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        玉竹連作對土壤微生物區(qū)系的影響

        2019-10-15 00:48:08段良霞
        蔬菜 2019年10期

        張 周,盛 浩,袁 紅,段良霞,張 亮

        (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)資源環(huán)境學(xué)院,湖南 長沙 410128)

        玉竹(Polygonatum odoratum(Mill.)Druce),別名鈴鐺菜、尾參、地管子和甜草根,是百合科黃精屬多年生草本植物[1],富含氨基酸、微量元素、多糖和苷類等化學(xué)成分,可增強(qiáng)人體免疫力,有效延緩衰老、促進(jìn)淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化[2],對人體有較多用處。玉竹既可食用,又可藥用,在我國分布廣泛,較為出名的一種是湖南的湘玉竹,它已成為當(dāng)?shù)刂匾慕?jīng)濟(jì)來源。近年來,由于玉竹連年連片種植,產(chǎn)地病蟲害越來越重,已嚴(yán)重影響玉竹的品質(zhì),成為玉竹生產(chǎn)開發(fā)的主要障礙[3]。湖南地區(qū)的玉竹大片連作不僅影響其產(chǎn)量和質(zhì)量,對當(dāng)?shù)氐耐寥牢⑸飬^(qū)系和土壤養(yǎng)分也造成不同程度的影響。

        連作障礙是指在同一塊土壤中連續(xù)栽培同種或同科作物時(shí),即使在正常的栽培管理狀況下,也會(huì)出現(xiàn)生長勢變?nèi)?、產(chǎn)量降低、品質(zhì)下降、病蟲害嚴(yán)重的現(xiàn)象,在日本被稱為“忌地”現(xiàn)象,在歐美國家被稱為“再植問題”,我國稱其為“重茬問題”[4]。植物連作通常會(huì)導(dǎo)致土壤養(yǎng)分失衡、理化性質(zhì)惡變、微生物群落變化、作物自毒物質(zhì)積累等[5]。基于土壤微生物群落變化的研究層面,植物連作后,由于長期受同一類根系分泌物的影響,土壤微生物群落會(huì)發(fā)生選擇性富集,導(dǎo)致土壤微生物群落數(shù)量發(fā)生變化,如連作后土壤中細(xì)菌、真菌和放線菌等的數(shù)量變化[6]。一般連作年限越長,土壤中微生物群落數(shù)量變化程度越大。為了解釋連作障礙的形成機(jī)理,國內(nèi)外眾多學(xué)者對作物連作問題進(jìn)行研究,分析了造成連作障礙的幾大原因,包括:土壤微生物生物學(xué)環(huán)境改變;土壤酸堿度改變;土壤營養(yǎng)成分改變;植物化感作用。大量試驗(yàn)表明,土壤微生物區(qū)系變化和群落結(jié)構(gòu)、病原微生物數(shù)量改變及植物的化感作用,是造成作物連作障礙主要因素之一[7-14]。

        縱觀國內(nèi)外各學(xué)者的大量試驗(yàn),目前研究連作對土壤生物學(xué)環(huán)境的影響,大多是與保護(hù)地蔬菜連作有關(guān),如黃瓜、番茄、玉米等,與藥食兼用植物尤其是玉竹的相關(guān)研究少有文獻(xiàn)報(bào)道,其中肖嵐等[3]通過對玉竹根際土壤有機(jī)化合物的鑒定,發(fā)現(xiàn)玉竹連作土壤中有多種化感物質(zhì),與作物的自毒作用共同造成玉竹的連作障礙,但關(guān)于玉竹連作土壤中微生物區(qū)系的具體分析鮮見報(bào)道。

        本文對連作3年的玉竹根際土壤和種植1年的玉竹根際土壤中3大類群土壤微生物(細(xì)菌、真菌、放線菌)以及主要功能微生物的數(shù)量進(jìn)行了分析,以期初步探明玉竹連作對土壤微生物區(qū)系的影響,為連作障礙機(jī)理研究、提高玉竹的產(chǎn)量和質(zhì)量、實(shí)現(xiàn)玉竹生產(chǎn)的可持續(xù)發(fā)展提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 取樣點(diǎn)概況及取樣方法

        供試土壤采集于2018年2月,地點(diǎn)位于長沙縣高橋鎮(zhèn)玉竹種植園,采集對象為連作3年的玉竹根際土壤(板頁巖母質(zhì)風(fēng)化的紅壤),并以種植1年的玉竹根際土壤為對照。

        采用五點(diǎn)法選擇采樣對象,小心剝離玉竹植株周圍土壤,并輕輕拔出,收集根表附著土壤作為根際土壤,混勻后按四分法處理,取約500 g樣品裝入塑料袋中,帶回實(shí)驗(yàn)室。將采集到的土壤去除明顯可見的未分解和半分解動(dòng)物、植物殘?bào)w和較大的石礫,用2 mm篩子過篩后裝入滅菌的密封塑料袋,置于4 ℃冰箱保存、備用。

        1.2 培養(yǎng)基與試劑

        細(xì)菌[15]:牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基(蛋白胨5 g、牛肉膏3 g、水1 L、瓊脂18 g)。

        放線菌[15]:改良高氏Ⅰ號培養(yǎng)基(淀粉20 g、NaCl 0.5 g、KNO31 g、FeSO4·7H2O 0.01 g、K2HPO40.5 g、MgSO4·7H2O 3 g、水1 L、瓊脂18 g)。

        真菌[15]:馬丁培養(yǎng)基(葡萄糖10 g、蛋白胨5 g、K2HPO41 g、MgSO4·7H2O 0.5 g、10 g/L孟加拉紅液3.3 mL、水1 L、瓊脂18 g)。

        好氧自生固氮菌[15]:瓦克斯曼77號培養(yǎng)基(葡萄糖10 g、K2HPO40.5 g、MgSO4·7H2O 0.2 g、NaCl 0.2 g、FeCl3·6H2O微量、MnSO4·4H2O微量、10 g/L剛果紅溶液5 mL、蒸餾水1 L、瓊脂18 g)。

        氨化細(xì)菌[15]:牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基(蛋白胨5 g、MgSO4·7H2O 0.5 g、KH2PO40.5 g、蒸餾水1 L、K2HPO40.5 g、瓊脂18 g)。

        硝化細(xì)菌[15]:氨氧化細(xì)菌(亞硝化細(xì)菌)培養(yǎng)基(CaCO35 g、MgSO4·7H2O 0.03 g、(NH4)2SO42 g、MnSO4·4H2O 0.01 g、K2HPO40.75 g、蒸餾水1 L、NaH2PO40.25 g)。

        有機(jī)磷細(xì)菌[15]:蒙金娜有機(jī)磷培養(yǎng)基(葡萄糖 10 g、NaCl 0.3 g、CaCO35 g、卵磷脂 0.2 g、(NH4)2SO40.5 g、MnSO4·4H2O 0.03 g、MgSO4·7H2O 0.3 g、KCl 0.3 g、FeSO4·7H2O 0.3 g、蒸餾水1 L)。

        無機(jī)磷細(xì)菌[15]:磷酸三鈣無機(jī)磷培養(yǎng)基(葡萄糖10 g、MgSO4·7H2O 0.3 g、Ca3(PO4)210 g、FeSO4·7H2O 0.03 g、(NH4)2SO40.5 g、MnSO4·4H2O 0.03 g、NaCl 0.3 g、蒸餾水1 L、KCl 0.3 g)。

        格利斯試劑A液[15]:0.5 g對氨基苯磺酸加到150 mL 200 g/L的乙酸溶液中;B液:1 g酸溶萘胺加到20 mL蒸餾水和150 mL 200 g/L的乙酸溶液中。40 g/L的鉬酸銨試劑:18 g化學(xué)純鉬酸銨結(jié)晶溶于420 mL蒸餾水,漸漸加入30 mL濃硫酸,充分振蕩,使結(jié)晶完全溶解,保存在棕色玻璃瓶中待用。還原劑:15 g化學(xué)純亞硫酸氫鈉溶于250 mL蒸餾水中,加入1.5 g亞硫酸鈉和1,2,4-氨基萘酚磺酸,完全溶解后,用蒸餾水稀釋至500 mL。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 3大土壤微生物的計(jì)數(shù)

        分別稱取10 g新鮮連作土樣和對照土樣,加入盛有90 mL無菌水的250 mL三角瓶中,置于搖床中振蕩15 min,制備使土樣均勻地分散在稀釋液中的土壤懸液;吸取0.5 mL土壤懸液到4.5 mL無菌水中,按10倍法依次稀釋成10-2、10-3、10-4、10-5、10-6稀釋液[15]。

        細(xì)菌:用0~100 μL移液槍各吸取100 μL 10-5、10-6稀釋土壤懸液,接入牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻,每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)3~4 d后觀察并計(jì)數(shù)。

        放線菌:用0~100 μL移液槍各吸取100 μL 10-4、10-5稀釋土壤懸液,接入改良高氏Ⅰ號培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻,每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,28 ℃培養(yǎng)5~7 d后觀察并計(jì)數(shù)。

        真菌:用0~100 μL移液槍各吸取100 μL 10-2、10-3稀釋土壤懸液,接入馬丁培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻,每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,在培養(yǎng)箱中28℃培養(yǎng)2~3 d后觀察并計(jì)數(shù)。

        1.3.2 主要功能土壤微生物計(jì)數(shù)

        好氧自生固氮菌:用0~100 μL固氮移液槍各吸取100 μL 10-2、10-3稀釋土壤懸液,接入瓦克斯曼77號培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻,每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)7 d后觀察并計(jì)數(shù)[15]。

        氨化細(xì)菌:用0~100 μL移液槍各吸取100 μL 10-5、10-6稀釋土壤懸液,接入牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)5~7 d后觀察并計(jì)數(shù)[15]。

        硝化細(xì)菌:用1.0~5.0 mL移液槍各吸取1 mL 10-5、10-6稀釋土壤懸液,接入裝有5 mL氨氧化細(xì)菌(亞硝化細(xì)菌)培養(yǎng)基的試管中,每一個(gè)稀釋度接種3個(gè)試管,另取2只培養(yǎng)基接種無菌水作對照。在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)14 d,吸取培養(yǎng)液5滴于白瓷板穴中,依次加入格利斯試劑A液、B液各1滴,如有亞硝酸(NO2)存在,則呈紅色,表示亞硝酸化細(xì)菌存在。依據(jù)“最大或然數(shù)法”計(jì)算結(jié)果[15]。

        有機(jī)磷細(xì)菌:用1.0~5.0 mL移液槍各吸取1 mL 10-4、10-5、10-6稀釋土壤懸液,接入裝有5 mL蒙金娜有機(jī)磷培養(yǎng)基的試管中,每一個(gè)稀釋度4個(gè)重復(fù),另取6只培養(yǎng)基接種無菌水作對照。在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)5 d,加40 g/L的鉬酸銨試劑2 mL于試管中,在沸水浴中加熱2 min。取出后加入還原劑1 mL,有磷酸時(shí)呈藍(lán)色反應(yīng)。依據(jù)“最大或然數(shù)法”計(jì)算結(jié)果[15]。

        無機(jī)磷細(xì)菌:用0~100 μL移液槍各吸取100 μL 10-5、10-6稀釋土壤懸液,接入磷酸三鈣無機(jī)磷培養(yǎng)基表面,立即用玻璃刮刀將接入培養(yǎng)基表面的懸液涂抹均勻,每一個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù)。將平板倒置,在培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)7 d后觀察并計(jì)數(shù)[15]。

        1.4 微生物數(shù)量計(jì)算公式

        1.4.1 涂布法

        菌數(shù)=(菌落平均數(shù)×稀釋倍數(shù)×20×鮮土質(zhì)量)/干土質(zhì)量,單位為CFU/g[15]。

        1.4.2 最大或然數(shù)法

        菌數(shù)=(近似值×數(shù)量指標(biāo)首位稀釋倍數(shù)×鮮土質(zhì)量)/干土質(zhì)量,單位為CFU/g[15]。

        1.5 數(shù)據(jù)分析

        采用Microsoft Excel 2010軟件對試驗(yàn)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行分析并繪制圖表,采用DPS 7.05軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行顯著性差異分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 玉竹連作對土壤3大類群微生物區(qū)系的影響

        玉竹連作影響土壤3大類群微生物的區(qū)系,由表1知,連作玉竹根際土壤與種植1年玉竹的土壤3大類群微生物的數(shù)量均表現(xiàn)為細(xì)菌>放線菌>真菌。與對照相比,連作土壤中細(xì)菌和放線菌的數(shù)量均減少,而真菌的數(shù)量增多。連作根際土壤細(xì)菌、放線菌總數(shù)分別比對照降低了12.4%、13.2%,且均與對照差異顯著。連作根際土壤真菌總數(shù)達(dá)1.05×106CFU/g,較對照顯著增加了239%。

        2.2 玉竹連作對土壤功能微生物的影響

        2.2.1 玉竹連作對土壤好氧自生固氮菌、氨化細(xì)菌、硝化細(xì)菌數(shù)量的影響

        從圖1可以看出,連作玉竹根際土壤中的好氧自生固氮菌和氨化細(xì)菌數(shù)量均少于種植1年玉竹的土壤中的數(shù)量,而硝化細(xì)菌數(shù)量則大致相同。其中,連作玉竹根際土壤中好氧自生固氮菌的數(shù)量為2.51×106CFU/g,氨化細(xì)菌的數(shù)量為2.74×107CFU/g,種植1年玉竹的土壤中好氧自生固氮菌的數(shù)量為3.87×106CFU/g,氨化細(xì)菌的數(shù)量為5.33×107CFU/g。經(jīng)過分析,連作后土壤中的好氧自生固氮菌數(shù)量僅為種植1年玉竹的土壤中的64.9%,數(shù)量變化差異未達(dá)到顯著水平。連作根際土壤中的氨化細(xì)菌的數(shù)量較種植1年玉竹的土壤中的數(shù)量減少了將近36.3%,數(shù)量變化差異顯著。連作玉竹根際土壤中硝化細(xì)菌的數(shù)量和種植1年玉竹的土壤中硝化細(xì)菌的數(shù)量均大約為1.45×106CFU/g,分別占連作玉竹根際土壤和種植1年玉竹的土壤中的細(xì)菌總數(shù)的0.004 2和0.003 7。

        2.2.2 玉竹連作對土壤有機(jī)磷細(xì)菌、無機(jī)磷細(xì)菌數(shù)量的影響

        從圖2可知,種植1年玉竹的土壤中的有機(jī)磷細(xì)菌的數(shù)量為1.45×106CFU/g,連作玉竹根際土壤中的有機(jī)磷細(xì)菌的數(shù)量為1.65×106CFU/g,兩者相差約12.1%。連作玉竹根際土壤和種植1年玉竹的土壤中的有機(jī)磷細(xì)菌的數(shù)量相差不多,但連作玉竹土壤中無機(jī)磷細(xì)菌數(shù)量為1.24×107CFU/g,對照土壤中無機(jī)磷細(xì)菌數(shù)量為4.29×107CFU/g,約是連作玉竹根際土壤中無機(jī)磷細(xì)菌的3.5倍。

        3 結(jié)論與討論

        土壤中的細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量是衡量土壤中微生物區(qū)系狀況的一個(gè)重要指標(biāo)。大量研究表明,連作后土壤中細(xì)菌和放線菌的數(shù)量急劇下降,真菌的數(shù)量顯著上升。劉曄等[16]對不同連作年限對植煙土壤微生物區(qū)系的研究發(fā)現(xiàn),細(xì)菌、放線菌數(shù)量隨連作年限的增加而減少,但真菌數(shù)量變化相反,隨著連作年限的增加而增加。黃玉茜等[17]的研究發(fā)現(xiàn),隨連作年限增加,花生根際土壤中的細(xì)菌數(shù)量和放線菌數(shù)量減幅明顯,同時(shí)真菌數(shù)量增加幅度較大。本研究結(jié)果表明,經(jīng)過3年的連作,細(xì)菌和放線菌數(shù)量顯著減少,而真菌的數(shù)量則大幅度增加。土壤中細(xì)菌和放線菌數(shù)量減少,真菌數(shù)量增加,會(huì)使得植物很容易被土傳病害感染,同時(shí)土壤的肥力也會(huì)在一定程度上被削弱。

        表1 細(xì)菌、放線菌與真菌數(shù)量

        圖1 玉竹連作對土壤好氧自生固氮菌、氨化細(xì)菌、硝化細(xì)菌數(shù)量的影響

        圖2 玉竹連作對土壤有機(jī)磷細(xì)菌和無機(jī)磷細(xì)菌數(shù)量的影響

        除了土壤中的3大類群微生物(細(xì)菌、放線菌、真菌)的數(shù)量在連作后會(huì)發(fā)生明顯變化,土壤中的功能微生物數(shù)量也會(huì)發(fā)生一定的變化。連作玉竹根際土壤中的好氧自生固氮菌、氨化細(xì)菌、無機(jī)磷細(xì)菌的數(shù)量均有不同程度的減少,而有機(jī)磷細(xì)菌和硝化細(xì)菌的數(shù)量變化不大。功能微生物的減少,會(huì)導(dǎo)致土壤中的微生物量碳和微生物量氮相對減少,從而影響植物的生長質(zhì)量和最終的產(chǎn)量。

        連作年限的增加,會(huì)使得土壤微生物的區(qū)系發(fā)生變化,從而影響玉竹生長的土壤環(huán)境,進(jìn)而影響玉竹的產(chǎn)量、質(zhì)量,甚至影響連作地塊的土壤肥力。故采取一定的措施如合理的施用有機(jī)肥和無機(jī)肥改善土壤中微生物的區(qū)系,對改良土壤和植物良好生長有一定的穩(wěn)定作用。

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