鄭 麗,李 達,牛紅紅,苗欣宇,王景會*,蘇 穎*
(吉林省農(nóng)業(yè)科學院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,吉林 長春 130033)
豆粕是大豆提取完油脂之后的副產(chǎn)物,其蛋白含量高、氨基酸種類均衡,因此在食品和飼料工業(yè)中常作為廉價的優(yōu)質(zhì)蛋白原料使用[1-2]。但是,豆粕中含有的一系列抗營養(yǎng)因子過敏性蛋白、植酸和胰蛋白酶抑制劑等限制了豆粕的使用范圍[3]。通過發(fā)酵可以有效降解這些不良因子并提高豆粕的營養(yǎng)價值[4]。應用于豆粕發(fā)酵的微生物種類繁多,并且不同微生物發(fā)酵的豆粕具有不同的特性[5]。近期利用芽孢桿菌生產(chǎn)發(fā)酵豆粕成為研究趨勢。芽孢桿菌生長周期短、成本低廉,并且其發(fā)酵的豆粕產(chǎn)品具有營養(yǎng)價值高、抗營養(yǎng)因子低等優(yōu)點[6]。
芽孢桿菌在固態(tài)發(fā)酵過程中會產(chǎn)生堿性蛋白酶,蛋白酶對豆粕大分子蛋白進行分解,產(chǎn)生小分子蛋白質(zhì)、肽和氨基酸,首先會導致豆粕pH值稍微下降,然后隨著發(fā)酵的進一步加深,蛋白酶繼續(xù)水解蛋白質(zhì)片段變成氨,最終導致豆粕pH值上升[7]。因此,在發(fā)酵過程中,豆粕中的大分子過敏源大豆球蛋白和β-伴大豆球蛋白在不同的階段降解成不同種類的小分子物質(zhì)。有研究表明,在已知芽孢桿菌最佳生長溫度的情況下,發(fā)酵時間對豆粕的質(zhì)量有非常重要的作用。發(fā)酵時間過短,豆粕中的過敏源分解不完全,不利于消化和吸收,發(fā)酵時間過長,會導致蛋白質(zhì)的過度分解,并產(chǎn)生刺鼻的氣味,不僅會降低總蛋白含量,也會影響豆粕的品質(zhì)[8]。
豆粕加工過程中蛋白成分的變化成為研究者們關(guān)注的焦點。Seo等[9]使用雙向電泳技術(shù)檢測了枯草芽孢桿菌發(fā)酵過程中蛋白亞組分的變化;Yang Yong等[10]使用傅里葉變換紅外光譜檢測了5 種豆粕蛋白水解后的二級結(jié)構(gòu)變化。但是,芽孢桿菌發(fā)酵過程中豆粕蛋白的微觀結(jié)構(gòu)變化研究相對較少。有研究表明蛋白質(zhì)的微觀結(jié)構(gòu)與蛋白質(zhì)的理化性質(zhì)和消化性相關(guān),如Peng Quanhui等[11]觀察到豆粕蛋白的分子結(jié)構(gòu)會影響其溶解性和腸道消化性。因此,研究大豆的微觀結(jié)構(gòu)可以更好地了解其營養(yǎng)功能。
本研究篩選到1 株高產(chǎn)蛋白酶的芽孢桿菌,通過形態(tài)學、生理生化鑒定,以及進化樹的構(gòu)建,結(jié)果顯示其是1 株暹羅芽孢桿菌。研究芽孢桿菌發(fā)酵對豆粕化學成分的變化以及對豆粕蛋白的微觀結(jié)構(gòu)影響,本實驗可為進一步研究微生物發(fā)酵對豆粕蛋白結(jié)構(gòu)影響提供理論支持。
脫脂豆粕 吉林華展生物工程有限責任公司;脫脂乳粉 新西蘭恒天然集團。
改良LB液體培養(yǎng)基:酵母浸粉3 g/L、蛋白胨10 g/L、氯化鈉10 g/L、葡萄糖3 g/L,121 ℃高壓滅菌20 min。改良LB固體培養(yǎng)基:改良LB液體培養(yǎng)基添加16 g/L瓊脂粉。豆粕發(fā)酵培養(yǎng)基:10 g豆粕(過20 目篩)、0.2 g紅糖、10 g蒸餾水,攪拌均勻,115 ℃高壓滅菌15 min。脫脂乳固態(tài)培養(yǎng)基:脫脂乳粉50 g/L、瓊脂粉1.5 g/L,115 ℃高壓滅菌15 min。
MLS-3780高壓蒸汽滅菌鍋 日本Sanyo公司;Cary 300紫外-可見光分光光度計 美國Varian公司;全自動凝膠成像系統(tǒng) 美國Bio-Rad公司;DK-8D電熱恒溫水浴鍋 上海一恒科學儀器有限公司;RC冷凍離心機 美國Thermo公司;JSM-6700F掃描電鏡(scanning electron microscopy,SEM) 日本JEOL公司;D/max 2550 X射線衍射(X-ray diffraction,XRD)儀 日本Rigaku公司;2300k凱氏定氮儀 丹麥Foss公司。
1.3.1 產(chǎn)蛋白酶菌株篩選
初篩:挑取活化后的芽孢桿菌單菌落接種于液體培養(yǎng)基,37 ℃、200 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)24 h。將培養(yǎng)菌液在4 ℃、8 000 r/min離心15 min后,取上清液過0.22 μL無菌濾膜。在脫脂乳固體培養(yǎng)基表面擺放牛津杯(直徑6 mm),使牛津杯與培養(yǎng)基接觸面無縫隙,然后在牛津杯中注入200 μL濾液。將脫脂乳培養(yǎng)基放置于40 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h,使用游標卡尺測量水解圈的大小。
復篩:將初篩時具有較大水解圈的芽孢桿菌分別接種10%(加入液體培養(yǎng)基的體積為豆粕質(zhì)量的10%,活菌數(shù)約為108CFU/mL)于豆粕發(fā)酵培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)24 h。使用60 mL、50 mmol/L、pH 7.0的磷酸鹽緩沖液提取酶液。將培養(yǎng)基和緩沖液混合后室溫條件下振蕩30 min,繼續(xù)放置在4 ℃靜置2 h,8 000 r/min離心15 min,取上清液。蛋白酶活力檢測:參照SB/T 10317—1999《蛋白酶活力測定法》[12]。
1.3.2 產(chǎn)蛋白酶菌株的鑒定
1.3.2.1 形態(tài)觀察
將產(chǎn)蛋白酶的菌株在改良LB固體培養(yǎng)基上劃線培養(yǎng),并在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后觀察菌落生長情況,將菌體進行結(jié)晶紫染色后在顯微鏡下觀察菌體形態(tài)。
1.3.2.2 生理生化鑒定
參照文獻[13-14]方法,檢測菌株的性質(zhì),包括各種糖發(fā)酵、V-P反應、接觸酶實驗。
1.3.2.3 16S rDNA序列擴增與鑒定
參考騰軍偉等[15]的方法。使用DNA提取試劑盒提取DNA,引物設計和PCR體系如下:正向引物27F(5’-AGAGTTTGATCATGGCTCAG-3’),反向引物1492R(5’-TAGGGTTACCTTACGACTT-3’)。50 μL反應體系為:上游引物與下游引物各0.5 μL,DNA模板2 μL,按照PCR試劑盒添加反應溶劑10.5 μL,最后加入超純水36.5 μL。反應參數(shù)為:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性1 min,55 ℃退火1.5 min,72 ℃延伸1 min,30 個循環(huán);72 ℃末端延伸8 min,4 ℃保存。將目的片段送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序。在EzBioCloud(http://www.ezbiocloud.net/eztaxon/identify)中選取菌株與目的菌株使用MEGA5.0制作系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.3.3 豆粕發(fā)酵時間對豆粕成分的影響
1.3.3.1 豆粕發(fā)酵
豆粕過20 目篩,加入與豆粕質(zhì)量相同量的無菌水和其質(zhì)量1%的紅糖。接種10 mL/100 g(加入液體培養(yǎng)基的體積與豆粕質(zhì)量比例,活菌數(shù)約為108CFU/mL)振蕩培養(yǎng)16 h的芽孢桿菌菌液,將混合物覆蓋兩層濕紗布,放在37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)60 h。每12 h取樣檢測成分變化。發(fā)酵結(jié)束后,將樣品在陰涼通風處干燥,并在-20 ℃冷柜中貯存?zhèn)溆肹16]。
1.3.3.2 芽孢隨時間的生長變化
取1 g發(fā)酵完的樣品,加入生理鹽水,80 ℃保溫20 min殺死營養(yǎng)細胞,采用平板計數(shù)法測定芽孢數(shù)。
1.3.3.3 可溶性還原糖檢測
采用3,5-二硝基水楊酸法[17]。
1.3.3.4 粗蛋白檢測
參照GB 5009.5—2010《食品中蛋白質(zhì)的檢測》[18]。
1.3.3.5 可溶性蛋白檢測
采用Bi Hua等[19]方法,檢測方法與粗蛋白檢測條件一致。
1.3.3.6 十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDSPAGE)檢測致敏蛋白分解
電泳用蛋白提取采取Song等[20]方法,電泳分析采用Teng Da等[21]方法。
1.3.4 豆粕蛋白提取
參考Molina等[22]的方法。發(fā)酵豆粕粉碎過60 目篩,取25 g樣品加入200 mL純凈水,取1 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)pH 8.0,靜置1 h,10 000 r/min離心10 min,棄上清液,將沉淀溶入8 倍體積水中,使用1 mol/L HCl溶液調(diào)節(jié)pH 4.5,10 000 r/min離心10 min,棄上清液,溶解沉淀,將溶液pH值調(diào)至中性,冷凍干燥。
1.3.5 SEM檢測
參考劉建華等[23]的方法。樣品采用離子噴金進行檢測,加速電壓為5 kV。
1.3.6 豆粕蛋白XRD檢測
參考Zhao Xiaoyan等[24]的方法。試樣用XRD儀檢測,入射波長0.154 8 nm,銅靶。儀器檢測設定:管壓50 kV,管流20 mA,掃描區(qū)域5°~40°,連續(xù)掃描。
所有實驗重復3 次。實驗數(shù)據(jù)使用SPSS軟件分析,所有數(shù)據(jù)結(jié)果表示為。
2.1.1 初篩
豆粕發(fā)酵過程中蛋白水解是主要的生化反應過程,并且豆粕蛋白營養(yǎng)的提高程度與蛋白酶活力呈正相關(guān)[25],所以篩選高產(chǎn)蛋白酶的菌株對發(fā)酵結(jié)果有重要影響。實驗室保存的51 株芽孢桿菌中,有34 株分離于遼寧省的稻草中,17 株分離于吉林省的豬飼料中。本實驗采用脫脂乳平板測定蛋白酶水解活力,由于所有菌株在脫脂乳平板上生長擴散嚴重,所以選擇采用牛津杯法初步檢測菌株的蛋白酶活力。選擇其中13 株菌液產(chǎn)生的水解圈直徑在15 mm以上的芽孢桿菌用于復篩實驗。
2.1.2 復篩
有研究[26]表明在篩選芽孢桿菌的過程中,由于底物的不同,芽孢桿菌生長狀態(tài)不同,導致其對不同底物中不同種類蛋白質(zhì)分解效率不同。文獻指出在脫脂乳平板上水解圈較小的芽孢桿菌在豆粕培養(yǎng)基上生長迅速,可以產(chǎn)生高活性蛋白酶。因此,本實驗中脫脂乳平板水解圈與蛋白酶活力數(shù)值由于在不同底物培養(yǎng)基中測定,并不完全呈正相關(guān)。從表1可知,菌株JL8在豆粕為底物的培養(yǎng)基中產(chǎn)蛋白酶活力最高,24 h蛋白酶產(chǎn)量可達(519.1±4.7)U/g,因此JL8被選擇作為豆粕發(fā)酵菌株,對其進行深入研究。
表1 13 株芽孢桿菌的蛋白酶水解圈直徑和蛋白酶活力Table 1 Qualitative and quantitative determination of protease produced by 13 Bacillus strains
2.2.1 形態(tài)學鑒定
將JL8在固體LB培養(yǎng)基上劃線培養(yǎng)24 h后,其菌落為乳白色,邊緣不整齊,表面粗糙,中央凸起,會分泌黏液。通過結(jié)晶紫染色、革蘭氏染色、芽孢染色、穿刺實驗顯示,JL8為需氧菌、革蘭氏陽性短桿菌,產(chǎn)芽孢。圖1為JL8的菌落照片和顯微鏡觀察的結(jié)晶紫染色圖片。
圖1 JL8菌落形態(tài)(A)和菌體顯微鏡照片(B)Fig. 1 Colony morphology (A) and micrograph of strain JL8 (B)
2.2.2 生理生化鑒定
如表2所示,JL8更接近暹羅芽孢桿菌或解淀粉芽孢桿菌[15,27]。
表2 JL8的生理生化實驗結(jié)果Table 2 Physiological and biochemical characteristics of JL8
2.2.3 菌株JL8的分子生物學鑒定
菌株JL8的PCR擴增結(jié)果如圖2所示。根據(jù)1%瓊脂糖凝膠的電泳結(jié)果,在分子質(zhì)量約為1 500 bp處有特異性條帶,與預計結(jié)果相同。使用生工試劑盒回收電泳產(chǎn)物,并送生工生物工程(上海)股份有限公司進行產(chǎn)物堿基序列分析,結(jié)果表明JL8的16S rRNA序列長度為1 451 bp。將所得序列上傳至EzBioClous的分析系統(tǒng)(http://www.ezbiocloud.net/eztaxon/identify)進行分析,結(jié)果顯示JL8與1 株暹羅芽孢桿菌(Bacillus siamensisXY18T)的同源性達到99.14%。在基因庫中選取10 株與JL8同源性較高的菌株,使用MEG 5.0構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖3)。發(fā)育樹顯示JL8與B. siamensisXY18T在同一個分支上[28-29]。結(jié)合上述形態(tài)學和生理生化實驗結(jié)果可將菌株確定為暹羅芽孢桿菌,并命名為B. siamensisJL8。
圖2 菌株JL8的16S rDNA瓊脂糖凝膠電泳Fig. 2 Electrophoresis pattern of PCR amplified product of 16S rDNA from strain JL8
圖3 根據(jù)16S rDNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 3 Phylogenetic tree based on 16S rDNA gene sequences
2.3.1 發(fā)酵菌株芽孢數(shù)分析
圖4 發(fā)酵時間對芽孢桿菌數(shù)量及豆粕成分的影響Fig. 4 Effects of fermentation time on spore quantity of JL8 and chemical composition of soybean meal
如圖4A可知,JL8芽孢數(shù)從發(fā)酵開始到24 h迅速增長,進入對數(shù)生長期,并在發(fā)酵24 h后芽孢數(shù)量無明顯變化進入穩(wěn)定期,并一直持續(xù)到發(fā)酵結(jié)束,芽孢數(shù)沒有明顯減少,可知整個發(fā)酵過程中芽孢桿菌沒有進入衰亡期。
2.3.2 豆粕可溶性還原糖含量分析
根據(jù)圖4B可知,未發(fā)酵的豆粕中可溶性還原糖質(zhì)量分數(shù)約為(1.14±0.04)%,發(fā)酵開始時至36 h可溶性還原糖的含量小幅度上升,在發(fā)酵36 h質(zhì)量分數(shù)達到最大值(1.99±0.02)%。然后含量開始迅速下降,幾乎恢復到與未發(fā)酵豆粕一致,可能由于芽孢桿菌大量繁殖消耗導致這一現(xiàn)象。整個發(fā)酵過程中,可溶性還原糖的含量變化并不顯著,也可能由菌株生長過程中的消耗所致。
2.3.3 豆粕總蛋白含量分析
從圖4C可以看出,豆粕總蛋白含量較高,未發(fā)酵豆粕蛋白質(zhì)量分數(shù)為(41.24±0.84)%,隨著發(fā)酵進行總蛋白含量逐漸上升,在24 h到最大值(46.69±0.24)%,此后基本穩(wěn)定,但是在48 h后蛋白含量逐漸下降。這是因為,在芽孢桿菌發(fā)酵過程中會將蛋白質(zhì)分解成氨氮并產(chǎn)生氨氣[30],發(fā)酵過度的豆粕不但會產(chǎn)生刺鼻的氣味,還會降低豆粕的營養(yǎng)成分。
2.3.4 豆粕可溶性蛋白占總蛋白含量分析
如圖4D所示,未發(fā)酵的豆粕中可溶性蛋白只占總蛋白的(0.77±0.02)%,但是在JL8產(chǎn)生的蛋白酶作用下,可溶性蛋白的含量大幅度上升,在發(fā)酵48 h質(zhì)量分數(shù)達到最大值(15.03±0.02)%,含量幾乎為未發(fā)酵豆粕的20 倍。同時,也可看出48 h后可溶性蛋白含量大幅度下降,這與蛋白酶過度水解有關(guān)。另外,從圖4D可看出,發(fā)酵24~48 h過程中可溶性蛋白含量差別較小,因此,24 h結(jié)束發(fā)酵對可溶性蛋白含量影響不大。
2.3.5 SDS-PAGE檢測過敏蛋白
SDS-PAGE通常用于檢測大豆蛋白中的過敏蛋白組分:大豆球蛋白和β-大豆伴球蛋白。從圖5可以看出,通過24 h發(fā)酵除了20 ku處的堿性亞基,幾乎所有大分子蛋白都被蛋白酶降解成小分子產(chǎn)物,降低了豆粕蛋白的過敏源,同時也提高了蛋白的消化性,因為小分子蛋白更容易被人或動物消化吸收。并且延長發(fā)酵時間超過24 h并沒有進一步分解大分子蛋白,因此24 h發(fā)酵已經(jīng)充分降解了過敏源。
圖5 不同發(fā)酵時間豆粕蛋白成分分析Fig. 5 SDS-PAGE analysis of protein profile of soybean meal at different fermentation times
圖6 豆粕蛋白與發(fā)酵豆粕蛋白SEM圖Fig. 6 SEM photos of native and fermented soybean meal protein
從圖6可以看出,發(fā)酵豆粕蛋白與未發(fā)酵豆粕蛋白相比具有更加疏松的結(jié)構(gòu)。在放大200 倍的情況下,可以看出未發(fā)酵豆粕呈更大的片狀結(jié)構(gòu)相對更加致密,而發(fā)酵豆粕呈破碎的小片結(jié)構(gòu),有些結(jié)構(gòu)在蛋白酶的作用下已經(jīng)出現(xiàn)孔狀結(jié)構(gòu)。進一步放大2 000 倍后,可以看出未發(fā)酵豆粕只能觀察到非常大的片狀結(jié)構(gòu),結(jié)構(gòu)相對完整,而發(fā)酵豆粕依舊可以觀察到破碎的不規(guī)則結(jié)構(gòu)——被蛋白酶分解過的蛋白碎片。SEM圖片反映出JL8菌株蛋白酶對豆粕蛋白的作用效果非常明顯,破壞了蛋白相對完整的空間結(jié)構(gòu)。并且疏松的蛋白結(jié)構(gòu)更加有利于消化和吸收,同時也提高了豆粕的營養(yǎng)性。
圖7 豆粕蛋白與發(fā)酵豆粕蛋白XRD圖Fig. 7 X-ray diffraction patterns of native and fermented soybean meal protein
如圖7所示,兩種豆粕蛋白都存在兩個2θ峰值,并且都處于2θ約為20°附近,但是強度明顯不同,發(fā)酵豆粕的2θ角約為20.2°,強度為268,而未發(fā)酵豆粕的2θ角為20.7°強度為177,另外,在2θ角為9.2°處發(fā)酵豆粕產(chǎn)生一個強度為106的小峰,而未發(fā)酵豆粕的小峰為63。未發(fā)酵豆粕蛋白XRD結(jié)果與張娜等[31]的檢測結(jié)果基本一致。而圖中不同的峰距和不同的強度值,均反映芽孢桿菌分泌的蛋白酶改變了豆粕蛋白的主鏈結(jié)構(gòu)。Zhao Xiaoyan等[24]認為豆粕蛋白2θ角的吸收峰強度和位置可能會反映出蛋白結(jié)構(gòu)中β-折疊結(jié)構(gòu)的變化,圖中2θ角在20°的峰值可以反映出β-折疊結(jié)構(gòu)在整個二級結(jié)構(gòu)中所占的比例,本研究結(jié)果中XRD圖譜的兩種豆粕蛋白的吸收峰有顯著差異,發(fā)酵的后β-折疊結(jié)構(gòu)的峰強度顯著增加,說明發(fā)酵豆粕中的β-折疊結(jié)構(gòu)含量明顯增加。
經(jīng)分離、鑒定發(fā)現(xiàn)1 株高產(chǎn)蛋白酶的菌株暹羅芽孢桿菌JL8,本研究對發(fā)酵大豆制品生產(chǎn)過程中蛋白的變化分析提供了重要的理論依據(jù),并且證明了JL8具有潛在的工業(yè)生產(chǎn)可能性。國際范圍內(nèi),尤其亞洲國家對大豆發(fā)酵制品非常青睞,由于其可以降血壓、降血脂促進人體健康,越來越多人喜歡食用發(fā)酵豆制品,例如日本的納豆、韓國的豆醬以及泰國的Thua-nao[8,30,32]等。國內(nèi)外的多項研究表明這些發(fā)酵豆制品可以提高產(chǎn)品的營養(yǎng)成分,將大豆中不易消化的大分子蛋白和碳水化合物,分解成人體易于吸收的多肽和可溶性糖[7]。同時,本研究獲得的高產(chǎn)蛋白酶菌JL8為暹羅芽孢桿菌,雖然國內(nèi)外有大量研究使用芽孢桿菌發(fā)酵豆粕或其他大豆產(chǎn)品,但是多為枯草芽孢桿菌和解淀粉芽孢桿菌[31,33],近期Kostyleva等[34]使用γ-射線人工誘變出可以用于分解大豆蛋白的地衣芽孢桿菌,但是其他芽孢桿菌用于大豆發(fā)酵的研究相對較少,本研究為篩選更多種類的芽孢桿菌用于發(fā)酵大豆制品提供了理論支持。
通過對不同發(fā)酵時間豆粕產(chǎn)品的成分變化可以得出結(jié)論:24 h發(fā)酵的豆粕中的大分子過敏性蛋白已經(jīng)充分降解,即使延長發(fā)酵時間也不會使其進一步降解,并且總蛋白質(zhì)量分數(shù)在24 h達到最大值(46.69±0.24)%。雖然根據(jù)可溶性蛋白和可溶性還原糖的檢測結(jié)果,24 h均不是其最大值,但是其24 h值與其最大值差異并不顯著,例如:可溶性還原糖24 h質(zhì)量分數(shù)為(1.96±0.03)%,36 h質(zhì)量分數(shù)為(1.99±0.02)%,幾乎相同。因此,從生產(chǎn)角度上看發(fā)酵24 h可以充分達到發(fā)酵目的,并且過長時間的發(fā)酵會增加生產(chǎn)成本,也可能導致蛋白過度水解而產(chǎn)生的產(chǎn)品質(zhì)量下降等問題。
Zheng Li等[16]通過使用暹羅芽孢桿菌JL8在與本研究相同條件下發(fā)酵豆粕,結(jié)果顯示大豆球蛋白、β-伴大豆球蛋白和胰蛋白酶抑制劑等蛋白類過敏源均顯著下降,降低幅度分別為86.0%、70.3%和95.0%。總蛋白質(zhì)量分數(shù)從(41.84%±0.84)%顯著上升至(46.69±0.24)%。同時,豆粕的體外消化率提高了8.7%,其中大豆球蛋白和β-大豆球蛋白含量檢測與本實驗中SDS-PAGE分析結(jié)果基本一致。這些結(jié)果均可以反映出豆粕發(fā)酵后影響性有所提高。
最后,通過對24 h發(fā)酵豆粕的SEM圖譜分析,可以得出發(fā)酵已經(jīng)改變了豆粕蛋白的微觀結(jié)構(gòu),并且SEM結(jié)果顯示蛋白質(zhì)具有更加疏松的結(jié)構(gòu),蛋白顆粒更加小。有研究表明,小顆粒的蛋白具有更高的溶解性,可能更有利于人類或者動物的吸收[35]。崔素萍等[36]通過利用紅外光譜分析脫脂豆腐粉蛋白二級結(jié)構(gòu)時發(fā)現(xiàn),大豆蛋白中二級結(jié)構(gòu)主要的類型為β-折疊和無規(guī)卷曲,并且這兩者的含量多少決定大豆蛋白的溶解性高低。本實驗XRD圖反映出發(fā)酵可以顯著提高豆粕蛋白中的β-折疊結(jié)構(gòu),可能對提高大豆蛋白的溶解性有一定促進作用。
本研究使用的暹羅芽孢桿菌具有發(fā)酵周期短、生產(chǎn)成本低等優(yōu)點,因此,具備產(chǎn)業(yè)化開發(fā)和應用的潛在優(yōu)勢。