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        Plackett-Burman和Box-Behnken 試驗(yàn)優(yōu)化嗜熱鏈球菌Q4F8產(chǎn)胞外多糖工藝

        2019-10-29 06:38:32宋雪梅
        食品科學(xué) 2019年20期
        關(guān)鍵詞:產(chǎn)量影響

        劉 剛,梁 琪*,宋雪梅,張 炎

        (甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅省功能乳品工程實(shí)驗(yàn)室,甘肅 蘭州 730070)

        乳酸菌胞外多糖(exopolysaccharide,EPS)是乳酸菌生長和代謝過程中產(chǎn)生到外界環(huán)境中的復(fù)雜長鏈、高分子聚合物,是莢膜多糖或細(xì)胞壁外分泌的黏液多糖的總稱[1]。研究表明,EPS具備功能方面的多種特性,在生理上,EPS表現(xiàn)出良好的抗氧化活性、增強(qiáng)免疫、抗氧化、抗腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生等;在物化特性上,EPS是一種安全無毒的增稠劑、穩(wěn)定劑和黏性發(fā)酵劑應(yīng)用于乳品行業(yè)[2];在酸奶中,EPS可以改善酸乳的質(zhì)地和口感,使酸乳的持水力提高[3]。

        全球每年7萬 t多糖用于食品領(lǐng)域中作為增稠劑和穩(wěn)定劑。乳酸菌EPS有廣闊的工業(yè)應(yīng)用價(jià)值,但由于其EPS產(chǎn)量低,乳酸菌菌株穩(wěn)定性差,因而在工業(yè)生產(chǎn)中規(guī)模性應(yīng)用受到限制[4],因此,乳酸菌EPS產(chǎn)量的提高是目前急需解決的難題。要想解決這一難題,就必須篩選高產(chǎn)菌株及其發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化。微生物EPS不僅受到自身菌落的影響,而且受到溫度、壓力和光照強(qiáng)度等生長環(huán)境的顯著影響,其培養(yǎng)條件、培養(yǎng)基成分的不同,不僅造成乳酸菌EPS產(chǎn)量有影響,甚至?xí)绊懫浣Y(jié)構(gòu)和功能性質(zhì)。目前乳酸菌EPS研究中,優(yōu)化后乳酸菌菌株EPS產(chǎn)率在17.8%~28.75%有不同程度的提高[5]。因此,通過優(yōu)化發(fā)酵工藝可有效提高菌株EPS產(chǎn)量。此外,響應(yīng)面分析法已廣泛應(yīng)用于許多生物技術(shù)過程,如培養(yǎng)條件和一些生物物質(zhì)生產(chǎn)的優(yōu)化[6],它克服了傳統(tǒng)方法的不足,在培養(yǎng)條件和工藝參數(shù)方面取得了良好的優(yōu)化效果[7]。

        本實(shí)驗(yàn)以甘肅藏區(qū)牦牛乳中篩選得到的嗜熱鏈球菌Q4[8]為野生菌株,誘變后得到的突變株Q4F8為優(yōu)化菌株,以EPS含量為響應(yīng)值,優(yōu)化培養(yǎng)條件及培養(yǎng)基組成,旨在進(jìn)一步提高EPS的產(chǎn)量,為乳酸菌菌類多糖的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論支持。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 菌株

        嗜熱鏈球菌(Streptococcus thermophilus)Q4由甘肅省功能乳品工程實(shí)驗(yàn)室分離純化并于-80 ℃超低溫冰箱冷凍保藏。

        1.1.2 培養(yǎng)基

        GM17培養(yǎng)基:多聚蛋白胨5 g,植物蛋白胨5 g,酵母膏2.5 g,牛肉膏5 g,乳糖5 g,抗壞血酸鈉0.5 g,MgSO4·7H2O 0.25 g,磷酸二氫鉀5 g,瓊脂15 g,蒸餾水1 000 mL,調(diào)節(jié)pH 6.9±0.2,于121 ℃高溫滅菌20 min。

        脫脂乳培養(yǎng)基:12%的脫脂乳,于115 ℃滅菌15 min。

        1.1.3 試劑

        葡萄糖、蔗糖、乳糖、半乳糖、大豆蛋白胨、胰蛋白胨、魚蛋白胨、Na2HPO4、NaH2PO4、硫酸二乙酯(diethyl sulfate,DES)、Na2S2O3、98%無水乙醇、濃硫酸、氯化鈉、三氯乙酸、苯酚等均為分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        723型可見分光光度計(jì) 上海光譜儀器有限公司;PHS-3C pH計(jì) 上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;YX280型手提式不銹鋼壓力蒸汽滅菌鍋 上海三申醫(yī)療器械有限公司;SW-CJ-2FD型雙人單面凈化工作臺蘇州凈化設(shè)備有限公司;紫外燈 南京華強(qiáng)電子有限公司;LVDV-1數(shù)字旋轉(zhuǎn)黏度計(jì) 上海方瑞儀器有限公司;TGL-20M臺式高速冷凍離心機(jī) 長沙湘儀離心機(jī)儀器有限公司;85-2控溫磁力攪拌器 金壇市恒豐儀器廠;DW-86L386立式超低溫保存箱 青島海爾特種電器有限公司;電熱恒溫培養(yǎng)箱、電熱恒溫水浴鍋 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;GZX-GF101-2-BS-II電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司;NRY-200恒溫?fù)u床 上海南榮實(shí)驗(yàn)室設(shè)備有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 菌株的活化與菌懸液制備[9]

        取實(shí)驗(yàn)室甘油管中凍藏的嗜熱鏈球菌菌株Q4解凍,脫脂乳中培養(yǎng)3 次。將活化后的菌2 環(huán)接種于裝有GM17液體培養(yǎng)基30 mL的250 mL三角瓶中,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,形成種子液。按3%種子液轉(zhuǎn)接到另一瓶GM17液體培養(yǎng)基中,相同條件下,培養(yǎng)至對數(shù)生長期的培養(yǎng)液,取出菌液4 000 r/min、4 ℃冷凍離心15 min。收集菌體并用0.85%無菌生理鹽水洗滌,最后將菌體懸浮于無菌生理鹽水中且調(diào)整細(xì)胞濃度為108CFU/mL作為待處理細(xì)菌懸浮液,于4 ℃冰箱保藏備用。

        1.3.2 菌株EPS含量測定

        葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制參照薩如拉等[10]的方法并稍作修改。已有研究證實(shí),在加熱條件下采用酸-乙醇沉淀的方法,多糖提取率可以提高60%[11]。多糖在濃硫酸的作用下先水解為單糖,并迅速脫水生成糖醛衍生物,然后與苯酚生成橙黃色化合物,通過比色法測定糖含量,葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程為:y=0.009 1x-0.001,R2=0.998 1。

        參照文獻(xiàn)[12-13]的方法并稍作修改。將10 mL GM17發(fā)酵液(發(fā)酵30 h)在95 ℃水浴鍋中加熱10 min,以此達(dá)到去酶活性的目的;待冷卻后置于冷凍離心機(jī)中4 ℃、8 000 r/min離心。15 min后收集上清液并加入5 mL 12% TCA溶液,封口膜封口,放在160 r/min搖床上反應(yīng)1 h并且讓其靜置30 min。再次4 ℃、8 000 r/min冷凍離心15min后收集上清液,將3 倍體積的無水乙醇加入到上清液中,封存于4 ℃冰箱隔夜沉淀(24 h);取沉淀4 ℃、8 000 r/min冷凍離心15 min,然后沉淀用去離子水溶解沉淀物,與去離子水中透析3 d,每4 h換水一次,冷凍干燥得粗多糖。EPS含量的測定采用硫酸-苯酚法[14]。

        1.3.3 菌株的誘變篩選[15]

        采用改裝的超凈工作臺進(jìn)行紫外和DES的復(fù)合誘變,篩選出遺傳性能穩(wěn)定的EPS高產(chǎn)誘變菌株。最佳紫外誘變條件為:誘變距離25 cm,誘變時(shí)間150 s;最佳DES誘變條件為:DES體積分?jǐn)?shù)1.0%,誘變溫度36 ℃,誘變時(shí)間26 min。

        1.3.4 菌株特性分析

        為得到活力優(yōu)良的菌株,需要將菌株的生長情況、OD值等進(jìn)行測定,將誘變前和誘變后活化的菌株,按3%的比例接種于GM17培養(yǎng)基,37 ℃恒溫培養(yǎng),每2 h取樣,測定菌液的pH值、OD600nm、活菌數(shù),連續(xù)測定至24 h,以時(shí)間和生長特性作圖繪制嗜熱鏈球菌的生長曲線。

        1.3.5 培養(yǎng)基單因素試驗(yàn)

        在GM17液體培養(yǎng)基基礎(chǔ)上,選擇不同的碳源和氮源,其他選擇的培養(yǎng)條件為選擇連續(xù)活化3 代的菌株、接種量3%、培養(yǎng)溫度37 ℃、初始pH 6.9和培養(yǎng)時(shí)間30 h,并測定EPS含量,以EPS為指標(biāo)確定該嗜熱鏈球菌產(chǎn)EPS的最佳培養(yǎng)條件。

        分別選擇質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.5%的4 種碳源(葡萄糖、蔗糖、乳糖、半乳糖)、0.5%的3 種氮源(胰蛋白胨、大豆蛋白胨、魚蛋白胨)、3 個(gè)碳氮比(乳糖-魚蛋白胨-胰蛋白胨1∶1∶1、1∶2∶2、2∶1∶1)、5 個(gè)碳源質(zhì)量分?jǐn)?shù)(1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3.0%)和5 個(gè)pH值(5.5、6.0、6.5、7.0、7.5)做對比試驗(yàn),以EPS含量為指標(biāo)確定最佳碳源、最佳氮源、最佳碳氮比和最佳碳源質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

        1.3.6 培養(yǎng)條件單因素試驗(yàn)

        在GM17培養(yǎng)基中,不同的培養(yǎng)條件下采用硫酸苯酚法測定菌體產(chǎn)生的EPS含量,確定該嗜熱鏈球菌產(chǎn)EPS的最佳培養(yǎng)條件。

        分別選擇5 個(gè)接種量水平(1%、2%、3%、4%和5%)、5 個(gè)培養(yǎng)溫度水平(27、32、37、42 ℃和47 ℃)、5 個(gè)培養(yǎng)時(shí)間水平(20、24、28、32 h和36 h)做對比試驗(yàn),以EPS含量為指標(biāo)確定最佳接種量、最佳培養(yǎng)溫度和最佳培養(yǎng)時(shí)間。

        1.3.7 Plackett-Burman(PB)試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)(X1)、pH值(X2)、接種量(X3)、培養(yǎng)溫度(X4)和培養(yǎng)時(shí)間(X5)5 個(gè)因素的水平值,以EPS產(chǎn)量為響應(yīng)值進(jìn)行2水平的PB試驗(yàn)設(shè)計(jì)及數(shù)據(jù)處理,確定顯著性影響因素。PB試驗(yàn)因素與水平設(shè)計(jì)見表1。

        表1 PB試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平Table 1 Factors and levels used for Plackett-Burman design

        1.3.8 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        根據(jù)PB試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果,選取乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)、初始pH值和培養(yǎng)溫度為影響EPS含量的3 個(gè)主要因素,以EPS產(chǎn)量為響應(yīng)值,根據(jù)Box-Behnken的設(shè)計(jì)原理[16],進(jìn)行3因素3水平響應(yīng)面試驗(yàn)。Box-Behnken試驗(yàn)因素與水平見表2。

        表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平Table 2 Factors and levels of Box-Behnken design

        1.3.9 EPS抑菌性實(shí)驗(yàn)

        制備雙層瓊脂平板,分別涂布大腸桿菌、金黃色葡萄球菌和沙門氏菌,采用牛津杯打孔法打孔,取真空冷凍干燥的EPS溶解于蒸餾水中,加入預(yù)先制備好的孔徑中,于4 ℃擴(kuò)散4 h,置于37 ℃培養(yǎng),測量抑菌圈直徑。

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

        本研究涉及的數(shù)據(jù)除葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線外,均重復(fù)3 次。采用Design-Expert 8.0.6軟件進(jìn)行PB試驗(yàn)和Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及數(shù)據(jù)處理,用Origin 8.0軟件進(jìn)行繪圖處理,SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,采用ANOVA,并選用Duncan多重比較進(jìn)行顯著性分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 復(fù)合誘變選育高產(chǎn)EPS菌株

        圖1 復(fù)合誘變菌株選育Fig. 1 Exopolysaccharide yields of the original and mutant strains

        對實(shí)驗(yàn)室保藏的菌株Q4在最佳條件下進(jìn)行先化學(xué)(DES)后紫外的復(fù)合誘變,經(jīng)過菌落特征和黏度的初篩(篩選菌落直徑大、邊緣整齊、顯微鏡觀察為鏈球狀的菌落),EPS的復(fù)篩以及菌株的穩(wěn)定性分析,篩選出1 株穩(wěn)定性良好的高產(chǎn)EPS嗜熱鏈球菌菌株Q4F8,突變株比原始菌株產(chǎn)量提高80.95%(圖1)。

        2.2 菌株的生長特性分析

        圖2 嗜熱鏈球菌的生長曲線Fig. 2 Growth curves of Streptococcus thermophiles Q4 and Q4F8

        由圖2可以看出,經(jīng)誘變后菌株比初始菌株對數(shù)期提前,且達(dá)到穩(wěn)定期時(shí)誘變菌株比原始菌株菌體濃度和OD值均有所提高,說明發(fā)酵活力和生物量都有不同程度的提高。突變株更有利于吸收外界環(huán)境營養(yǎng),能更好地繁殖和產(chǎn)生代謝產(chǎn)物。

        2.3 培養(yǎng)基成分對嗜熱鏈球菌Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        2.3.1 碳源種類對EPS的影響

        圖3 碳源對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 3 Effect of carbon sources on EPS yield of Q4F8

        除菌株自身遺傳因素外,其培養(yǎng)基組成(碳源、氮源)也會對乳酸菌EPS產(chǎn)量造成很大影響[17]。因此,可通過優(yōu)化EPS的合成條件提高菌株產(chǎn)EPS能力。由圖3可知,嗜熱鏈球菌Q4F8可利用多種碳源合成EPS。其中半乳糖作為碳源時(shí),EPS產(chǎn)量最少,為98.68 mg/L,并且和其他碳源相比存在顯著差異(P<0.05)。當(dāng)碳源為乳糖時(shí),Q4F8 EPS產(chǎn)量最高,達(dá)到154.21 mg/L(P<0.05)。說明嗜熱鏈球菌Q4F8利用可分解乳糖,利用乳糖能力強(qiáng),這與Cheirsilp[18]和Desaia[19]等的研究一致,以乳糖為碳源時(shí),EPS產(chǎn)量最高。

        2.3.2 氮源種類對EPS的影響

        圖4 氮源對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 4 Effect of nitrogen sources on EPS yield of Q4F8

        乳酸菌合成EPS時(shí),氮源是必須的營養(yǎng)成分,氮源種類和添加量的不同都會對菌株分泌EPS造成不同影響[20-21]。由圖4可以看出,多種氮源對菌株的發(fā)酵產(chǎn)糖有不同影響。當(dāng)?shù)礊轸~蛋白胨時(shí),該菌株合成EPS最大,其次為胰蛋白胨,最后是大豆蛋白胨,3 種氮源對菌株Q4F8合成EPS具有顯著性差異(P<0.05),說明嗜熱鏈球菌Q4F8利用動物蛋白胨作氮源的能力優(yōu)于植物蛋白胨。氮源通過影響乳酸菌的生長,使菌體的密度增加,從而影響EPS的產(chǎn)量[22]。

        2.3.3 碳氮比對EPS的影響

        圖5 碳氮比對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 5 Effects of carbon to nitrogen ratio on EPS yield of Q4F8

        碳氮比對菌株的生長和代謝有直接影響,碳氮比相對低時(shí),有利于菌體生長,相反,碳氮比相對較高時(shí)則變化不顯著,但當(dāng)碳氮比過高時(shí),相當(dāng)于滲透壓升高,影響了菌體的生長代謝功能[23]。由圖5可以看出,不同碳氮比對菌株Q4F8合成EPS存在顯著性差異(P<0.05)。而當(dāng)碳氮比在1∶2∶2和2∶1∶1時(shí),其無差異顯著性(P>0.05)??紤]到EPS產(chǎn)量的差別,碳氮比在2∶1∶1的條件下其EPS要高于1∶2∶2,其次從原料的經(jīng)濟(jì)基礎(chǔ)上考慮。因此,選擇碳氮比2∶1∶1為最佳碳氮比進(jìn)行下一步試驗(yàn)。

        2.3.4 碳源(乳糖)質(zhì)量分?jǐn)?shù)對EPS的影響

        圖6 乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 6 Effect of lactose concentration on EPS yield of Q4F8

        碳源是乳酸菌菌株細(xì)胞生長及其重要的能量來源,對EPS產(chǎn)量有很大影響[24],碳源影響EPS合成相關(guān)的酶從而對EPS的合成造成影響。如圖6所示,不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)乳糖對菌株Q4F8合成EPS的影響存在顯著性差異(P<0.05)。乳糖溶液在1.0%~1.5%范圍內(nèi),菌株合成EPS的能力呈上升趨勢,其中1.5%時(shí)EPS最高。乳酸菌菌體細(xì)胞中含有碳源的反饋抑制體系[25],當(dāng)乳糖高于1.5%時(shí),其EPS產(chǎn)量呈現(xiàn)下降趨勢,表現(xiàn)出高濃度抑制EPS合成的現(xiàn)象。

        2.4 發(fā)酵條件對嗜熱鏈球菌Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        2.4.1 初始pH值對菌株Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        圖7 pH值對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 7 Effect of pH value on EPS yield of Q4F8

        不同的乳酸菌其生長特性與合成EPS都有最適的pH值范圍。pH值對菌體的代謝影響主要是通過影響細(xì)胞膜功能和營養(yǎng)物質(zhì)的離子化程度影響代謝[23]。由圖7可以看出,pH值太高或太低都不利于其EPS的合成,在pH 5.5~6.5時(shí)變化差異顯著(P<0.05),菌株Q4F8合成EPS在pH 6.5時(shí)達(dá)到最大值,初始pH值大于6.5時(shí),其EPS產(chǎn)量降低水平不明顯(P<0.05)。說明菌株Q4F8在中性環(huán)境下,更有利于其代謝產(chǎn)物的積累,其最適pH值為6.5。

        2.4.2 接種量對菌株Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        由圖8可知,當(dāng)接種量在1%~4%時(shí),由于培養(yǎng)基中營養(yǎng)豐富,伴隨著接種量的增加,菌株合成EPS的能力也在增加。當(dāng)接種量超過4%時(shí),菌株合成EPS的能力呈下降趨勢,在營養(yǎng)成分一定時(shí),接入過多菌種,其營養(yǎng)物質(zhì)加速消耗,用于合成EPS的能力不足,導(dǎo)致EPS產(chǎn)量下降,與Raza等[26]報(bào)道的結(jié)果一致。當(dāng)接種量為3%時(shí),EPS產(chǎn)量最高。

        圖8 接種量對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 8 Effects of inoculum amount on EPS yield of Q4F8

        2.4.3 培養(yǎng)溫度對菌株Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        圖9 培養(yǎng)溫度對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 9 Effects of fermentation temperature on EPS yield of Q4F8

        由圖9可以看出,培養(yǎng)溫度對嗜熱鏈球菌Q4F8合成EPS的影響差異顯著(P<0.05)。隨著溫度的升高,合成EPS產(chǎn)量增加,當(dāng)溫度為42 ℃時(shí),EPS產(chǎn)量最大,隨后隨著溫度的升高,EPS產(chǎn)量呈下降趨勢。說明低溫和高溫環(huán)境都會抑制乳酸菌EPS的合成,低溫時(shí)菌體生長緩慢,數(shù)量不足,進(jìn)而影響其合成,高溫時(shí)可能導(dǎo)致合成EPS的酶活性下降。因此,本試驗(yàn)選擇42 ℃為最佳培養(yǎng)溫度。

        2.4.4 培養(yǎng)時(shí)間對菌株Q4F8產(chǎn)EPS的影響

        圖10 培養(yǎng)時(shí)間對Q4F8菌株EPS產(chǎn)量的影響Fig. 10 Effect of fermentation time on EPS yield of Q4F8

        如圖10所示,隨著時(shí)間的延長,EPS產(chǎn)量呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢,下降可能是由于酶解條件或者營養(yǎng)環(huán)境惡化等參數(shù)的改變所致[27]。隨著時(shí)間的延長合成EPS產(chǎn)量呈現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),Q4F8在培養(yǎng)28 h時(shí),其EPS產(chǎn)量達(dá)到最大值。隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,菌體出現(xiàn)自溶現(xiàn)象,分解出代謝多糖的酶,進(jìn)而降低EPS產(chǎn)量。

        2.5 PB試驗(yàn)結(jié)果

        表3 PB試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Plackett-Burman design with experimental results

        PB試驗(yàn)根據(jù)2水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì),通過比較2水平因素的差異性和整體的差異性確定因素之間的顯著性,篩選因素達(dá)到節(jié)約試驗(yàn)耗材、提高試驗(yàn)響應(yīng)值的目的[28]。PB試驗(yàn)設(shè)計(jì)及響應(yīng)值見表3。利用Design-Expert 8.0.6軟件對表3數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,由表4可知,模型F值為55.41,表明該模式具有重要意義,R2=0.978 8,說明存在97.88%的試驗(yàn)數(shù)據(jù)可用該模型解釋。對合成EPS影響極顯著(P<0.01)的因素依次為X1>X2>X4>X3,X5對合成EPS影響顯著(P<0.05)。因此,選取乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)、pH值和培養(yǎng)溫度3 個(gè)因素進(jìn)行Box-Behnken試驗(yàn)。

        表4 PB試驗(yàn)方差分析Table 4 Analysis of variance of experimental results from Plackett-Burman design

        2.6 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果

        Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)水平及響應(yīng)值見表5,對其數(shù)據(jù)進(jìn)行處理的方差分析見表6。該模型差異極顯著(P<0.01)。模型的失擬項(xiàng)無顯著性差異(P=0.216 6>0.05),說明所選的模型擬合程度好,可較好地?cái)M合試驗(yàn)結(jié)果。確定系數(shù)R2為0.995 4,和調(diào)整確定系數(shù)R2Adj為0.989 4基本接近,表明模型的回歸方程和相關(guān)性都很好。因此,Box-Behnken設(shè)計(jì)是可靠的,該模型可較好地應(yīng)用于嗜熱鏈球菌合成EPS的理論預(yù)測。模型一次項(xiàng)X1對響應(yīng)值EPS產(chǎn)量影響達(dá)到顯著水平(P<0.05),一次項(xiàng)X2、X3對響應(yīng)值EPS產(chǎn)量影響達(dá)到極顯著水平(P<0.01);交互項(xiàng)X1X2、X1X3對響應(yīng)值EPS產(chǎn)量影響不顯著(P>0.05),X2X3對響應(yīng)值EPS產(chǎn)量影響達(dá)到極顯著水平(P<0.01);平方項(xiàng)X12、X22、X32對響應(yīng)值EPS產(chǎn)量影響達(dá)到極顯著水平(P<0.01);3 個(gè)因素對合成EPS的影響大小依次為:X2>X3>X1,表明,3 個(gè)因素并不是簡單的線性關(guān)系。經(jīng)修正不顯著項(xiàng)后,多元回歸擬合模型的二次多項(xiàng)式方程為:

        表5 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 5 Box-Behnken design with experimental results

        表6 Box-Behnken試驗(yàn)方差分析Table 6 Analysis of variance of experimental results from Box-Behnken design

        2.7 各因素之間響應(yīng)面交互作用分析

        采用Design-Expert 8.0.6軟件對試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行響應(yīng)面圖繪制,通過響應(yīng)面可直觀地分析各因素及因素相互之間的交互作用對響應(yīng)值的影響[29]。各因素之間響應(yīng)面3D圖和等高線圖能直觀反映出其相互作用的強(qiáng)弱,橢圓形的等高線表示兩因素之間的交互作用存在顯著性差異,圓形則表示兩因素之間交互作用無顯著性差異[30-31]。

        圖11 各因素交互作用對EPS產(chǎn)量影響的等高線和響應(yīng)面圖Fig. 11 Contour and response surface plots showing the interactive effects of various factors on EPS production

        圖11 a可以看出,當(dāng)培養(yǎng)溫度控制在0水平時(shí),乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)和pH值的等高線近似圓形,表明乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)和pH值的交互作用對EPS的合成影響不顯著;固定乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)為一定值,EPS隨著pH值的升高變化不明顯,表明乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)和pH值的交互作用對EPS的合成影響不顯著;隨著乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加,EPS產(chǎn)量先增加后減小,乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.40%~1.60%之間,EPS產(chǎn)量最大。

        圖11b可以看出,固定pH值制在0水平時(shí),乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)和培養(yǎng)溫度的等高線近似圓形,表明乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)和培養(yǎng)溫度的交互作用對EPS的合成影響不顯著;乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)固定時(shí),隨著培養(yǎng)溫度的升高,EPS產(chǎn)量呈現(xiàn)先增后減小的趨勢,培養(yǎng)溫度在39~40 ℃之間,EPS產(chǎn)量最大。

        圖11c可以看出,乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0水平時(shí),培養(yǎng)溫度和pH值的等高線為橢圓形,表明培養(yǎng)溫度和pH值的交互作用對EPS的合成影響達(dá)到顯著水平;固定培養(yǎng)溫度為一定值,其隨著pH值的升高,其EPS呈現(xiàn)增加的趨勢。

        2.8 發(fā)酵條件的優(yōu)化及驗(yàn)證結(jié)果

        對回歸模型進(jìn)行優(yōu)化分析,獲得嗜熱鏈球菌Q4F8合成EPS的最佳工藝條件為pH 6.90、培養(yǎng)溫度為42 ℃、乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.51%,并且在此條件下EPS產(chǎn)量的理論預(yù)測值為189.98 mg/L。在最優(yōu)條件下進(jìn)行3 次重復(fù)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),獲得的EPS產(chǎn)量為191.47 mg/L,與響應(yīng)面優(yōu)化預(yù)測的結(jié)果基本一致,響應(yīng)面分析方法得到的嗜熱鏈球菌合成EPS的工藝條件真實(shí),在一定程度上具有實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。

        2.9 EPS抑菌性分析

        表7 EPS抑菌性實(shí)驗(yàn)Table 7 Antimicrobial activity of the EPS produced by Q4F8

        從表7得出,突變株具有較好的抑制食品中常見的三大致致病菌滋生的效果,其中突變株產(chǎn)生的EPS對大腸桿菌抑菌效果最好到達(dá)(14.209±0.853)mm。從而在生產(chǎn)中以提高發(fā)酵乳制品的貨架期和益生性能有明顯的效果。

        3 結(jié) 論

        突變株有效提高了自身的生長性能,對環(huán)境的適應(yīng)能力更強(qiáng),更有利于自身菌體的生長及次生代謝產(chǎn)物的生產(chǎn),尤其是EPS的產(chǎn)生。本研究從碳源和氮源種類、碳源質(zhì)量濃度、碳氮比、接種量、pH值、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時(shí)間對EPS影響的單因素基礎(chǔ)上,聯(lián)和采用PB試驗(yàn)和Box-Behnken試驗(yàn)的方法,建立了嗜熱鏈球菌Q4F8發(fā)酵EPS條件的多項(xiàng)式模型,經(jīng)顯著性檢驗(yàn)分析和響應(yīng)面分析,其最佳工藝參數(shù)為pH 6.90、培養(yǎng)溫度42 ℃和乳糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.51%,獲得的理論值為189.98 mg/L。經(jīng)驗(yàn)證實(shí)際值為191.47 mg/L,證明該模型準(zhǔn)確可靠。該研究為今后對此菌株EPS結(jié)構(gòu)、生理功能和機(jī)理研究奠定了基礎(chǔ),同時(shí)也為嗜熱鏈球菌Q4F8產(chǎn)EPS的工業(yè)化制備和應(yīng)用提供理論參考。突變株產(chǎn)生的EPS能有效抑制食品中常見的三大致病菌滋生,可更好地用于發(fā)酵工業(yè)及其食品產(chǎn)業(yè)中,以提高發(fā)酵產(chǎn)品的貨架期和益生性能,為今后在功能性乳酸菌發(fā)酵劑的研究及其產(chǎn)品的貯藏性方面提供進(jìn)一步的研究基礎(chǔ)。

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