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        ToxoROP16Ⅰ/Ⅲ誘導(dǎo)M2型巨噬細(xì)胞偏移抑制M1分泌炎性細(xì)胞因子的研究

        2019-10-16 06:50:02徐永偉章文慧邢瑞欣羅慶禮沈繼龍
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)

        徐永偉,李 路,武 藝,章文慧,邢瑞欣,羅慶禮,沈繼龍,陳 熙

        剛地弓形蟲(Toxoplasmagondii, Tg)是一種機(jī)會(huì)致病性的專性有核細(xì)胞內(nèi)寄生原蟲,且全球廣泛傳播,可以感染幾乎所有溫血?jiǎng)游?。已知來源于北美及歐洲人獸弓形蟲蟲株主要有三個(gè)基因型,即Type Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型;而中國(guó)則以Chinese 1(ToxoDB#9)型為優(yōu)勢(shì)基因型[1]。弓形蟲株毒力與不同基因型攜帶的效應(yīng)分子多態(tài)性密切相關(guān)[2]。弓形蟲侵入宿主細(xì)胞后釋放的多態(tài)性效應(yīng)分子蛋白主要包括棒狀體蛋白家族(ROPs family, ROPs)和致密體家蛋白家族(GRAs family, GRAs),線狀體和類錐體等多種毒力效應(yīng)分子[3]。弓形蟲Ⅰ和Ⅲ型蟲株分泌的ROP16蛋白可以通過旁路激活途徑,直接磷酸化信號(hào)傳導(dǎo)與轉(zhuǎn)錄激活因子-3(signal transducer and activator of transcription-3, Stat-3)和信號(hào)傳導(dǎo)與轉(zhuǎn)錄激活因子-6(signal transducer and activator of transcription-6, Stat-6)而激活巨噬細(xì)胞向M2型巨噬細(xì)胞偏移,增強(qiáng)精氨酸酶-1(arginase-1,Arg-1)的合成增加,并釋放出大量的IL-4、IL-10和TGF-β1等細(xì)胞因子,使得TNF-α、IL-12等的生成減少[4-5],并能誘導(dǎo)Th2型免疫應(yīng)答。

        有研究[6]證實(shí)LPS和IFN-γ則通過經(jīng)典途徑誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞向M1型巨噬細(xì)胞偏移,在機(jī)體抗感染、抗腫瘤免疫中發(fā)揮重要作用。但是過度的M1激活及其誘導(dǎo)的Th1應(yīng)答也可導(dǎo)致組織的炎癥反應(yīng),且在自身免疫性疾病中造成病理?yè)p傷[7]。有研究[8]表明,M2和M1細(xì)胞在機(jī)體的免疫環(huán)境中能夠進(jìn)行相互的轉(zhuǎn)化偏移,使得免疫反應(yīng)處于一種動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài)中,影響著疾病的發(fā)生和發(fā)展。該研究旨在通過慢病毒介導(dǎo)ToxoROP16Ⅰ/Ⅲ,穩(wěn)轉(zhuǎn)RAW264.7(Mφ)并驅(qū)動(dòng)向M2型細(xì)胞偏移。經(jīng)過與M1型細(xì)胞混合培養(yǎng),觀察M2下調(diào)炎性細(xì)胞因子的作用。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1細(xì)胞系 小鼠腹腔巨噬細(xì)胞系RAW264.7(RAW264.7,Mφ),由安徽醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室提供,細(xì)胞在含10%胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)的DMEM培養(yǎng)基中傳代培養(yǎng),并在-80 ℃液氮凍存。

        1.1.2重組質(zhì)粒和慢病毒包裝ToxoROP16Ⅰ/Ⅲ(2 124 bp, ToxoDB.org)來源于PRU株RNA和WH3速殖子RNA, 構(gòu)建重組質(zhì)粒pEGFP,定向克隆pEGFP-ROP16Ⅰ/Ⅲ,重組含有綠色熒光蛋白和嘌呤霉素抗性標(biāo)記的慢病毒載體。慢病毒由上海吉?jiǎng)P基因包裝。

        1.1.3主要試劑 FBS(加拿大Wistent公司);磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffer saline, PBS)、DMEM培養(yǎng)基、甲醛、BCA試劑盒、RIPA細(xì)胞裂解液(上海碧云天公司);LPS(美國(guó)Sigma公司);TRIzol(美國(guó)Invitrogen公司);硝酸纖維膜(美國(guó)Billerica公司);小鼠抗兔Arg-1、內(nèi)參β-actin和山羊抗小鼠/兔IgG抗體(武漢Proteintech公司);兔抗鼠iNOS抗體(美國(guó)Abcam公司);小鼠抗兔PD-L2抗體(美國(guó)Santa Cruz公司);引物合成(上海Sangon公司)。

        1.2 方法

        1.2.1細(xì)胞培養(yǎng) Mφ培養(yǎng)在含有10%胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基中,在37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞達(dá)到80%~90%時(shí),進(jìn)行傳代并冷凍。Mφ的正常狀態(tài)是一種圓形的、未伸展的、未分化的狀態(tài),稱為初始狀態(tài)細(xì)胞。

        1.2.2重組慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn)Mφ 在6孔培養(yǎng)板中每孔加入1 ml不含抗生素的完全培養(yǎng)基,重懸細(xì)胞,總數(shù)2×106個(gè)/每孔。設(shè)立正常組(Mφ)、慢病毒空載對(duì)照組(Lv-Mφ)和慢病毒穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞組(Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ)。根據(jù)感染復(fù)數(shù),將慢病毒稀釋至滴度為1×108TU/ml,并加入細(xì)胞轉(zhuǎn)染增強(qiáng)試劑進(jìn)行慢病毒轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染后將細(xì)胞至于原有的條件下37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。8~12 h以后根據(jù)細(xì)胞狀態(tài),更換為新的完全培養(yǎng)基。在轉(zhuǎn)染2~3 d后,觀察轉(zhuǎn)染的細(xì)胞。因綠色熒光蛋白包含在ROP16Ⅰ/Ⅲ的慢病毒質(zhì)粒內(nèi),則可在熒光顯微鏡下觀察到細(xì)胞發(fā)出綠色熒光。

        1.2.3Western blot檢測(cè) 將上述細(xì)胞進(jìn)行分組后,收集經(jīng)過穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的Mφ,將預(yù)冷的PBS緩沖液沖洗細(xì)胞2次,根據(jù)說明書,按照每孔150 μl的體積加入細(xì)胞裂解液,反復(fù)吹打,同時(shí)在冰上敷10 min, 然后4 ℃、12 000 r/min條件下離心5 min,上清液即細(xì)胞總蛋白溶液,BCA法測(cè)蛋白濃度。配制SDS-PAGE膠,根據(jù)蛋白濃度進(jìn)行上樣,電泳(60 V 50 min、110 V、60 min),轉(zhuǎn)模(110 V、90 min),用溶于TBST的5%脫脂牛奶進(jìn)行封閉,并且在室溫的條件下進(jìn)行孵育1 h后,加入ROP16Ⅰ/Ⅲ(1 ∶500)、Arg-1和iNOS(1 ∶1 000)、PD-L2(1 ∶1 500)小鼠單克隆抗體,室溫孵育1 h,置于4 ℃環(huán)境中過夜,過夜后用 TBST洗滌3次,每次10 min, 隨即加入相應(yīng)二抗(1 ∶1 500),室溫孵育1 h,孵育完成后用TBST洗滌。加入顯影液后,進(jìn)行拍照分析。并分析條帶灰度值。

        1.2.4qRT-PCR檢測(cè)mRNA水平的變化 每組細(xì)胞收集后,加入PBS 重懸細(xì)胞進(jìn)行清洗,4 ℃、4 000 r/min離心10 min,吸棄上清液,將細(xì)胞置于冰上提取細(xì)胞總RNA,每管加入1 ml TRIzol進(jìn)行細(xì)胞裂解,提取總RNA樣品,進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA等操作的方法均根據(jù)試劑盒說明書進(jìn)行。反應(yīng)條件為:預(yù)變性(94 ℃、變性3~5 min),變性(94 ℃、變性1 min),退火(50~60 ℃ 退火1 min),延伸(70~75 ℃、延伸1 min),循環(huán)重復(fù)變性至延伸步驟,延伸補(bǔ)平(70~75 ℃延伸10 min),4 ℃終止。以β-actin為內(nèi)參,引物見表1。

        表1 引物序列

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理使用GraphPad Prism 5.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。采用單因素方差分析(One-way ANOVA)對(duì)組間同一參數(shù)進(jìn)行比較,以P<0.05差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 重組慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ轉(zhuǎn)染Mφ使用空載慢病毒和重組慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)定轉(zhuǎn)染入Mφ細(xì)胞,并使用熒光顯微鏡觀察熒光蛋白表達(dá)情況以及通過Western blot技術(shù)分析,Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ成功轉(zhuǎn)入細(xì)胞內(nèi)。通過灰度值進(jìn)行計(jì)算,與空載慢病毒組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)。見圖1。

        2.2 LPS刺激Mφ偏移提取細(xì)胞總蛋白和細(xì)胞總RNA進(jìn)行檢測(cè)分析,其中Western blot結(jié)果顯示,與正常組(Mφ組)比較,LPS+Mφ組中iNOS(1 ∶1 500)表達(dá)顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=285.3,P<0.01)。通過qRT-PCR檢測(cè)LPS+Mφ細(xì)胞組中的TNF-α(F=39.74,P<0.001)、IL-1β(F=30.9,P<0.001)和iNOS(F=12.2,P<0.001)的mRNA的表達(dá)顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。表明LPS刺激Mφ向M1型炎性細(xì)胞方向偏移。見圖2。

        圖1 重組慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)定轉(zhuǎn)染Mφ細(xì)胞

        A:熒光顯微鏡下觀察慢病毒穩(wěn)轉(zhuǎn)情況×40;B:Western blot檢測(cè)慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ轉(zhuǎn)入細(xì)胞內(nèi);C:灰度值計(jì)算慢病毒ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn);1: Mφ組;2:Lv-Mφ組;3:Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組;與Mφ組比較:***P<0.001

        2.3 重組慢病毒Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn)Mφ偏移提取細(xì)胞總蛋白和細(xì)胞總RNA進(jìn)行檢測(cè)分析,其中Western blot 結(jié)果顯示Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ細(xì)胞組中的Arg-1(1 ∶1 500)見圖3A,PD-L2(1 ∶1 000)見圖3B,與空載慢病毒組Lv+Mφ組比較,Arg-1(F=5.8,P<0.05)和PD-L2(F=4.15,P<0.1)顯著增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。通過qRT-PCR檢測(cè)Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組中的IL-10、TGF-β1和Arg-1的mRNA的表達(dá),與空載慢病毒組的Lv-Mφ組比較,IL-10(F=43.1,P<0.01)、TGF-β1 (F=30.2,P<0.01)和Arg-1(F=29.4,P<0.01)表達(dá)顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。表明重組慢病毒Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn)Mφ向M2型巨噬細(xì)胞偏移。見圖3。

        2.4 Western blot 測(cè)M1和M2混合培養(yǎng)iNOS、Arg-1和PD-L2表達(dá)M1和M2細(xì)胞進(jìn)行混合培養(yǎng),通過Western blot檢測(cè)M1+M2混合培養(yǎng)細(xì)胞組中的Arg-1和PD-L2的蛋白表達(dá)穩(wěn)定,與LPS+Mφ組比較,Arg-1(F=37.33,P<0.001)和PD-L2(F=303.3,P<0.001)表達(dá)明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,而與LPS+Mφ組比較,iNOS蛋白表達(dá)降低(F=179.3,P<0.01),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見圖4。

        圖2 LPS刺激Mφ向M1型細(xì)胞偏移

        A:Western blot檢測(cè)iNOS蛋白的表達(dá);B:灰度值計(jì)算iNOS的值;C、D、E:檢測(cè)M1型細(xì)胞中TNF-α、IL-1β、iNOS的mRNA表達(dá)情況;1: Mφ組;2:LPS+Mφ組;3:Lv-Mφ組;4:Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組;與Mφ組比較:**P<0.01,***P<0.001

        圖3 Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn)Mφ向M2型細(xì)胞偏移

        A:Western blot檢測(cè)Arg-1蛋白的表達(dá);B:Western blot檢測(cè)PD-L2蛋白的表達(dá);C、D:分別使用灰度值計(jì)算Arg-1和PD-L2的值;E、F、G:檢測(cè)M2型細(xì)胞中IL-10、TGF-β1和Arg-1的mRNA表達(dá);1: Mφ組;2:LPS+Mφ組;3:Lv-Mφ組;4:Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組;與Lv-Mφ組比較:*P<0.05,**P<0.01

        2.5 qRT-PCR測(cè)M1和M2混合培養(yǎng)IL-1β、TNF-α和iNOS表達(dá)提取細(xì)胞總RNA,通過qRT-PCR法進(jìn)行檢測(cè)分析,M1+M2細(xì)胞組中IL-10、TGF-β1和Arg-1的mRNA表達(dá)與轉(zhuǎn)染慢病毒組相比,表達(dá)穩(wěn)定。與LPS+Mφ組相比,IL-1β(F=9.3,P<0.01)、TNF-α(F=2.27,P<0.001)和iNOS(F=87.6,P<0.01)表達(dá)明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見圖5。

        3 討論

        巨噬細(xì)胞在機(jī)體固有免疫和適應(yīng)性免疫應(yīng)答中發(fā)揮著關(guān)鍵的作用,在抵抗病原感染的過程中最先發(fā)揮吞噬、降解、抗原遞呈以及殺傷病原體等重要作用,是機(jī)體中免疫反應(yīng)中重要的免疫細(xì)胞[9]。巨噬細(xì)胞具有高度的異質(zhì)性和可塑性[10],在多種病變組織中,如腫瘤、燒傷、炎癥、感染、某些自身免疫性疾病及肥胖等,都可見大量的M1/Th1炎性細(xì)胞。這些炎性細(xì)胞與疾病的發(fā)生、發(fā)展及并發(fā)癥的產(chǎn)生密切相關(guān)。

        已知單核巨噬細(xì)胞在不同的組織微環(huán)境狀態(tài)下,可向M1型或者M(jìn)2型細(xì)胞偏移或極化[11-12]。巨噬細(xì)胞極化的狀態(tài)不同,在免疫應(yīng)答中發(fā)揮著不同的作用。極化的M1型巨噬細(xì)胞以分泌促炎因子為主,如TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-12等,具有強(qiáng)大的抗原提呈及吞噬能力,促進(jìn)Th1免疫應(yīng)答,發(fā)揮抗胞內(nèi)病原菌和抗腫瘤的作用,同時(shí)在機(jī)體的免疫應(yīng)答中發(fā)揮促炎作用[13],但也會(huì)對(duì)機(jī)體造成損傷。M2型巨噬細(xì)胞分泌抗炎細(xì)胞因子如IL-10、IL-13、TGF-β1以及表達(dá)Arg-1等,具有抗炎的免疫調(diào)控作用,能促進(jìn)組織修復(fù)和傷口愈合[14]。

        圖4 Western blot 測(cè)M1和M2混合培養(yǎng)中iNOS、Arg-1和PD-I2表達(dá)

        A:Western blot檢測(cè)Arg-1和iNOS蛋白的表達(dá);B、C:分別使用灰度值計(jì)算Arg-1和iNOS的值;D:Western blot檢測(cè)PD-L2蛋白的表達(dá);E 使用灰度值計(jì)算PD-L2的值;1: Mφ組;2:LPS+Mφ組;3:Lv-Mφ組;4:Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組;5:M1+M2組;與LPS+Mφ組比較:**P<0.01,***P<0.001

        圖5 qRT-PCR測(cè)M1和M2混合培養(yǎng)細(xì)胞中IL-1β、TNF-α和iNOS表達(dá)

        A:IL-10;B:TGF-β1;C:Arg-1;D:IL-1β;E:TNF-α;F:iNOS;1: Mφ組;2:LPS+Mφ組;3:Lv-Mφ組;4:Lv-ROP16Ⅰ/Ⅲ-Mφ組;5:M1+M2組;與LPS+Mφ組比較:**P<0.01,***P<0.001

        在某些特定的微環(huán)境中,由于巨噬細(xì)胞可塑性的特性,可誘導(dǎo)其偏移,從而發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)的作用。

        弓形蟲是一種細(xì)胞內(nèi)寄生蟲,具有多樣的遺傳結(jié)構(gòu)。在動(dòng)物和人類的調(diào)查中發(fā)現(xiàn)Chinese 1是中國(guó)的優(yōu)勢(shì)基因型[1]。已知Ⅰ/Ⅲ型弓形蟲分泌的激酶效應(yīng)分子ROP16Ⅰ/Ⅲ能夠直接磷酸化STAT3/STAT6轉(zhuǎn)錄因子,經(jīng)旁路激活途徑誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞向M2型巨噬細(xì)胞極化[15]。在Th2炎癥反應(yīng)過程中有M2型巨噬細(xì)胞聚集,例如蠕蟲感染和哮喘。這些免疫反應(yīng)與IL-4和IL-13的產(chǎn)生、嗜酸細(xì)胞增多有關(guān)[10]。此外,M2型巨噬細(xì)胞在抑制Th1型免疫應(yīng)答發(fā)揮重要作用。

        本實(shí)驗(yàn)以LPS誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞Mφ向M1極化,后者表達(dá)炎性因子TNF-α、IL-1β和iNOS mRNA的表達(dá)與正常組相比明顯增高;以ROP16Ⅰ/Ⅲ驅(qū)動(dòng)巨噬細(xì)胞向M2型巨噬細(xì)胞偏移,后者分泌表達(dá)的IL-10、TGF-β1和Arg-1的mRNA與空載慢病毒相比顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。通過體外建立巨噬細(xì)胞可塑性模型,探討蟲源性多肽誘導(dǎo)的M2對(duì)過度的M1應(yīng)答發(fā)揮調(diào)解作用,旨在為M1-Th1型應(yīng)答相關(guān)的炎癥以及某些自身免疫性疾病的免疫治療提供新的思路和策略。

        在M1和M2細(xì)胞的混合培養(yǎng)中,ROP16Ⅰ/Ⅲ誘導(dǎo)的M2型巨噬細(xì)胞分泌的抗炎因子,如TGF-β1和IL-10明顯升高;而M1型炎性細(xì)胞分泌的促炎因子如IL-1β、TNF-α和iNOS的mRNA表達(dá)明顯降低,抑制了炎癥因子的分泌。這可能與M2型細(xì)胞逆轉(zhuǎn)M1型細(xì)胞的偏移有關(guān),而發(fā)揮M2型細(xì)胞的抗炎免疫調(diào)節(jié)作用[16]。

        本研究中以慢病毒介導(dǎo)的弓形蟲棒狀體分泌的ROP16Ⅰ/Ⅲ穩(wěn)轉(zhuǎn)巨噬細(xì)胞,可驅(qū)動(dòng)其向M2型巨噬細(xì)胞極化,持續(xù)分泌抑炎癥因子,調(diào)解炎性反應(yīng)。與IL-4和IL-13相比,ROP16Ⅰ/Ⅲ激活M2巨噬細(xì)胞偏移更具有靶向性和更高的安全性,因此對(duì)于研究M1-Th1型免疫應(yīng)答相關(guān)的炎癥病理及其干預(yù)具有重要理論意義和潛在的應(yīng)用價(jià)值。

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