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        幾種三葉青組織培養(yǎng)快繁體系的比較及其優(yōu)化

        2019-10-23 05:29:36洪春桃沈登鋒魏斌章建紅
        浙江農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年10期
        關(guān)鍵詞:不定根腋芽莖段

        洪春桃,沈登鋒,魏斌,章建紅

        (寧波市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院 林業(yè)研究所,浙江 寧波 315040)

        三葉青(Tetrastigmahemsleyanum),中文學(xué)名為三葉崖爬藤,又名蛇附子、石抱子、金線吊葫蘆、三葉對(duì)、小扁藤、三葉扁藤、攔山虎、雷膽子等,藥名為三葉青,是葡萄科崖爬藤屬多年生蔓生藤本植物,為中國特有珍稀中藥植物[1-2]。臨床上已逐步用于肝癌、肺癌、白血病與艾滋病等疾病的治療,被稱為安全無毒的“植物青霉素”[3]。由于人為過度采挖,三葉青野生資源銳減,已處于瀕危狀態(tài)[1, 4],因此,開展三葉青的組織快繁技術(shù)研究十分重要。許多研究人員進(jìn)行了一定的初步研究,但是目前已報(bào)道的三葉青組織快繁體系中外植體選擇、滅菌方式、培養(yǎng)基配方和預(yù)期效果等都各不相同,給種植戶和研究人員在選擇三葉青組織培養(yǎng)方法時(shí)帶來較多不便。筆者通過文獻(xiàn)檢索篩選得到11種不同的三葉青的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)體系,從外植體選擇、滅菌、腋芽誘導(dǎo)、愈傷組織誘導(dǎo)、叢生芽增殖和不定根誘導(dǎo)等方面對(duì)這11種體系進(jìn)行評(píng)價(jià)和優(yōu)化,以期建立一種最佳的三葉青組織快繁的技術(shù)體系,為今后三葉青組織培養(yǎng)的快速繁殖體系提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料和培養(yǎng)條件

        實(shí)驗(yàn)材料為寧波市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院在鄞州區(qū)橫溪鎮(zhèn)大岙村栽培的三葉青種苗,2017年5月采集嫩葉和腋芽莖段帶回實(shí)驗(yàn)室組培室進(jìn)行組織培養(yǎng)試驗(yàn)。組培室培養(yǎng)溫度為(25±2)℃,光周期為12 h∶12 h(光/暗),光照強(qiáng)度為4 000 lx。

        1.2 方法

        1.2.1 外植體滅菌

        綜合歸納不同文獻(xiàn)的試驗(yàn)方法,篩選出3種外植體滅菌方式進(jìn)行三葉青外植體的滅菌試驗(yàn),每組處理具體方法如下:處理1,選擇剪成塊狀的葉片與1~2 cm帶腋芽莖段作為外植體,流水沖洗3~4 h,75%乙醇浸泡1 min,含2~3滴吐溫20的0.1% HgCl215 min(40~50 r·min-1搖床振蕩消毒),MS培養(yǎng)基中加入1 mg·L-1氨芐、0.3 g·L-1真菌抑菌劑[5];處理2,選擇剪成塊狀的葉片與1~2 cm帶腋芽莖段作為外植體,流水沖洗30~60 min,70%乙醇浸泡1 min,含2~3滴吐溫20的0.1% HgCl2浸泡15 min,期間輕搖晃,無菌水清洗5次,無菌濾紙吸干水分,切去處理后莖段的兩端[6];處理3,選擇剪成塊狀的葉片與1~2 cm帶腋芽莖段作為外植體,再用5%洗衣粉水溶液漂洗5 min,再用自來水沖洗30 min,75%乙醇擦洗表面,0.1% HgCl2消毒5 min,2%次氯酸鈉消毒20 min,無菌水沖洗4~6次,再將莖段切成0.5~1.0 cm的小段,葉片剪成0.5 cm×0.5 cm的塊狀[7]。每個(gè)處理葉片設(shè)5個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)20片,共100片。每個(gè)處理莖段設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)10個(gè),共30個(gè)帶腋芽莖段,接種7 d后統(tǒng)計(jì)污染情況。

        1.2.2 腋芽誘導(dǎo)

        篩選5種文獻(xiàn)報(bào)道的腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基,采用滅菌腋芽莖段進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)試驗(yàn),具體培養(yǎng)基配方如下:S1,WPM+0.8 mg·L-16-BA[5];S2,1/2MS+0.5 mg·L-16-BA+0.05 mg·L-1NAA[6];S3,1/2MS+0.5 mg·L-16-BA[8];S4,MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA[7];S5,1/2MS+0.8 mg·L-16-BA+1.0 mg·L-1氨芐+0.3 mg·L-1真菌抑菌劑+25%活性炭(筆者自配培養(yǎng)基)。每個(gè)處理設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)接種5個(gè)帶腋芽莖段,接種28 d后觀察并統(tǒng)計(jì)腋芽生長情況。

        1.2.3 不定芽增殖

        篩選4種文獻(xiàn)報(bào)道的不定芽增殖誘導(dǎo)的培養(yǎng)基,并對(duì)其進(jìn)行不同組別試驗(yàn),具體培養(yǎng)基配方如下:C1,MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA[9];C2,MS+3.0 mg·L-16-BA+2.0 mg·L-1NAA+2 g·L-1蛋白胨[10];C3,2/3MS+2.0 mg·L-16-BA+2.0 mg·L-1NAA[11];C4,MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1IBA[12]。以誘導(dǎo)得到的腋芽作為材料,接種到不定芽增殖培養(yǎng)基上,每個(gè)處理設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)至少接種3個(gè),接種70 d后觀察不定芽的愈傷生長與增殖情況。

        1.2.4 不定根誘導(dǎo)試驗(yàn)

        將獲得的不定芽在節(jié)間處切下,進(jìn)行不定根誘導(dǎo)實(shí)驗(yàn)。篩選6種文獻(xiàn)報(bào)道的不定根誘導(dǎo)的培養(yǎng)基,具體配方如下:R1,WPM+1.0 mg·L-1NAA+1.0 mg·L-1IBA[5];R2,1/2MS+0.5 mg·L-1IBA[6];R3,MS+1.0 mg·L-1NAA[13];R4,1/2MS+1.0 mg·L-1NAA+0.5 mg·L-1IBA[7];R5,MS+0.5 mg·L-1IBA[14];R6,1/2MS+1.0 mg·L-1NAA+1.0 mg·L-16-BA[11]。每個(gè)處理設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)接種5個(gè)腋芽,接種14 d后觀察并統(tǒng)計(jì)不定根生長情況。

        1.3 統(tǒng)計(jì)分析

        所有數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析均使用SPSS 18.0軟件完成。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 外植體滅菌

        用3種不同外植體滅菌方式對(duì)三葉青含腋芽莖段與葉片進(jìn)行處理,7 d后統(tǒng)計(jì)污染情況。由表1可知,處理2中2種外植體滅菌后效果較佳,未污染率達(dá)到97%;其次是處理1,葉片未污染率為92%,腋芽莖段為83%;處理3的滅菌效果較差,對(duì)2種外植體的滅菌效果均未達(dá)到50%。由此可見,以含腋芽莖段與葉片為外植體時(shí),在0.1% HgCl2中添加適量表面活性劑吐溫20有助于增強(qiáng)滅菌效果。該方法也廣泛應(yīng)用于其他藥用植物外植體的滅菌,如廣豆根[15]、金線蓮[16]等。

        表1 滅菌方式對(duì)三葉青外植體的影響

        2.2 腋芽誘導(dǎo)

        用5種不同培養(yǎng)基配方進(jìn)行腋芽的誘導(dǎo)培養(yǎng),結(jié)果顯示,S3培養(yǎng)基腋芽成活率最高,為96.7%;其次為S4、S1和S2培養(yǎng)基,其腋芽成活率分別為86.7%、83.3%和76.7%,S5培養(yǎng)基成活率最低(表2)。培養(yǎng)16 d后,S1~S4培養(yǎng)基出現(xiàn)不同程度的褐化,在S4培養(yǎng)基培養(yǎng)28 d后腋芽基部有愈傷組織生成(圖1)。S5培養(yǎng)基腋芽的成活率低,可能與添加的氨芐霉素和真菌抑制劑有關(guān)。此外,S5培養(yǎng)基可以抑制后期腋芽的褐化,說明加入活性炭對(duì)防褐化具有明顯的效果。綜上,采用S1,S2和S4培養(yǎng)基獲得的腋芽成活率基本與參考的文獻(xiàn)結(jié)果一致,但這些文獻(xiàn)沒有涉及褐化問題[5, 6, 17]。錢麗華[8]的研究沒有明確測(cè)定S3培養(yǎng)基中三葉青腋芽的成活率,本研究發(fā)現(xiàn)其成活率顯著都高于其他培養(yǎng)基,因此,建議采用1/2MS+0.5 mg·L-16-BA+25%活性炭進(jìn)行腋芽的誘導(dǎo)。

        表2 5種培養(yǎng)基配方培養(yǎng)16 d后三葉青腋芽的誘導(dǎo)情況

        圖1 S3培養(yǎng)基和S4培養(yǎng)基上的腋芽

        2.3 不定芽誘導(dǎo)增殖

        用4種不同培養(yǎng)基進(jìn)行不定芽誘導(dǎo)增殖培養(yǎng),結(jié)果發(fā)現(xiàn),C1培養(yǎng)基的愈傷組織生長形態(tài)較好,多表現(xiàn)為深綠色,結(jié)構(gòu)比較致密,其腋芽的出愈率為100%,易分化產(chǎn)生不定芽,且不定芽的增殖倍數(shù)為3.1(表3,圖2)。其次為C4培養(yǎng)基,腋芽的出愈率為93.3%,愈傷組織形態(tài)為淺綠色,結(jié)構(gòu)致密,但不定芽誘導(dǎo)效果較C1培養(yǎng)基差。C2和C3培養(yǎng)基誘導(dǎo)的愈傷組織及其分化能力均較差,結(jié)構(gòu)較為疏松,不定芽長勢(shì)弱(表3)。表明高濃度的6-BA和低濃度的NAA有助于三葉青愈傷組織的誘導(dǎo),該結(jié)果與大多數(shù)報(bào)道一致[8, 9,17]。因此,建議采用MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA作為三葉青不定芽誘導(dǎo)增殖的較佳培養(yǎng)基。

        表3 4種培養(yǎng)基培養(yǎng)70 d后不定芽的增殖情況

        圖2 4種培養(yǎng)基培養(yǎng)70 d后不定芽的誘導(dǎo)增殖情況

        2.4 不定根誘導(dǎo)

        用6種不同培養(yǎng)基配方進(jìn)行三葉青不定根的誘導(dǎo)培養(yǎng),結(jié)果如表4和圖3所示。R2培養(yǎng)基誘導(dǎo)的不定根最多,平均為8.6個(gè),平均根長為6.6 cm,有新葉長出,且長勢(shì)茂盛,為最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基(圖3中B)。R1、R3、R4均含有1.0 mg·L-1的NAA,誘導(dǎo)出的不定根有大量的根毛,R1培養(yǎng)基盡管有新葉長出,但長勢(shì)一般,R3和R4培養(yǎng)基誘導(dǎo)的根數(shù)較少,生長也較為緩慢,且根部有愈傷組織長出,不適合做不定根的誘導(dǎo)。 R6培養(yǎng)基包含1.0 mg·L-1NAA和1.0 mg·L-16-BA,嚴(yán)重限制了不定根的誘導(dǎo)和腋芽的生長,不建議使用該培養(yǎng)基誘導(dǎo)不定根(圖3中F)。以上培養(yǎng)基與前人研究結(jié)果有一定的差異,我們推測(cè)可能跟培養(yǎng)條件和藥品純度有關(guān)。R5培養(yǎng)基誘導(dǎo)的平均根個(gè)數(shù)為5.1個(gè),根長達(dá)到7.8 cm,也有新葉長出,長勢(shì)也比較茂盛(圖3中E),其與R2培養(yǎng)基的區(qū)別在于采用MS為主培養(yǎng)基,而R2培養(yǎng)基采用1/2MS為主培養(yǎng)基,考慮到成本問題,建議采用R2培養(yǎng)基用于不定根的誘導(dǎo)。因此,最佳的三葉青不定根誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2MS+0.5 mg·L-1IBA。

        表4 三葉青不定根的誘導(dǎo)結(jié)果

        圖3 誘導(dǎo)不定根的形成

        3 小結(jié)

        該研究的試驗(yàn)結(jié)果大部分與文獻(xiàn)報(bào)道一致,但是也有部分?jǐn)?shù)據(jù)無法重復(fù)文獻(xiàn)中的結(jié)果,這可能跟外植體選擇、實(shí)驗(yàn)培養(yǎng)條件、操作人員的操作技巧,以及藥品純度都有直接的關(guān)系。經(jīng)過比較試驗(yàn),優(yōu)化出一套三葉青高效組織快繁的技術(shù)體系:采用腋芽莖段為外植體,用75%乙醇消毒1 min,含3滴吐溫20的0.1% HgCl2滅菌15 min,接種于1/2MS+0.5 mg·L-16-BA+25%活性炭培養(yǎng)基誘導(dǎo)腋芽,21 d后接種于MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA培養(yǎng)基上進(jìn)行不定芽增殖誘導(dǎo),最后采用1/2MS+0.5 mg·L-1IBA培養(yǎng)基誘導(dǎo),14 d后形成不定根。該研究可為研究人員進(jìn)行三葉青組織快繁試驗(yàn)提供一定的科學(xué)依據(jù),有助于縮短試驗(yàn)周期,節(jié)約成本。

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