液-緩沖液體積比1 ∶50,更換緩沖液4次,透析溫度20 ℃,考察透析15、20、25、30、35 h 對(duì)多糖純度的影響,結(jié)果見(jiàn)圖3。由圖可知,透析30 h時(shí)多糖純度最高。

        圖3 透析時(shí)間對(duì)多糖純度的影響

        圖4 透析溫度對(duì)多糖純度的影響

        2.6.3 換液次數(shù) 固定透析液-緩沖液體積比1 ∶50,透析時(shí)間30 h,透析溫度40 ℃,考查換液3、4、5、6、7次對(duì)多糖純度的影響,結(jié)果見(jiàn)圖5。由圖可知,隨著換液次數(shù)增加,多糖純度逐漸提高,在6次時(shí)最高,但在7次時(shí)反而稍有降低,可能是由于換液頻繁會(huì)使小分子聚合糖流失。

        圖5 換液次數(shù)對(duì)多糖的影響

        2.6.4 工藝優(yōu)化 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)原理,選擇透析溫度(A)、透析時(shí)間(B)、換液次數(shù)(C)作為影響因素,多糖純度(Y)作為評(píng)價(jià)指標(biāo),進(jìn)行3因素3水平響應(yīng)面分析,結(jié)果見(jiàn)表1。

        表1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

        然后,應(yīng)用Design Expert 8.0.6.1軟件對(duì)表1數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,得方程Y=-270.689 00 +3.451 45A+6.200 10B+64.378 00C-0.029 300AB+0.024 500AC+0.100 00BC-0.035 390A2-0.093 360B2-5.439 00C2,方差分析見(jiàn)表2。由表可知,模型具有顯著性(P<0.05),而失擬項(xiàng)不顯著(P>0.05);各因素影響程度依次為換液次數(shù)>透析溫度>透析時(shí)間;回歸方程擬合度和可信度均較高(R2=0.901 5,=0.884 6),預(yù)測(cè)性良好。

        表2 方差分析

        2.7 響應(yīng)面分析 通過(guò)Design Expert 8.0.6.1軟件繪制響應(yīng)面,見(jiàn)圖6。由圖可知,最優(yōu)工藝為透析溫度36 ℃,透析時(shí)間31 h,換液次數(shù)6次,多糖純度為92.17%。

        圖6 各因素響應(yīng)面圖

        2.8 驗(yàn)證試驗(yàn) 取藥材粗粉5 g,加40倍量水,100 ℃下回流煎煮4 h,離心,取上清液,加乙醇至80%靜置過(guò)夜,離心,加水復(fù)溶,Sevage 法除蛋白,在透析溫度36 ℃、透析時(shí)間31 h、換液次數(shù)6次條件下進(jìn)行多糖透析,冷凍干燥,得無(wú)色透明膠狀多糖,稱定質(zhì)量,重復(fù)3次。結(jié)果,多糖提取率分別為9.64%、9.92%、9.58%,平均9.71%(RSD=1.85%);純度分別為90.26%、92.71%、92.70%,平均91.89%(RSD=1.54%),與理論值92.17% 相當(dāng),表明工藝優(yōu)化效果理想。

        2.9 多糖毒性研究

        2.9.1 心臟毒性 斑馬魚(yú)按雌雄比2 ∶1或1 ∶1的比例放入配魚(yú)缸中,次日早上利用光照刺激使其交配,待其產(chǎn)卵0.5~1 h 后,收集受精卵于胚胎培養(yǎng)液中,置于28.5 ℃孵箱中孵育48 h,其間每天更換胚胎培養(yǎng)液并棄除死卵,隨機(jī)分組放入24孔板中,每孔10只,分為多糖6.25、12.5、25、50、100 μg/mL 組和空白組,浸泡給藥后,斑馬魚(yú)繼續(xù)放入28.5 ℃孵箱中孵育。每12 h 觀察1次,記錄0.5 min內(nèi)心跳次數(shù),同時(shí)觀察胚胎心包及心臟形態(tài),重復(fù)3次,每次用同一批胚胎,結(jié)果見(jiàn)圖7。由圖可知,不同質(zhì)量濃度多糖對(duì)斑馬魚(yú)心率均無(wú)明顯影響(P>0.05)。

        圖7 多糖對(duì)斑馬魚(yú)心率的影響

        2.9.2 胚胎毒性 選擇受精后10 h 發(fā)育正常的斑馬魚(yú)胚胎,隨機(jī)分組放入24孔板中,每孔10枚胚胎,分為多糖6.25、12.5、25、50、100 μg/mL 組和空白組,浸泡給藥后,胚胎繼續(xù)放入28.5 ℃孵箱中孵育,每12 h 觀察1次,記錄胚胎死亡率,重復(fù)3次,每次用同一批胚胎,結(jié)果見(jiàn)圖8。由圖可知,不同質(zhì)量濃度多糖對(duì)斑馬魚(yú)胚胎死亡率均無(wú)明顯影響(P>0.05)。

        圖8 多糖對(duì)斑馬魚(yú)胚胎死亡率的影響

        3 討論

        傳統(tǒng)多糖含有量測(cè)定方法大多為苯酚-硫酸法或蒽酮-硫酸法[11-12],這是因?yàn)槎嗵谴汲梁筮€原糖含有量可忽略不計(jì),但在除蛋白過(guò)程中,各種試劑會(huì)造成多糖降解而產(chǎn)生還原糖,三氟乙酸法、中性蛋白酶除蛋白均是如此。由于多糖透析的目的是除去小分子還原糖,故本實(shí)驗(yàn)采用苯酚-硫酸法、DNS 法測(cè)定多糖含有量。

        Box-Behnken 響應(yīng)面法是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的一種新的多變量統(tǒng)計(jì)分析技術(shù)[13],可應(yīng)用于多變量統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,能對(duì)幾個(gè)因素的相互影響作出全面統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,通過(guò)對(duì)擬合后的回歸方程進(jìn)行分析,以尋找最優(yōu)工藝參數(shù),而且,它可更好地處理離散水平值,具有試驗(yàn)數(shù)相對(duì)較少、精密度高等優(yōu)點(diǎn),能對(duì)各因素之間的交互作用進(jìn)行研究[14]。本實(shí)驗(yàn)采用Box-Behnken 響應(yīng)面法優(yōu)化附子多糖純化工藝,不僅使多糖透析時(shí)間降低到31 h,比傳統(tǒng)工藝下的72 h 縮短一半以上,還將其純度提升到91.89%,更適合工業(yè)化生產(chǎn)。

        附子具有回陽(yáng)救逆、補(bǔ)火助陽(yáng)的功效,但有大毒。本實(shí)驗(yàn)考察了附子多糖毒性,發(fā)現(xiàn)該成分無(wú)明顯心臟、胚胎毒性,安全性高,可為其開(kāi)發(fā)利用提供參考。

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